Penentuan Temperatur Optimum Terhadap Aktivitas Protease Serin Yang Dihasilkan Oleh Stadium L3 Ascaridia galli

Transkripsi

1 Penentuan Temperatur Optimum Terhadap Aktivitas Protease Serin Yang Dihasilkan Oleh Stadium L3 Ascaridia galli Ummu Balqis 1 dan Yudha Fahrimal 2 1, 2 Staf Pengajar Pada Fakultas Kedokteran Hewan, Universitas Syiah Kuala, Jl. Hasan Krueng Kale no.4, Darussalam Banda Aceh * u_balqis@yahoo.com ABSTRAK Penelitian ini bertujuan untuk menentukan temperatur optimum aktivitas protease serin yang dilepaskan oleh stadium L 3 Ascaridia galli. Sebanyak 5 10 ekor L 3 A. galli dikultur secara in vitro dalam setiap ml medium Rosswell Park Memorial Institute (RPMI 1640), ph 6,8, tanpa merah fenol. Kultur diinkubasikan pada temperatur 37 o C dan 5% CO 2 selama 3 hari. Medium kultur stadium L 3 A. galli diuji aktivitas enzimatik terhadap kasein 2% pada inhibitor/aktivator (PMSF, EDTA, 1,10phenanthroline, Pepstatin A, E64), dan pada berbagai tingkatan temperatur, yaitu berturutturut pada 27 o C, 37 o C, 40 o C, 50 o C, 60 o C, 70 o C dan 80 o C. Temperatur optimum ditentukan berdasarkan aktivitas enzimatik tertinggi protease serin. Hasil penelitian menunjukkan bahwa temperatur optimum protease serin yang dilepaskan oleh stadium L 3 A. galli adalah 70 o C. Hasil tersebut mengindikasikan bahwa temperatur berperan penting terhadap reaksi enzimatik protease serin yang dilepaskan oleh stadium L 3 A. galli. Kata kunci: Ascaridia galli, nematoda, protease serin ABSTRACT This research was carried out to determine the temperature optimum of serine protease activity secreted by A. galli L 3 stage. L 3 were cultured in vitro (5 10 ml 1 ) in flasks containing rosswell park memorial institute (RPMI) 1640 media, ph 6.8, without phenol red. Cultures were incubated at 37 0 C in 5% CO 2 for 3 days. Enzymatic activity of culture fluid of A. galli L 3 stage was tested against casein 2% at some inhibitor/activators (PMSF, EDTA, 1,10phenanthroline, Pepstatin A, E64), and at different temperature, namely 27 o C, 37 o C, 40 o C, 50 o C, 60 o C, 70 o C and 80 o C respectively. Temperature optimum was determined based on the highest enzymatic activity of serine protease. The result showed that temperature optimum of the serine protease secreted by A. galli L 3 stage is 70 o C. The results indicate that the temperature played an important role against enzymatic activity of serine protease secreted by A, galli L 3 satage. Key words: Ascaridia galli, nematode, serine protease 77

