TINJAUAN PUSTAKA Nata de coco

Transkripsi

1 3 TINJAUAN PUSTAKA Nata de coco Nata adalah produk pangan hasil fermentasi organisme Acetobacter xylinum. Acetobacter xylinum memproduksi nata apabila tumbuh di media yang mengandung karbon dan nitrogen. Pada kondisi ini, Acetobacter xylinum memproduksi enzim ekstraseluler yang dapat membentuk glukosa menjadi ribuan rantai fiber atau selulosa. Nata yang terbentuk memiliki kualitas yang berbeda tergantung dari substrat yang digunakan. Apabila perbandingan kandungan karbon dan nitrogen pada substrat diatur optimum, maka seluruh cairan substrat dirubah menjadi nata tanpa adanya sisa (Pambayun 2002). Menurut Mukerji dan Gupta (2001), nata biasa dikonsumsi sebagai pangan penutup (dessert) dan dibuat dari fermentasi aneka jus buah-buahan. Berbagai jenis bahan baku, seperti santan kelapa, jus kelapa, nenas, tomat, molase dan aneka jus buah lainnya yang mengandung gula dapat dibuat menjadi nata. Karena itu, nama nata didasarkan atas bahan baku yang digunakan, seperti nata de coco dibuat dari kelapa, nata de pina dibuat dari nenas, nata de tomato dibuat dari tomat, nata de soya dibuat dari ekstrak kedelai (Pambayun 2002). Nata merupakan lapisan berwarna putih atau krem, tak dapat larut, lapisan menyerupai gel dari sel dan polisakarida yang dihasilkan oleh bakteri Acetobacter xylinum, pada permukan media yang diasamkan yang mengandung gula, etil alkohol dan nutrisi lainnya (Steinkraus 1996). Menurut Suprapti (2003), lapisan kental dan transparan pada permukaan media terbentuk pertama kali pada hari hari ke-2 dan ke-3 fermentasi. Pada hari ke-3 sampai ke-5, terdapat banyak gelembung udara pada permukaan media, dan seluruh gelembung udara ini berubah menjadi lapisan tipis putih secara bertahap. Lebih lanjut, setelah kira-kira 15 hari fermentasi, lapisan polimer bakteria padat setebal 2-3 cm terbentuk pada cairan media (Mukerji dan Gupta 2001). Lapisan ini kemudian diambil dan dipotong-potong menjadi ukuran yang lebih kecil, dicuci dan dididihkan hingga asam asetat hilang. Nata disajikan setelah dimasak dalam larutan gula dan disajikan bersama campuran jus buah.

2 SNI , nata dalam kemasan mendefinisikan nata dalam kemasan sebagai produk makanan berupa gel selulosa hasil fermentasi air kelapa, air tahu atau bahan lainnya oleh bakteri asam cuka (Acetobacter xylinum) yang telah diolah dengan penambahan gula dan atau tanpa bahan tambahan makanan yang diizinkan dikemas secara aseptik. Syarat mutu nata dalam kemasan menurut SNI seperti disajikan pada Tabel 1. Tabel 1. SNI Syarat Mutu Nata dalam kemasan No Jenis Uji Satuan Persyaratan Keadaan Bau Rasa Warna Tekstur Bahan asing Bobot tuntas Jumlah gula (dihitung sebagai sukrosa) Serat makanan Bahan Tambahan Makanan Pemanis Buatan: Sakarin Siklamat Pewarna tambahan Pengawet (Na Benzoat) Cemaran Logam: Timbal (Pb) Tembaga (Cu) Seng (Zn) Timah (Sn) Cemaran Arsen (As) Cemaran Mikroba: Angka Lempeng Total Coliform Kapang Khamir * dikemas dalam kaleng % % % Sesuai SNI mg/kg mg/kg mg/kg mg/kg mg/kg APM/g koloni/g koloni/g koloni/g normal normal normal normal tidak boleh ada minimum 50 minimum 15 maksimum 4.5 tidak boleh ada tidak boleh ada Sesuai SNI maksimum 0.2 maksimum 2 maksimum 5.0 maksimum * 40.0/250.0 maksimum 0.1 maksimum 2.0 x 10 <3 maksimum 50 maksimum 50 2 Acetobacter xylinum, merupakan bakteri gram-negatif, aerobik, berbentuk batang termasuk dalam keluarga Acetobacteraceae. Di Habiatat alaminya, mayoritas bakteri mensintesa polisakarida di luar sel-nya, yang menutupi dan menge- 4

