Gambar 5. Hasil Amplifikasi Gen Calpastatin pada Gel Agarose 1,5%.

dokumen-dokumen yang mirip
HASIL DAN PEMBAHASAN. Gambar 4. Hasil Amplifikasi Gen FSHR Alu-1pada gel agarose 1,5%.

HASIL DAN PEMBAHASAN

HASIL DAN PEMBAHASAN. divisualisasikan padaa gel agarose seperti terlihat pada Gambar 4.1. Ukuran pita

HASIL DAN PEMBAHASAN. Amplifikasi Gen Pituitary-Specific Positive Transcription Factor 1 (Pit1) Exon 3

HASIL DAN PEMBAHASAN

HASIL DAN PEMBAHASAN

HASIL DAN PEMBAHASAN. Amplifikasi Gen GH Exon 2

MATERI DAN METODE. Lokasi dan Waktu. Materi

HASIL DAN PEMBAHASAN

TINJAUAN PUSTAKA Sapi Perah Friesian Holstein

HASIL DAN PEMBAHASAN Amplifikasi DNA Mikrosatelit

HASIL DAN PEMBAHASAN

TINJAUAN PUSTAKA. Gambar 1. Sapi Friesian Holstein (FH) Sumber: Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan (2009)

TINJAUAN PUSTAKA. Sumber :

HASIL DAN PEMBAHASAN. Amplifikasi Daerah D-loop M B1 B2 B3 M1 M2 P1 P2 (-)

TINJAUAN PUSTAKA Sapi Friesian Holstein

TINJAUAN PUSTAKA Sapi Lokal Kalimantan Tengah

TINJAUAN PUSTAKA Sapi Lokal Indonesia

TINJAUAN PUSTAKA Asal Usul Sapi di Indonesia

PENDAHULUAN. Latar Belakang

MATERI DAN METODE. Lokasi dan Waktu

HASIL DAN PEMBAHASAN. Amplifikasi Gen BMPR-1B dan BMP-15

MATERI DAN METODE. Materi. Tabel 1. Sampel Darah Sapi Perah dan Sapi Pedaging yang Digunakan No. Bangsa Sapi Jenis Kelamin

Gambar 4. Visualisasi Hasil Amplifikasi Gen Pit1 Sapi FH dan Sapi Pedaging pada Gel Agarose 1,5%

I. PENDAHULUAN. Pertumbuhan merupakan indikator terpenting dalam meningkatkan nilai

HASIL DAN PEMBAHASAN Amplifikasi DNA Mikrosatelit

TINJAUAN PUSTAKA. Suprijatna dkk. (2005) mengemukakan taksonomi ayam kampung adalah

MATERI DAN METODE. Materi

MATERI DAN METODE Waktu dan Tempat Materi Sapi Perah FH

TINJAUAN PUSTAKA. Sapi

METODE PENELITIAN. Tabel 1 Sampel yang digunakan dalam penelitian

MATERI DAN METODE Lokasi dan Waktu Materi Sampel Pengambilan Sampel Ekstraksi DNA Primer

KERAGAMAN GENETIK POPULASI INDUK ABALONE (Haliotis diversicolor) ASAL SELAT BALI DENGAN MENGGUNAKAN PENANDA Random Amplified Polimorphic DNA (RAPD)

HASIL DAN PEMBAHASAN. Keragaman Protein Plasma Darah

BAB II TINJAUAN PUSTAKA. banteng liar. Para ahli meyakini bahwa penjinakan tersebut telah dilakukan sejak

METODE. Materi. Tabel 1. Jumlah Sampel DNA yang Digunakan dan Asal Pengambilan Sampel Darah.