2 Pendahuluan Protease atau enzim proteolitik adalah enzim yang memiliki daya katalitik yang spesifik dan efisien terhadap ikatan peptida dari suatu molekul polipeptida atau protein. Protease dapat diisolasi dari tumbuhan (papain dan bromelin), hewan (tripsin, kimotripsin, pepsin, dan renin), mikroorganisme seperti bakteri, kapang, virus, dan cacing parasitik seperti cestoda, trematoda, dan nematoda. Protease yang diekskresi/sekresikan oleh cacing esensial untuk proses perkembangan dan kelangsungan hidup seperti penetasan telur, molting, dan exsheathment parasit. Protease yang dihasilkan cacing nematoda parasitik memainkan peranan penting pada proses penetrasi dan migrasi parasit ke jaringan inang definitif. Todorova (2000) menyatakan bahwa enzim proteolitik yang disekresikan parasit untuk invasi ke jaringan terdiri dari dua jenis protease, yaitu protease serin dan metal. Kehadiran kedua jenis protease tersebut di dalam produk yang disekresikan cacing nematoda telah dibuktikan oleh Cock et al. (1993) pada Ostertagia ostertagi, Todorova (2000) pada Trichinella spiralis, Rhoads et al. (1997 dan 2001) pada Ascaris suum, dan Iglesias et al. (2005) pada Anisakis simplex. Karakterisasi protease sudah luas dilakukan dari berbagai stadium secara in vitro pada cacing nematoda, misalnya stadium infektif (L 3 ) dan stadium dewasa cacing Trichostrongylus colubriformis dan Haemonchus contortus (Hadas dan Stankiewicz, 1997). Karakter protease yang disekresikan cacing nematoda penting diketahui sebagai pengetahuan dasar biologi parasit. Berdasarkan activesite region pada protease sangat memungkinkan untuk merancang inhibitor spesifik sebagai strategi pengendalian dan tindakan terapi terhadap cacing parasitik. Aktivitas protease yang dilepaskan selama perkembangan parasit sangat dipengruhi oleh beberapa faktor, diantaranya adalah faktor temperatur. Reaksi kimia dapat dipengaruhi oleh temperatur, maka reaksi yang menggunakan katalis enzim juga dapat dipengaruhi oleh temperatur. Pada temperatur rendah reaksi kimia berlangsung lambat, sedangkan pada temperatur yang lebih tinggi reaksi berlangsung lebih cepat. Protease yang dilepaskan oleh A. galli adalah suatu enzim (protein), maka kenaikan temperatur dapat menyebabkan terjadinya proses denaturasi. Apabila terjadi proses denaturasi, maka bagian aktif 78

3 protease akan terganggu dan dengan demikian konsentrasi efektif enzim menjadi berkurang dan kecepatan reaksinya pun akan menurun. Oleh karena itu, fokus penelitian ini adalah untuk menentukan aktivitas optimum protease dari produk ekskretori/sekretori stadium L 3 A. galli. Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui aktivitas optimum dari protease yang dilepaskan melalui ekskretori/sekretori stadium L 3 A. galli terhadap temperatur. Bahan dan Metode Penelitian Kultivasi Stadium L 3 A. galli Secara in vitro Larva L 3 A. galli diperoleh dari isi usus ayam kampung yang disaring di dalam gelas piala. Isi usus ditempatkan di dalam wadah saringan pada bagian atas gelas piala yang berisi air selam satu jam sehingga L 3 A. galli akan turun ke dasar gelas piala. Larva diambil dengan pipet pasteur dan dihitung jumlahnya dibawah mikroskop. Sebanyak ekor L 3 A.galli dikultur secara in vitro dalam cawan petri berisi 5 ml medium RPMI1640 ph 6,8 (tanpa phenol red). Media diberi suplemen 100 unit/ml penicillin G, 100 g/ml streptomisin, 0,25 g/ml amphotericin B, dan 5 g/ml gentamisin. Untuk mendapatkan enzim yang dilepaskan oleh stadium larva L 3 A. galli, larva dikultur selama 3 hari pada temperatur 37 0 C dan tekanan CO 2 5%. Cairan kultur dikoleksi, disentrifugasi ( g) dan disaring dengan membran filter (0,2 m), serta didialisa dengan phosphatebuffered saline (PBS) untuk mendapatkan ekskretori/sekretori A. galli (Rhoads et al., 1997; dan Balqis et al., 2005). Pengaruh Berbagai Inhibitor/Aktivator Tujuan dari karakterisasi ini adalah untuk mengetahui golongan enzim. Inhibitor yang digunakan adalah inhibitor protease phenil methanyl methane sulfonyl fluoride (PMSF) 0,5 dan 1 mm, ethylene diamine tetraacetic (EDTA) 1 dan 10 mm, 1,10phenanthroline 1 mm, pepstatin A 1 g/ml, dan E64 (10 g/ml dan 50 g/ml). Uji pengaruh inhibitor dilakukan dengan cara sebagai berikut: enzim, buffer TrisHCl 10 mm, ph 8, dan inhibitor dipreinkubasi pada temperatur kamar (25 C) selama 1 jam. Larutan tersebut diuji aktivitas enzimmya. Reaksi 79