3 5 lilingi sel. Bakteri pembentuk Nata adalah salah satu contohnya. Di dalam media statis, sel memproduksi selulosa sebagai metabolit sekunder yang disatukan diluar sel menjadi pilinan selulosa yang tebal, yang disebut juga pelikel. Pelikel ini normalnya melindungi seluruh permukaan medium yang terekspos ke udara. Hal ini dimaksudkan agar selulosa yang dihasilkan meyebabkan sel terperangkap dalam pelikel untuk mencapai permukaan media dimana pasokan oksigen selalu tersedia (Hestrin and Schramm 1954), meskipun studi selanjutnya menunjukkan bahwa pelikel selulosa bisa memiliki fungsi alternatif lain selain menempatkan sel dalam kondisi aerobik (William and Cannon 1989). Hal ini telah dilaporkan bahwa pelikel selulosa melindungi sel dari efek kematian oleh sinar ultra violet, meningkatkan kolonisasi substrat seperti buah-buahan (yang merupakan habitat alami organisma tersebut) dan membantu mempertahankan kandungan air untuk mencegah pengeringan substrat untuk waktu yang lama. Dalam kondisi yang cocok hingga 50% pasokan substrat karbon memungkinkan diasimilasi menjadi selulosa untuk menghasilkan pelikel yang tebal. Faktor kritis yang langsung mempengaruhi produksi nata oleh A. xylinum dibagi menjadi dua kelompok yaitu (1) bahan-bahan fermentasi dan (2) kondisi operasi selama fermentasi. Termasuk dalam kelompok pertama adalah tipe/strain mikroorganisma yang digunakan, komposisi media yang selanjutnya dibagi lagi menjadi sumber karbon yang digunakan sebagai substrat dan sumber nitrogen atau mineral yang ditambahkan kedalam media. Kelompok kedua adalah parameterparameter seperti ph, oksigen, suhu, konsentrasi relatif dari substrat dan tipe metode fermentasi atau disain fermentor yang digunakan. Masing-masing kondisi tidak hanya menentukan kecepatan dihasilkannya nata tetapi juga memperngaruhi karakteristik fisik dan kimia selulosa (nata) yang dihasilkan. Ratusan strain berbeda dari genus Acetobacter yang dapat menghasilkan selulosa, dan pemilihan strain terbaik yang menghasilkan selulosa adalah langkah pertama yang biasa dilakukan untuk optimasi prosedur. Satu strain Acetobacter xylinum yang diketahui menghasilkan gel selulose hingga ketebalan 5-7 cm dikelompokkan sebagai penghasil selulosa berlebih (Cannon and Anderson 1991). Sudah banyak diketahui bahwa A. xylinum mempunyai kemampuan mensintesa selulosa dari berbagai substrat, namun dilaporkan terdapat perbedaan

4 pendapat mengenai tipe sumber karbon yang dapat memberikan kecepatan produksi terbaik. Salah satu penelitian (Masaoka, et al., 1993), glukosa memberikan hasil selulosa tertinggi melebihi sumber karbon lainnya. Penelitian lain (Embuscado et al., 1994), fruktosa dipilih untuk menghasilkan selulosa tujuh kali lebih banyak dari selulosa yang dihasilkan oleh glukosa. Perbedaan ini dimungkinkan terjadi karena perbedaan strain pada masing-masing penelitian. Sumber nitrogen yang pernah dibandingkan penggunaanya adalah yang berasal dari sumber organik seperti ekstrak khamir dan sumber anorganik seperti ammonium sulfat yang digunakan dalam produksi selulosa oleh strain penghasil selulosa berlebih A. xylinum (Embuscado et al., 1994). Nilai ph media bisa jadi merupakan studi awal yang dilakukan untuk mengetahui kondisi biosintesisis selulosa dari bakteri. Banyak penelitian setuju bahwa ph optimum untuk menghasilkan selulosa antara ph 4 sampai 6 dengan nilai maksimum pada 5 sampai 5.5. (Hestrin et al., 1954, Lapuz et al., 1967, Masaoka et al., 1993, Embuscado et al., 1994). Diluar batas ini selulosa yang dihasilkan minimal dan mempengaruhi pertumbuhan walaupun sel Acetobacter diketahui dapat bertahan pada nilai ph yang rendah. Oksigen sangat dibutuhkan dalam produksi selulosa, sel A. xylinum tidak dapat membentuk membran koheren ketika tumbuh dalam lapisan udara nitrogen (Hestrin et al., 1954). Penelitian lain (Schramm and Hestrin, 1954), pemberian oksigen bertekanan tinggi (100% oksigen udara) menambah kecepatan produksi selulosa. Penelitian selanjutnya menunjukan tingkat oksigen yang rendah dalam fase gas sekitar 10% dan 15% (dibandingkan dengan 21% pada lapisan udara normal) meningkatkan produksi selulosa meskipun pertumbuhan sel tetap konstan (Yamanaka et al., 1994). Pengaruh suhu dalam produksi nata menyerupai ph, yaitu dalam kisaran tertentu. Penelitian kebutuhan pertumbumbuhan organisma nata (Lapuz et al., 1967) berkesimpulam bahwa sel tumbuh dan pelikel yang dihasilkan terjadi pada kisaran suhu o C. Hasil ini dapat diterima ditunjukkan dengan hampir semua isolasi strain A. xylinum dari buah yang membusuk dilakukan pada suhu ruangan. Pemanfaatan selulosa dari bakteri (nata) yang telah berhasil secara komersial adalah sebagai produk pangan, nata de coco. Berbagai produk pangan 6