I. PENDAHULUAN. Management of Farm Animal Genetic Resources. Tujuannya untuk melindungi dan

IDENTIFIKASI KERAGAMAN GEN FOLLICLE STIMULATING HORMONE RECEPTOR

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. mahoni dan mimba. Hasil seleksi primer yang dilakukan terhadap 13 primer spesifik dari

I. PENDAHULUAN. Madura, Aceh, Pesisir, dan sapi Peranakan Simmental. Seperti sapi Pesisir

MATERI DAN METODE. Lokasi dan Waktu. Materi. Tabel 1. Jumah Sampel Darah Ternak Sapi Indonesia Ternak n Asal Sapi Bali 2 4

BAB 7. Analisis Polimorfisme Gen GHUntuk ProduktivitasTernak Sapi PO

TINJAUAN PUSTAKA Sumber Daya Genetik Ternak Lokal

HASIL DAN PEMBAHASAN

IDENTIFIKASI KERAGAMAN GEN HORMON PERTUMBUHAN (GH MspI) PADA SAPI FRIESIAN HOLSTEIN DI BIB LEMBANG, BBIB SINGOSARI, DAN BET CIPELANG

ABSTRAK Polimorfisme suatu lokus pada suatu populasi penting diketahui untuk dapat melihat keadaan dari suatu populasi dalam keadaan aman atau

IDENTIFIKASI KERAGAMAN GEN FOLLICLE STIMULATING HORMONE RECEPTOR (FSHR Alu-1) PADA SAPI LOKAL INDONESIA DENGAN TEKNIK PCR-RFLP

KERAGAMAN MOLEKULER DALAM SUATU POPULASI

PENGUJIAN KESETIMBANGAN HARDY-WEINBERG. Tujuan : Mempelajari kesetimbangan Hardy-Weinberg dengan frekuensi alel dan gen.

TINJAUAN PUSTAKA Tinjauan Umum Sapi Perah FH di Indonesia

BAB I PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang

PENDAHULUAN. dikenal dengan sebutan sapi kacang atau sapi kacangan, sapi pekidulan, sapi

Kolokium Departemen Biologi FMIPA IPB: Ria Maria

HASIL DAN PEMBAHASAN. Hasil. dua lembar plastik transparansi dan semua sisinya direkatkan hingga rapat.

HASIL DAN PEMBAHASAN. (a)

2011) atau 25,10% ternak sapi di Sulawesi Utara berada di Kabupaten Minahasa, dan diperkirakan jumlah sapi peranakan Ongole (PO) mencapai sekitar 60

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

MATERI DAN METODE. Materi

BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

HASIL DAN PEMBAHASAN

PEMBAHASAN Variasi Gen COI dan Gen COII S. incertulas di Jawa dan Bali

4 Hasil dan Pembahasan

Gambar 1.1. Variasi pada jengger ayam

III. HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB II TINJAUAN PUSTAKA. murni yang masih sedikit dan wawasan peternak masih sangat minim dalam

III. HASIL DAN PEMBAHASAN M

MATERI DAN METODE. Kota Padang Sumatera Barat pada bulan Oktober Amplifikasi gen Growth

EKSPLORASI GEN GROWTH HORMONE EXON 3 PADA KAMBING PERANAKAN ETAWAH (PE), SAANEN DAN PESA MELALUI TEKNIK PCR-SSCP

IDENTIFIKASI KERAGAMAN GEN PITUITARY SPECIFIC POSITIVE TRANSCRIPTION FACTOR

IDENTIFIKASI KERAGAMAN GEN GROWTH HORMONE RELEASING HORMONE (GHRH) PADA KERBAU LOKAL (Bubalus bubalis) DENGAN METODE PCR-RFLP

BAB 6. Analisis Frekuensi Gen GHPada Populasi Sapi PO

IDENTIFIKASI TINGKAT KEMURNIAN GENETIK SAPI BALI DI KABUPATEN BONE DENGAN MENGGUNAKAN MARKER MIKROSATELIT LOKUS INRA035

DAFTAR ISI 1 GENETIKA DASAR 1

BIO306. Prinsip Bioteknologi

IDENTIFIKASI KERAGAMAN DNA MIKROSATELIT LOKUS CSSM066, ILSTS029 DAN ILSTS061 PADA SAPI KATINGAN DI KALIMANTAN TENGAH SKRIPSI REVY PURWANTI

DAFTAR ISI. Halaman HALAMAN PERSETUJUAN... iii PERNYATAAN... PRAKATA... INTISARI... ABSTRACT... DAFTAR ISI... DAFTAR TABEL... DAFTAR GAMBAR...