4 diawali dengan penambahan substrat musin. Aktivitas enzim tersebut dibandingkan dengan aktivitas enzim non inhibitor (Kong et al., 2000). Pengukuran Aktivitas Enzim Pada Berbagai Tingkatan Temperatur Aktivitas protease diuji terhadap casein. Campuran 500 l 0,6% casein dalam Tris mm (ph 8,0) dan 100 l enzim diinkubasi selama 2 jam pada temperatur 40 o C. Reaksi dihentikan dengan penambahan 500 l asam trichloroacetic 0,4 M dan diinkubasikan pada 40 o C selama 10 menit. Campuran tersebut disentrifus, 200 l supernatan dicampur dengan 1 ml sodium carbonate dan 200 l reagen FolinCiocalteu, dan diinkubasikan pada 27 o C, 37 o C, 40 o C, 50 o C, 60 o C, 70 o C dan 80 o C selama 20 menit. Jumlah degradasi ditentukan dari absorbansi pada 578 nm (Kong et al., 2000; dan Balqis et al., 2006). Aktivitas 1 unit enzim ditetapkan sebagai jumlah enzim yang dibutuhkan untuk menguraikan 1 g tyrosine dari casein di dalam 1 ml volume reaksi per menit. Pengukuran aktivitas enzim mengikuti metode Bergmeyer (Rukayadi dan Suhartono, 1999) seperti yang disajikan pada Tabel 1. Untuk setiap sampel yang dianalisis, harus disertai dengan blanko dan standar, dengan perincian sebagai berikut. Tabel 1. Prosedur pengukuran aktivitas protease mengikuti metode Bergmeyer (Rukayadi dan Suhartono, 1999) Pereaksi Sampel (ml) Blanko (ml) Standart (ml) Buffer TrisHCl (0,2M), ph 8 Substrat musin 1%, ph 8,0 Enzim dalam CaCl 2 (2mmol/l) Tirosin standar Akuades 0,20 Inkubasi pada temperatur 70 0 C selama 10 menit TCA (0,1 M) Akuades 2,00 0,2 Enzim dalam CaCl 2 (2 mmol/l) 2,00 0,2 0,20 2,00 0,2 Didiamkan pada temperatur 37 0 C selama 10 menit, dan sentriguge 6000 rpm selama 10 menit Filtrat Na 2 CO 3 Pereaksi lain 1,5 5,00 1,5 5,00 1,5 5,00 Didiamkan pada temperatur 37 0 C selama 20 menit Diukur dengan spektrometer pada λ=578 nm 80

5 Hasil dan Pembahasan Senyawa PMSF merupakan inhibitor spesifik bagi protease serin secara sempurna menghambat aktivitas protease. Aktivitas enzim menurun sebesar 98,2% setelah penambahan inhibitor 0,5 mm PMSF dan aktivitasnya hilang 100% setelah penambahan 1 mm PMSF. Sebaliknya, penambahan inhibitor/aktivator jenis yang lain yaitu EDTA dan phenantrolin spesifik untuk protease metal, pepstatin A spesifik untuk protease asam dan E64 spesifik untuk protease sistein, tidak menghambat aktivitas enzim protease dari ekskretori/sekretori stadium L 3 A. galli. Berdasarkan hasil yang diperoleh, maka enzim dari ekskretori/sekretori digolongkan sebagai enzim protease serin. Persentase aktivitas protease terhadap inhibitor/aktivator disajikan dalam Tabel 2. Tabel 2. Pengaruh inhibitor atau aktivator terhadap aktivitas protease Inhibitor/aktivator Konsentrasi akhir Aktivitas (%) Kontrol 100,0 Inhibitor serin: PMSF 0,5 mm 1,8 1 mm 0 Inhibitor metal: EDTA 1 mm 107,1 10 mm 96,7 1,10phenanthroline 1 mm 91,4 Inhibitor aspartat: Pepstatin A 1 g/ml 109,4 Inhibitor sistein: E64 10 g/ml 93,1 50 g/ml 98,2 Inhibitor yang digunakan pada penelitian ini adalah inhibitor protease PMSF 0,5 dan 1 mm, EDTA 1 dan 10 mm, 1,10phenanthroline 1 mm, pepstatin A 1 g/ml, dan E64 (10 g/ml dan 50 g/ml). Hasil penelitian menunjukkan bahwa penambahan PMSF menyebabkan penurunan aktivitas enzim yang sangat besar. Seperti yang disajikan pada Tabel 2 terlihat bahwa aktivitas proteolitik sangat dihambat oleh PMSF. Semakin tinggi kadar PMSF semakin besar pula daya hambatnya. Penambahan PMSF 0,5 mm menyebabkan aktivitas yang tersisa tinggal 1,8%, sedangkan pada penambahan PMSF 1 mm tidak ada aktivitas enzim yang tersisa (0%). Penghambatan aktivitas enzim oleh PMSF menunjukkan bahwa 81