5 7 juga telah disarankan untuk menggunakan selulosa dari bakteri ini seperti sebagai bahan tambahan rendah kalori, pengental, penstabil dan untuk memodifikasi tekstur (Okiyama et al., 1992). Aplikasi untuk pangan proses seperti sebagai minuman coklat rendah kalori, pasty condiments, dan es krim sudah dicoba (Okiyama et al., 1993). Pemanfaatan lain diluar produk pangan antara lain untuk diafragma akustik, kertas berkekuatan tinggi, bahan pengikat untuk pembuatan kertas dari bahan berserat lain, pelindung luka, pelapis permukaan, serat tekstil dan banyak lagi kegunaan potensial lainnya. Nata dapat dikategorikan sebagai probiotik. Nata berkontribusi membantu proses pencernaan di usus kecil dan menyerap air di usus besar. Nata mengandung + 2.5% sellulosa, 2.75% serat kasar, % protein, 0.35% lemak, dan sisanya air. Protein pada nata umumnya berasal dari Acetobacter xylinum yang terjebak didalam lapisan serat (Hidayat et al. 2006). Pengaruh Keasaman pada Pertumbuhan Mikroorganisme Pengawetan pangan menggunakan asam lebih lama dari yang telah ditulis sejarah. Hal itu seperti ketika pertama kali pangan diawetkan dengan cara fermentasi seperti yoghurt dan saurkraut. Pangan-pangan tersebut diawetkan oleh asam laktat yang diproduksi karena adanya bakteri yang ditumbuhkan dalam pangan. Asam laktat ini menghambat pertumbuhan organisme lainnya yang dapat merusak pangan (National Food Processors Association 1995). Food and Drug Administration (FDA) mendifinisikan pangan yang diasamkan (acidified foods) sebagai pangan berasam rendah yang dalam pembuatannya ditambahkan asam atau pangan asam untuk menghasilkan produk yang memiliki kesetimbangan ph akhir 4.6 atau kurang dan memiliki aktifitas air (a w ) lebih besar dari Pangan jenis ini disebut dengan pickles. Definisi ini menyebabkan beberapa pangan tidak termasuk produk yang diasamkan yaitu minuman karbonasi, jam, jelli, pangan yang yang diawetkan dengan cara fermentasi. Namun demikian prinsip-prinsip yang digunakan untuk mengolah dapat digunakan dan mungkin sama (National Food Processors Association 1995).