KERAGAMAN GENETIK GEN HORMON PERTUMBUHAN DAN HUBUNGANNYA DENGAN PERTAMBAHAN BOBOT BADAN PADA SAPI SIMMENTAL. Disertasi HARY SUHADA

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. telah banyak dilakukan sebelumnya menunjukkan bahwa fenomena munculnya

4. HASIL DAN PEMBAHASAN

3. POLIMORFISME GEN Insulin-Like Growth Factor-I (IGF-1) DAN PENGARUHNYA TERHADAP PERTUMBUHAN AYAM LOKAL DI INDONESIA ABSTRAK

IDENTIFIKASI KERAGAMAN GEN β-laktoglobulin PADA SAPI PERAH FRIESIAN HOLSTEIN DI KPSBU LEMBANG SKRIPSI RATNA YUNITA HANDAYANI

HASIL DAN PEMBAHASAN. Gambar 10. Hasil ekstraksi DNA daun

BAB I PENDAHULUAN. Latar Belakang. dikembangbiakkan dengan tujuan utama untuk menghasilkan daging. Menurut

Identifikasi Keragaman Gen Leptin pada sapi Bali dan kambing Kacang (Polymorphism of Leptin Gene in Bali Cattle and Kacang Goat)

HASIL DAN PEMBAHASAN

TINJAUAN PUSTAKA Itik Lokal

PENDAHULUAN Latar Belakang

POPULASI TANAMAN ALLOGAM

KERAGAMAN GEN IGF2 DAN GEN FMO3 SERTA ASOSIASINYATERHADAP BOBOT POTONG DAN SIFAT FISIK DAGING PADA AYAM KAMPUNG RINDANG LARAS SUHITA

Polymorphism of GH, GHRH and Pit-1 Genes of Buffalo

Tanaman Penyerbuk Silang CROSS POLLINATED CROPS METODE PEMULIAAN TANAMAN

3. METODE PENELITIAN

BAB I PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang

DNA FINGERPRINT. SPU MPKT B khusus untuk UI

IDENTIFIKASI KERAGAMAN GEN LAKTOFERIN (LTF EcoRI) PADA SAPI FRIESIAN HOLSTEIN DI BIB LEMBANG, BBIB SINGOSARI DAN BET CIPELANG

BAB II TINJAUAN PUSTAKA

PRAKATA. Alhamdulillah syukur senantiasa penulis panjatkan kepada Allah swt., atas

I. PENDAHULUAN. Jenis kelamin menjadi salah satu studi genetik yang menarik pada tanaman

REKAYASA GENETIKA. By: Ace Baehaki, S.Pi, M.Si

METODOLOGI PENELITIAN

Transkripsi:

HASIL DAN PEMBAHASAN Amplifikasi Gen Calpastatin (CAST AluI) Amplifikasi fragmen gen CAST AluI dilakukan dengan menggunakan mesin PCR dengan kondisi annealing 60 0 C selama 45 detik, dan diperoleh produk PCR dengan panjang 624 pb (Gambar 5). Sebanyak 282 sampel yang terdiri sampel sapi Bali, sapi Madura, sapi Pesisir, sapi Aceh dan sapi Katingan telah berhasil diamplifikasi dalam penelitian ini dengan tingkat keberhasilan mencapai 100%. (-) 624 pb (+) Keterangan : M=Marker DNA. Sumur 1-10= Produk Amplifikasi Gen CAST Gambar 5. Hasil Amplifikasi Gen Calpastatin pada Gel Agarose 1,5%. Suhu penempelan primer dalam penelitian ini adalah 60 C. Kondisi ini berbeda dengan suhu penempelan primer yang disarankan oleh Palmer et al. (1998) yaitu 62 C. Menurut Muladno (2002), suhu penempelan primer (annealing) berkisar antara 36 0 C sampai dengan 72 0 C, namun suhu yang biasa digunakan 50-60 0 C. Suhu annealing merupakan suhu optimum terjadinya penempelan primer yang digunakan pada titik pemotongan DNA selama proses amplifikasi berlangsung.