6 enzim yang diekskresi/sekresikan oleh stadium L 3 A. galli diklasifikasikan ke dalam jenis protease serin (Kong et al., 2000 dan Ford, 2005). Penambahan inhibitor EDTA 1 dan 10 mm, 1,10phenanthroline 1 mm, pepstatin A 1 g/ml, dan E64 (10 g/ml dan 50 g/ml) tidak terlalu berpengaruh terhadap aktivitas proteolitik (Tabel 2). EDTA dan 1,10 phenanthroline adalah inhibitor spesifik terhadap enzim metalloprotease, sedangkan pepstatin A adalah inhibitor spesifik untuk enzim aspartil protease sehingga inhibitor tersebut tidak mampu menghambat aktivitas enzim proteolitik jenis serin (Cock et al., 1993). Suhartono (1989) menyatakan bahwa senyawa inhibitor adalah senyawa yang dapat mengubah kemampuan enzim dalam mengikat substrat sehingga menyebabkan perubahan daya katalisator enzim. Perubahan ini disebabkan oleh struktur enzim yang mengalami perubahan fisik kimiawi sedemikian rupa sehingga aktivitas hayatinya menjadi berubah. Menurut Palmer (1991) protease serin memiliki sisi katalitik yang terdiri dari asam amino serin, histidin, dan aspartat. Inhibitor PMSF akan bereaksi dengan gugus OH dari serin yang menyebabkan terjadinya efek penghambatan yang irreversible. Adanya penghambatan aktivitas enzim oleh PMSF menunjukkan bahwa enzim proteolitik ini termasuk dalam kelompok protease serin. Lehninger (1975) menyatakan bahwa oleh karena reaksi kimia dapat dipengaruhi oleh temperatur, maka reaksi yang menggunakan katalis enzim dapat pula dipengaruhi oleh temperatur. Pada temperatur rendah reaksi kimia berlangsung lambat, sedangkan pada temperatur yang lebih tinggi reaksi berlangsung lebih cepat. Selain itu, karena enzim adalah suatu protein, maka kenaikan temperatur dapat menyebabkan terjadinya proses denaturasi. Apabila terjadi proses denaturasi, maka bagian aktif enzim akan terganggu dan dengan demikian konsentrasi efektif enzim menjadi berkurang dan kecepatan reaksinya pun akan menurun. Kenaikan temperatur sebelum terjadinya proses denaturasi dapat menaikkan kecepatan reaksi. Peningkatan temperatur dapat meningkatkan reaksi enzim yang terkatalisis dan yang tidak terkatalisis dengan cara meningkatkan energi kinetik dan frekuensi tubrukan dari besarnya molekul. Hasil uji pengaruh temperatur terhadap aktivitas enzim protease yang diekskresi/sekresikan oleh stadium L 3 A. galli disajikan pada Gambar 1. 82

7 Temperatur yang digunakan adalah 27 o C, 37 o C, 40 o C, 50 o C, 60 o C, 70 o C dan 80 o C. Aktivitas enzim terlihat pada temperatur 27 o C dan terjadi peningkatan bertahap sampai pada temperatur 60 o C. Aktivitas enzim sangat meningkat pada suhu 70 o C, dan menurun pada suhu 80 o C. Berdasarkan hasil yang diperoleh diketahui bahwa temperatur optimum untuk aktivitas enzim pada crude ekskretori/sekretori stadium L 3 A. galli adalah 70 o C Aktivitas enzim (U/ml) Temperatur ( o C) Gambar 1. Pengaruh temperatur terhadap aktivitas enzim ekskretori/sekretori stadium L 3 A. galli Aktivitas protease pada penelitian ini terukur mulai dari temperatur 27 o C sampai 80 o C. Temperatur optimum protease ini adalah 70 o C (Gambar 1), dan stabil selama 30 menit pada 50 o C tetapi aktivitasnya menurun 20% pada inkubasi selama 10 menit dengan temperatur 55 o C. Peranan temperatur pada reaksi enzimatik adalah untuk menjaga agar enzim dapat menjalankan aktivitas katalitik terbaiknya (Palmer, 1991). Menurut Berasain (1997) pelepasan protease serin oleh cacing trematoda Fasciola hepatica ditujukan untuk mendegradasi matriks ekstraselular dan komponen membran dasar agar parasit berhasil menginvasi ke jaringan. Pelepasan protease serin oleh L 3 A. galli mungkin berkaitan dengan proses invasi larva ke jaringan untuk menjalani fase histotrofik, dimana stadium L 3 A. galli melangsungkan fase histotrofik harus menembus pertahanan selaput lendir untuk establish pada jaringan mukosa saluran cerna inang definitif. Durasi fase 83