6 Spora dari Clostridium bolinum tidak akan bergerminasi dan tumbuh pada pangan yang memiliki ph di bawah 4.6. Nilai ph 4.6 telah dipilih menjadi pembagi pangan asam dan pangan berasam rendah. Spora Clostridium botulinum dan bakteri lain penyebab kerusakan pangan tetap dapat ditemukan dipangan asam dan pangan berasam rendah (National Food Processors Association 1995). Penerapan panas sedang membunuh semua bakteri tidak pembentuk spora atau seluruh sel vegetatif dipangan berasam rendah dan pangan asam. Pada pangan berasam rendah, panas yang tinggi harus diterapkan untuk membunuh spora bakteri Costridium botulinum atau spora penyebab kerusakan pangan lainnya. Pada pangan asam spora dari C. Botulinum tidak perlu dikhawatirkan. Spora pada pangan tersebut dihambat pertumbuhan dan perkembangannya karena memiliki ph 4.6 atau lebih kecil (National Food Processors Association 1995). Menurut Haryadi (2000), untuk makanan asam, proses termal didisain berdasarkan pada ketahanan panas bakteri fakultatif anaerob, seperti Bacillus coagulan (B. thermoacidurans), B. mascerans, dan B. polymyxa. Proses Termal Tujuan utama proses termal adalah untuk menghasilkan pangan yang steril komersial. Perbedaan sterilisasi total dengan sterilisasi komersial adalah pada sterilisasi komersial, masih terdapatnya beberapa mikroba yang masih dapat hidup setelah pemberian panas (sterilisasi). Namun, karena kondisi dalam kemasan selama penyimpanan yang terjadi dalam praktek komersial sehari-hari, maka mikroba tersebut tidak mampu tumbuh dan berkembang biak, sehingga tidak dapat membusukkan produk yang terdapat di dalam kemasan (Winarno 1994). Penentuan proses termal didasarkan atas beberapa faktor. Pertama, daya tahan panas dari mikroorganisme yaitu jumlah panas yang dibutuhkan untuk membunuh mikroorganisme harus diketahui untuk setiap produk yang spesifik. Kedua, penentuan kebutuhan panas spesifik produk (National Food Processors Association 1995). Pangan yang diasamkan, proses pengisian panas-penahanan (hot-fill-hold process) bisa digunakan. Cara ini membutuhkan pengisian secara panas, dan 8

7 9 penahanan (holding) produk beberapa waktu baru kemudian dilanjutkan dengan pendinginan (Fardiaz 2000). Produk yang diasamkan dapat dilakukan dengan pasteurisasi, pemasakan atmosfir dalam waktu tertentu. (National Food Processors Association 1995). Lebih lanjut menurut Fardiaz (2000), proses termal dengan alat pasteurisasi didasarkan pada suhu akhir produk pada tahap akhir dari bagian pemanasan. Pembacaan suhu maksimum dari termometer dapat digunakan untuk menetapkan proses bagi produk-produk asam atau terasamkan. Pasteurisasi adalah proses pemanasan pada suhu yang relatif rendah yaitu suhu dibawah 100 o C akan tetapi dengan waktu yang bervariasi dari mulai beberapa detik sampai beberapa menit tergantung dari tingginya suhu tersebut. Makin tinggi suhu pasteurisasi, makin singkat proses pemanasannya. Pasteurisasi umumnya dikombinasikan dengan proses pengawetan lainnya seperti fermentasi atau penyimpanan pada suhu rendah. Pada bahan pangan yang tergolong asam (ph<4.5), pasteurisasi bertujuan untuk memperpanjang umur simpan dan untuk membunuh mikroorganisme pembusuk seperti khamir dan kapang serta untuk mengaktivasi enzim yang terdapat dalam bahan pangan tersebut (Fellow 2000). Pasteurisasi dapat dilakukan pada suhu yang relatif rendah dalam waktu yang relatif lama, yaitu 65 o C selama 30 menit atau pada suhu tinggi dalam waktu singkat yaitu 72 o C selama 15 detik. Semakin tinggi suhu pasteurisasi, semakin singkat proses pemanasannya. Beberapa bakteri vegetatif yang tahan panas (termofilik) dan spora tahan terhadap proses fermentasi. Setelah pasteurisasi, produk harus didinginkan dengan cepat untuk mencegah pertumbuhan bakteri yang masih hidup (Fardiaz 1992). Dalam pasteurisasi, konsep yang umum digunakan adalah konsep 6D. Menurut Fellow (2000) dan Holdsworth (1997) konsep ini cukup memadai dari segi kualitas dan keamanam pangan. Namun demikian dalam pengalengan makanan secara komersial direkomendasikan juga nilai pasteurisasi (nilai P) dengan konsep 2D dan 3D untuk mikroba targetnya (Silva dan Gibbs 2001). Kondisi dan tujuan pasteurisasi yang biasa dilakukan untuk beberapa produk digambarkan pada Tabel 2.