Keberhasilan amplifikasi gen sangat ditentukan oleh kondisi penempelan primer DNA genom (gen target) dan kondisi mesin thermocycler. Selain itu, keberhasilan dalam mengamplifikasi DNA tergantung pada interaksi komponen campuran PCR (Palumbi, 1986). Menurut Al Soud dan Radstrom (2001) keberhasilan amplifikasi dipengaruhi oleh adanya hemoglobin yang dapat menghambat kerja enzim taq polymerase. Penentuan Genotipe Gen Calpastatin Penentuan genotipe dari gen CAST pada sapi lokal Indonesia dilakukan dengan metode PCR-RFLP menggunakan enzim rektriksi AluI. Enzim rektriksi AluI mengenali situs pemotongan AG CT yang terletak di daerah intron 1 antara ekson 1C dan 1D. Pada penelitian ini menghasilkan tiga macam genotipe yaitu genotipe GG, GC, dan CC. Pada lokus CAST AluI, ternak sapi dikatakan mempunyai genotipe GG apabila terdapat satu fragmen (pita) DNA dengan panjang 474 pb. Genotipe GC ditunjukkan dengan dua fragment DNA yaitu 474 dan 324 pb. Genotipe CC ditunjukkan dengan terdapatnya satu fragmen DNA yaitu 324 pb (Gambar 6). M 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 Genotipe GG GC GG GC GG GG GG GG GG GG GG GG GC GG GG (-) (+) Genotipe GG GC GC GG GC GG GG GG GG GG GC GG GG Keterangan : M: Marker 100 pb, 1-13: Sampel Sapi Lokal Indonesia Gambar 6. Hasil PCR-RFLP Ruas Gen Calpastatin CAST AluI pada Gel Agarose 2%. 15

Berdasarkan sekuen DNA ruas gen CAST yang diamplifikasi terdapat empat titik pemotongan AluI yang menghasilkan fragmen dengan panjang 61, 52, 474, 10, dan 27 pb yang dikenal dengan alel G, sedangkan alel C memiliki panjang fragmen 324 pb. Menurut Kubiak et al. (2004), keragaman gen calpastatin sapi disebabkan oleh adanya mutasi titik yang terjadi pada posisi antara basa ke-61 (SNP AluI) ( nomor akses GenBank AF117813). Subtitusi G-C pada titik mutasi mengubah asam amino Serine menjadi asam amino Threonine (Ser-Thr). Kode AGC untuk serine (Ser) dan kode ACC threonine (Thr). Terjadinya subtitusi basa nitrogen (transversi) G C menyebabkan munculnya situs pemotongan yang baru untuk enzim restriksi AluI. Mutasi yang terjadi pada fragmen gen CAST AluI adalah mutasi subtitusi tipe transversi yaitu terjadi perubahan basa purin (guanin) menjadi basa pirimidin (sitosin). Mutasi transversi terjadi karena adanya subtitusi antara satu basa purin (adenin atau guanin) menjadi satu basa pirimidin (timin atau sitosin) ataupun sebaliknya. Menurut Palmer et al. (1998) terjadinya mutasi pada ruas gen CAST menyebabkan keragaman gen calpastatin yang mempengaruhi kualitas karkas domba, sedangkan pada sapi Angus jantan dapat mempengaruhi sifat pertumbuhannya (Chung et al., 1999). Ternak sapi dengan genotipe homozigot (GG atau CC) berarti bahwa kedua tetua masing-masing menyumbangkan gen (alel) yang sama. Sapi dengan genotipe heterozigot (GC) menunjukkan bahwa ternak tersebut memiliki kombinasi gen yang berbeda dari kedua tetuanya. Keragaman gen CAST AluI pada sapi lokal Indonesia ditunjukkan dengan jumlah genotipe yang muncul dari masing-masing bangsa (Tabel 3). Tabel 3. Hasil Identifikasi Genotipe Gen Calpastatin pada Bangsa Sapi Indonesia Genotipe (n) Ternak Sapi Jumlah Sampel GG GC CC Sapi Bali 102 81 13 8 Sapi Madura 68 45 19 4 Sapi Pesisir 49 30 17 2 Sapi Aceh 13 8 5 0 Sapi Katingan 50 37 11 2 Total 282 201 65 16 Keterangan: n = jumlah genotipe yang muncul 16

Berdasarkan hasil identifikasi genotipe gen calpastatin pada bangsa sapi lokal Indonesia, ditemukan tiga macam genotipe yaitu GG, GC, dan CC pada sapi Bali, sapi Madura, sapi Pesisir dan sapi Katingan, sedangkan pada sapi Aceh hanya ditemukan dua macam genotipe yaitu GG dan GC. Hasil penelitian Kubiak et al. (2004) menunjukkan bahwa amplifikasi PCR-RFLP gen CAST AluI pada sapi Limousin, sapi Simmental, sapi Polish Friesian dan sapi Polish Red menghasilkan tiga genotipe yaitu GG, GC, dan CC, sedangkan pada sapi Red Angus, sapi Charolaise dan sapi Hereford menghasilkan dua genotipe yaitu GC dan CC. Keragaman Gen Calpastatin Hasil analisis frekuensi genotipe (GG, GC, dan CC) dan frekuensi ale (G, C) fragmen gen CAST AluI pada bangsa sapi Indonesia disajikan pada Tabel 4. Tabel 4. Nilai Frekuensi Genotipe dan Frekuensi Alel Gen CAST AluI pada Bangsa Sapi Indonesia Ternak Sapi N Frekuensi Genotipe Frekuensi Alel GG GC CC G C Sapi Bali 102 0,794 0,127 0,078 0,858 0,142 Sapi Madura 68 0,662 0,279 0,059 0,801 0,199 Sapi Pesisir 49 0,612 0,347 0,041 0,786 0,214 Sapi Aceh 13 0,615 0,385 0,000 0,808 0,192 Sapi Katingan 50 0,740 0,220 0,040 0,850 0,150 Total 282 0,713 0,230 0,057 0,885 0,115 Keterangan: N = jumlah individu Tabel 4 menunjukkan bahwa frekuensi genotipe GG tinggi pada sapi Bali, sapi Madura, sapi Pesisir, sapi Aceh, dan sapi Katingan, sebaliknya frekuensi genotipe CC rendah bahkan tidak ditemukan pada sapi Aceh. Genotipe CC tidak ditemukan mungkin disebabkan oleh seleksi atau perkawinan yang tidak acak (Bourdon, 2000). Hasil penelitian Kubiak et al. (2004) menunjukkan bahwa frekuensi genotipe CC tinggi ditemukan pada Red Angus, Charolaise, Limousin, dan Polish Red, sedangkan frekuensi genotipe GC tinggi ditemukan pada Simmental dan Polish Friesian. Frekuensi genotipe GC rendah ditemukan pada Red Angus, Charolaise, dan Polish Red, sedangkan frekuensi GG rendah ditemukan pada 17