8 Tabel 2. Kondisi dan tujuan pasteurisasi dari beberapa produk pangan (Haryadi, 2000) Jenis Produk Tujuan Utama Tujuan Kondisi Minimum Pangan Pasteurisasi sampingan/ikutan Proses Pasteurisasi ph < 4,5 Sari Buah Bir ph > 4,5 Susu Telur cair Es Krim Inaktivasi enzim (pektinesterase dan poligalakturonase) Membunuh mikroorganisme pembusuk (khamir, Lactobacillus sp.) dan sisa khamir/ ragi yang ditambahkan pada proses fermentasi (Saccharomyces sp) Membunuh mikroorganisme patogen (Brucella abortis, Mycobacterium tuberculosis(coxiella burnettii) Membunuh mikroorganisme patogen Salmonella sp. Membunuh mikroorganisme pathogen Membunuh 65 o C selama 30 mikroorganisme menit; pembusuk (kapang 77 o C selama 1 menit, dan khamir) 88 o C selama 15 detik o C selama 20 menit (dalam botol); o C selama 1-4 menit pada tekanan kpa Membunuh mikroorganisme pembusuk dan beberapa enzim Membunuh mikroorganisme pembusuk Membunuh mikroorganisme pembusuk 63 o C selama 30 menit, 71,5 o C selama 15 detik 64,4 o C selama 2,5 menit; 60 o C selama 3,5 menit 65 o C selama 30 menit; 71 o C selama 10 menit; 80 o C selama 15 detik Menurut Haryadi (2000) pada prinsipnya bahan pangan dapat dipasteurisasi pada saat sesudah dikemas maupun sebelum dikemas. Jika bahan pangan dikemas dalam kemasan gelas, maka air panas sering digunakan sebagia medium pemanas untuk mengurangi kemungkinan terjadinya pecah (thermal shock; yaitu pecah karena adanya perubahan suhu secara mendadak). Perbedaan suhu maksimum antara bahan kemasan gelas dan air biasanya berkisar sekitar 20 o C pada pemanasan dan sekitar 10 o C untuk proses pendinginan. Untuk bahan pangan yang dikemas dengan bahan logam (metal) dan atau plastik dapat diproses dengan menggunakan uap panas karena resiko thermal shock relatif kecil. Pada umumnya, setelah pasteurisasi bahan pangan didinginkan kembali sampai mencapai suhu sekitar 40 o C untuk mengevaporasi sisa air, sehingga (i) mencegah terjadinya 10

9 11 proses korosi dan (ii) mempermudah proses penempelan dan pengeleman label pada permukaan bahan pengemas. Keberhasilan penuh dari pengolahan dengan panas pada produk pangan adalah terpenuhinya kecukupan panas untuk inaktivasi mikroba penyebab kebusukan dan keracunan. Untuk itu perlu ditentukan sejauh mana ketahanan mikroba terhadap panas hingga proses dapat tercapai pada kombinasi suhu dan waktu yang tepat (Holdsworth 1997). Ketahanan panas mikroorganisme biasanya dinyatakan dengan istilah waktu reduksi desimal (decimal reduction time) atau waktu yang dibutuhkan pada suhu tertentu untuk menurunkan jumlah sel atau spora sebesar satu siklus log, atau waktu yang diperlukan pada suhu tertentu untuk membinasakan organisme atau sporanya, disebut dengan nilai D. Nilai Z suatu organisme atau spora adalah selang suhu terjadinya penambahan atau pengurangan sepuluh kali lipat dalam waktu yang dibutuhkan baik untuk menurunkan sampai 90% atau pembinasaan seluruhnya (Heldman dan Singh 2001). Kinetika inaktivasi mikrorganisme karena proses pemanasan digambarkan pada Gambar 1, sedangkan pengaruh suhu terhadap pada nilai D dan Z digambarkan pada Gambar 2. Sel vegetatif bakteri termasuk bakteri pembentuk spora, kapang dan khamir pada umumnya memiliki nilai D berkisar antara 0.5 sampai 3 menit pada suhu 65 o C. Nilai Z untuk sel vegetatif bakteri, kapang dan khamir berkisar antara 6 sampai 16 o C dan biasanya adalah 10 o C (Garbutt 1997). Beberapa nilai D untuk beberapa jenis bakteri di jelaskan pada Tabel 3. Ketahanan panas mikroba dipengaruhi oleh sejumlah faktor, antara lain: (a) umur dan keadaan organisme sebelum dipanaskan, (b) komposisi medium bagi suatu organisme atau spora itu tumbuh terutama adanya garam, zat pengawet, lemak dan minyak dan bahan penghambat lainnya serta adanya spora yang masih terdapat setelah pemanasan, (c) ph dan aw medium waktu pemanasan dan (d) suhu pemanasan National Food Processors Association 1995).