Limousin, Simmental, dan Polish Friesian. Pada populasi Hereford, frekuensi genotipe CC dan GC seimbang (Tabel 5). Frekuensi alel adalah frekuensi relatif dari suatu alel dalam populasi atau jumlah suatu alel terhadap jumlah total alel yang terdapat dalam suatu populasi (Nei dan Kumar, 2000). Frekuensi alel G tinggi ditemukan pada sapi Bali, sapi Madura, sapi Pesisir, sapi Aceh, dan sapi Katingan, sebaliknya frekuensi alel C rendah pada kelima populasi sapi tersebut sehingga cenderung tidak terdapat perbedaan terhadap frekuensi alel. Hal ini berbeda dengan hasil penelitian Kubiak et al. (2004) menunjukkan bahwa frekuensi alel Bos taurus tertinggi yaitu alel C dan terendah alel G (Tabel 5). Tabel 5. Nilai Frekuensi Genotipe dan Frekuensi Alel Gen CAST AluI pada Bos taurus Ternak Sapi N Frekuensi Genotipe Frekuensi Alel GG GC CC G C Red Angus 9-0,111 0,889 0,07 0,93 Charolaise 12-0,167 0,833 0,42 0,58 Limousin 10 0,100 0,300 0,600 0,25 0,75 Simmental 9 0,111 0,556 0,333 0,39 0,61 Hereford 8-0,500 0,500 0,25 0,75 Polish Friesian 84 0,214 0,417 0,369 0,42 0,58 Polish Red 7 0,286 0,143 0,571 0,36 0,64 Total 138 0,159 0,362 0,479 0,31 0,69 Keterangan: N = jumlah individu Sumber : Kubiak et al. (2004) Keragaman genetik dalam suatu populasi digunakan untuk mengetahui dan melestarikan bangsa-bangsa dalam populasi yang terkait dengan penciri sifat khusus dan menentukan hubungan antar subpopulasi yang terfragmentasi dalam suatu spesies (Hartl dan Clark, 1997). Menurut Li dan Graur (2000), keragaman genetik antara subpopulasi dapat diketahui dengan melihat persamaan dan perbedaan frekuensi alel dan genotipe diantara subpopulasi. 18

Keragaman gen CAST AluI pada kelima sapi Indonesia bersifat polimorfik dengan ditemukannya frekuensi alel kurang dari 0,99. Menurut Nei (1987), suatu alel dikatakan polimorfik jika memiliki frekuensi alel sama dengan atau kurang dari 0,99 atau lebih dari 1% (Nei dan Kumar, 2000). Tingginya frekuensi alel G pada semua populasi sapi lokal Indonesia diduga akibat seleksi dan manajemen perkawinan yang dilakukan oleh peternak. Seleksi merupakan suatu proses yang melibatkan kekuatankekuatan untuk menentukan ternak mana yang boleh berkembang biak pada generasi selanjutnya (Noor, 2010). Seleksi yang dilakukan peternak yaitu mempertahankan individu-individu yang memilki alel G dibandingkan dengan individu-individu yang memiliki alel C. Menurut Noor (2010), faktor-faktor yang mempengaruhi frekuensi gen adalah seleksi, mutasi, pencampuran populasi, silang dalam, silang luar dan genetic drift. Keseimbangan Gen dalam Populasi Hasil uji chi-square (X 2 ), terhadap genotipe fragmen gen CAST AluI (Lampiran 4) menunjukkan bahwa frekuensi gen dalam keadaan seimbang pada populasi sapi Madura, sapi Pesisir, sapi Aceh, dan sapi Katingan. Ketidakseimbangan genotipe hanya terjadi pada populasi sapi Bali yang terdapat di Balai Pembibitan Ternak Unggul Sapi Bali. Keseimbangan frekuensi genotipe pada sapi Madura, sapi Pesisir, sapi Aceh, dan sapi Katingan menunjukkan bahwa pada populasi tersebut tidak terjadi seleksi terutama seleksi yang dilakukan terhadap gen CAST, sebaliknya ketidakseimbangan frekuensi genotipe sapi Bali di Balai Pembibitan Ternak Unggul disebabkan oleh seleksi yang secara tidak langsung berhubungan dengan gen CAST. Hukum Hardy-Weinberg menggambarkan keseimbangan suatu lokus dalam populasi diploid yang mengalami perkawinan secara acak yang bebas dari faktor yang berpengaruh terhadap terjadinya proses evolusi seperti mutasi, migrasi, dan pergeseran genetik (Gillespie, 1998). Suatu populasi dinyatakan dalam keseimbangan Hardy-Weinberg, jika frekuensi genotipe (p 2, 2pq, dan q 2 ) dan frekuensi alel (p dan q) konstan dari generasi ke generasi akibat penggabungan gamet yang terjadi secara acak. Populasi yang cukup besar tidak akan berubah dari satu generasi ke generasi lainnya jika tidak ada seleksi, migrasi, mutasi, dan genetic drift (Noor, 2008). 19