10 Gambar 1. Logaritma jumlah mikroba yang hidup sebagai fungsi waktu pada suhu pemanasan T Tabel 3. Nilai D untuk beberapa jenis bakteri penyebab kerusakan makanan kaleng (Hariyadi, 2000) Jenis Bakteri Jenis kerusakan Nilai D Untuk produk kaleng berasam rendah (ph >4.5) Termofilik D 121C = menit Bacillus stearothermofilus flat sour Clostridium hard swell D 121C = menit thermosacharolyticum Clostridium nigrificans sulfide spoilage D 121C = menit Mesofilik: Clostridium botulinum, putrid swell D 121C = 6 12 detik Tipe A + B Clostridium Sporogenes D 121C = 6 90 detik Untuk produk asam (ph ), penyebab kerusakan termofilik Bacillus coagulans D 121C = 1 4 detik (facmesofilik) Untuk produk asam (ph ), penyebab kebusukan mesofilik Bacillus polymyxa D 100C = 6 30 detik Bacillus nacerans Clostridium pasterianum butyric acid spoilage Untuk produk sangat asam (ph < 4.0), penyebab kebusukan mesofilik Lactobacillus D 65.5C = menit Leuconostoc spp. Kapang Byssochlamus fulfa dan B. D 90C = 1 2 menit nivea 12

11 13 Gambar 2. Kurva semilogaritma hubungan nilai D dengan suhu. Nilai Z diperoleh dari kebalikan nilai kemiringan kurva Nilai Pasteurisasi dan Nilai Sterilisasi Kemampuan proses termal bergantung pada karakteristik nilai Z mikroorganisme dan suhu sterilisasinya. Simbol F biasanya digunakan untuk menunjukkan nilai sterilisasi. Nilai F dengan Z = 18 o F biasa disebut Fo, karena nilai Z= 18 o F sangat umum digunakan untuk spora khususnya C. Botulinum. Nilai sterilisasi adalah dasar penentuan matematika untuk kecukupan proses panas. Nilai ini dapat dihitung dengan persamaan (1) atau (2): F = Lr.dt (1) atau Lr = 10 (T-Tr)/z (2) dimana : F : nilai sterilisasi Lr : laju kematian (lethal rate) Z : faktor kinetik T : suhu produk Tr : suhu referensi nilai D T (menit)

12 Sama halnya dengan pasteurisasi, Tucker et.al. (2003) menyatakan bahwa nilai pasteurisasi dinyatakan dengan simbol P. Nilai P dapat dihitung dengan integral kekuatan membunuh melalui percobaan antara waktu dan suhu sebagai berikut (persamaan (3)): o P = 10 o (T(t)-Tref)/ z.dt (3) dimana: T (t) T Z ref : suhu produk ( o C) : suhu referen pada nilai D T (menit) : faktor kinetik Selain itu ditambahkan bahwa untuk menghitung kecukupan proses pasteurisasi yang disebut nilai P adalah dengan persamaan (4) berikut ini: dimana: P N initial N D final T P = D T. log (N initial / N final ) (4) : nilai pasteurisasi (menit) : jumlah mikroba awal sebelum dipasteurisasi (CFU/ml) pada suhu tertentu : jumlah mikroba akhir setelah dipasteurisasi (CFU/ml) : decimal reduction time pada suhu tertentu untuk mereduksi jumlah mikroba dengan faktor 10 menit. Seperti yang telah dijelaskan di atas, untuk produk asam dengan ph ebih kecil dari 4.5, yang disebut dengan produk asam, mikroorganisme penyebab keracunan pangan seperti Clostridium botulinum tidak dapat bergerminasi, sehingga konsokuensinya yang dibutuhkan adalah untuk menginaktivasi kapang dan khamir. Hal ini dapat dilakukan dengan suhu yang lebih rendah dengan hasil Fo yang sangat rendah dengan nilai lethal rate pada suhu 80 o C adalah 7.76 x 10-5 min -1. Dalam pelaksanaannya suatu unit yang digunakan untuk menghitung efek kematian dari jenis proses ini adalah nilai pasteurisasi (P) (Shapton 1966 ; Shapton et al di dalam Holdsworth 1992) dirumuskan dengan persamaan (5) berikut (suhu referensi 65 o C): P 10 t 65 = 10 (T-65)/10 dt (5) o 14