Pendugaan Nilai Heterozigositas Pendugaan nilai heterozigositas pengamatan (H o ) dan nilai heterozigositas harapan (H e ) gen CAST AluI pada bangsa sapi Indonesia tersaji pada Tabel 6. Tabel 6. Nilai Heterozigositas Pengamatan (H o ) dan Heterozigositas Harapan (H e ) gen CAST AluI pada Bangsa Sapi Indonesia Ternak Sapi N Heterozigositas Bali 102 0,127 0,244 Madura 68 0,279 0,318 Pesisir 49 0,347 0,337 Aceh 13 0,385 0,311 Katingan 50 0,220 0,255 Keterangan: N = jumlah individu Pada Tabel 5 menunjukkan bahwa nilai heterozigositas yang paling tinggi ditemukan pada sapi Aceh (0,385), sebaliknya nilai heterozigositas terendah ditemukan pada sapi Bali (0,127). Meskipun demikian, hasil yang diperoleh masih memiliki keterbatasan ukuran jumlah sampel yang digunakan terutama pada populasi sapi Pesisir, sapi Madura, sapi Aceh, dan sapi Katingan yang memiliki jumlah sampel relatif sedikit. Menurut Diyono (2009), nilai heterosigositas dipengaruhi oleh jumlah sampel, jumlah alel dan frekuensi alel. Heterozigositas menggambarkan adanya variasi genetik pada suatu populasi. Semakin tinggi nilai heterozigositas pada suatu populasi maka tinggi pula variasi genetik pada populasi tersebut (Ferguson, 1980). Menurut Marson et al. (2005) pendugaan nilai heterozigositas dapat digunakan untuk mendapatkan gambaran variabilitas genetik pada suatu populasi. Keragaman genetik dapat diukur secara akurat dengan nilai heterosigositas (ĥ) (Nei, 1987). Hasil penelitian menunjukkan bahwa sapi Pesisir dan sapi Aceh memiliki nilai heterosigositas pengamatan (H o ) yang lebih tinggi dari nilai heterosigositas harapan (H e ) dengan nilai H o masing-masing 0,347 dan 0,385. Nilai heterosigositas harapan (H e ) lebih tinggi dari nilai heterosigositas pengamatan (H o ) ditemukan pada sapi Bali, sapi Madura dan sapi Katingan. Hartl dan Clark (1997) menyatakan bahwa nilai heterozigositas pengamatan (H o ) dan nilai heterozigositas harapan (H e ) dapat digunakan sebagai salah satu cara untuk menduga nilai koefisien biak dalam H o H e 20

(inbreeding) pada suatu kelompok ternak. Tambasco et al. (2003) juga menyatakan bahwa jika terjadi perbedaan yang besar antara nilai heterozigositas pengamatan (H o ) dan nilai heterozigositas harapan (H e ) maka dapat dijadikan sebagai indikator adanya ketidakseimbangan genotipe pada populasi yang dianalisis. Nilai heterozigositas pengamatan (H o ) lebih rendah dari heterozigositas harapan (H e ) dapat dijadikan indikasi adanya derajat endogami (perkawinan dalam kelompok) sebagai akibat dari proses seleksi yang intensif (Machado et al., 2003). Menurut Moioli et al. (2004) nilai heterozigositas harapan (H e ) merupakan indikator yang baik sebagai penciri genetik yang dapat menunjukkan keragaman genetik pada suatu populasi ternak domestik. 21