13 15 Untuk pasteurisasi produk bir, PU (pasteurization unit) disarankan oleh (Ball dan Olson 1957 di dalam Holdsworth 1992) dan didefinisikan sebagai berikut (persamaan (6)): PU = exp[2.303(t-140)/18] (6) PU ekivalen dengan P dalam derajat Fahreinheit. Hal ini telah dikembangkan menjadi unit pasteurisasi. Satu PU adalah ekuivalen dengan proses selama 1 menit pada suhu 140 o F (60 o C) (Portno 1968 di dalam Holdsworth 1992), dengan nilai Z = 7 o C untuk kerusakan mikroba produk bir. Kriteria ini digunakan oleh Fricker (1984) di dalam Holdsworth (1992) dengan menyarankan bahwa proses yang memuaskan untuk stabilitas produk bir adalah 5.6 PU. Untuk industri susu, Kessler (1981) didalam Holdsworth 1992 mengusulkan nilai P *, didasarkan atas suhu referensi 72 o C dan nilai Z adalah 8 o C dengan menggunakan persamaan Shapton 1966 dan Shapton et al di atas, dengan nilai P * = 1 pada proses industri susu untuk hasil yang memuaskan. Pasteurisasi juga digunakan untuk produk sous vide yang disimpan dan didipasarkan pada suhu rendah. Umumnya proses 6D digunakan untuk produk ini yang ekuivalen dengan proses panas selama 12 menit pada suhu 70 C. Proses ini cukup untuk menginaktifkan bakteri patogen Listeria monocytogenes, namun hal ini masih jauh dari cukup untuk menginaktifkan spora Clostridium botulinum. Oleh karena itu diperlukan penyimpanan produk pada suhu rendah dengan maksud menghindari tumbuhnya spora botulinum (Holdsworth 1992). Produk dengan ph prosesnya dirancang untuk mengawasi tumbuhnya dan tahannya organisme pembetuk spora seperti Bacillus coagulans, B. polymyxa, B. macerans, dan anaerob butirat seperti C. Butyricum dan C. Pasteurianum. Produk dengan ph lebih rendah suhu dibawah 100 C biasanya sudah cukup, namun kapang tahan panas seperti Byssoclamys fulva dan B. nivea dimungkinkan ada dan apabila bergerminasi dan memproduksi enzim dapat menimbulkan pemecahan struktur produk buah-buahan khususnya stroberi. Target mikroba untuk proses pasteurisasi pada umunya dilakukan sama terhadap mikroorganisme yang memiliki data tahan panas dan kemampuan merusak produk. Namun demikian mikroba target yang digunakan di industri o o

14 pengolahan buah-buahan memiliki ketahanan terhadap panas lebih kecil dibandingkan dengan spora dari Alicyclobacillus acidoterrestris yang merupakan bakteri penghasil spora yang menyebabkan kebusukan pada industri jus buahbuahan (Silva dan Gibbs 2001). Alicyclobacillus acidoterrestris merupakan bakteri tahan panas dan asam atau acidophilic thermophilic bacteria. Bakteri ini tumbuh baik pada lingkungan asam seperti jus buah-buahan dan bertahan pada ph rendah sampai 2.5. Bakteri ini tumbuh baik pada suhu yang ditinggikan. Spora yang dihasilkan dari bakteri ini dapat bertahan hidup dari perlakuan pasteurisasi yang diberikan pada hampir semua produk jadi. Perlakuan pemanasan justru dapat mengaktivasi spora untuk tumbuh (Terano et al. 2005). Menurut Splittstoesser et.al. (1994) di dalam Silva dan Gibbs (2001), kinetika inaktivasi bakteri Alicyclobacillus acidoterrestris pada produk buahbuahan dalam hal ini jus anggur memiliki suhu standar 95 o C memiliki nilai D = 2.4 menit dan Z = 7.2 o C. Standar ini yang digunakan adalah karena karakteristik ph dan padatan terlarut (brix) jus anggur, mirip dengan karakteristik produk nata de coco. 16