8 histotrofik yang dibutuhkan larva A. galli adalah 3 54 hari pascainfeksi (Permin dan Hansen, 1998). Kesimpulan Dari hasil penelitian dapat disimpulkan: 1. Aktivitas enzim dihambat oleh PMSF 0,5 mm sehingga digolongkan sebagai protease serin. 2. Ekskretori/sekretori yang dilepaskan L 3 A. galli mengandung enzim protease dengan temperatur optimum aktivitas enzim pada 70 o C. Ucapan Terima Kasih Ucapan terima kasih penulis sampaikan kepada Sulaeman yang telah berperan sebagai teknisi yang menyiapkan cacing A. galli, dan Ika Malika yang telah berperan sebagai teknisi yang menyiapkan pengujian aktivitas enzim. Ucapan terima kasih juga penulis sampaikan kepada Kementrian Negara Riset dan Teknologi yang telah membiayai Riset ini melalui Riset Unggulan Terpadu 2005 s.d Daftar Pustaka Balqis U, Darmawi, dan Tiuria R Purifikasi dan Karakterisasi Proteinase dari Substansi Bioaktif Stadium Transisi L 3 L 4 Ascaridia galli dan Aplikasinya Sebagai Kandidat Vaksin Terhadap Ascaridiosis pada Ayam Petelur. Laporan Riset Unggulan Terpadu. Kementrian Negara Riset dan Teknologi RI. Balqis U, Darmawi, dan Tiuria R Purifikasi dan Karakterisasi Proteinase dari Substansi Bioaktif Stadium Transisi L 3 L 4 Ascaridia galli dan Aplikasinya Sebagai Kandidat Vaksin Terhadap Ascaridiosis pada Ayam Petelur. Laporan Riset Unggulan Terpadu. Kementrian Negara Riset dan Teknologi RI. Berasain P Proteinases Secreted by Fasciola hepatica Degrade Extracellular Matrix and Basement Membran Components. J. Parasitol. 83(1): 1 5. Cock HD, Knox DP, Claerebout E, and Graaf DCD Partial Characterization of Proteolytic Enzymes in Different Developmental Stages of Ostertagia ostertagi. J. of Helminthol. 67: Ford L Characterization of a Novel Filarial Serine Protease Inhibitor, Ov SPI1, from Onchocerca volvulus, with Potential Multifunctional Roles during Development of the Parasite. J. Biol. Chem. 280(49): (16 Mei 2006). 84

9 Hadas E and Stankiewicz M Proteolytic Enzymes of Infective Larvae and Adults of Trichostrongylus colubriformis and Haemonchus contortus. Parasitol. Res. 83: Iglesias L, Malagon D, Valero A, Benitez R, and Adroher FJ CO 2 fixing Enzymes During Moulting from Third Larval to Fourth Larval Stage of Anisakis simplex and Hysterothylacium aduncum (Nematoda: Anisakidae). (04 Oktober 2005) Kong HH, Kim TH, and Chung DI Purification and Characterization of a Secretory Serine Proteinase of Acanthamoeba healyi Isolated from Gae. J. of Parasitol. 86(1): Lehninger, A Biochemistry, second edition. 444 Park Avenue South: New York. Palmer T Understanding Enzymes. 3 rd ed. Ellis Horwood Chichester, West Sussex, England. Permin A and Hansen JW Epidemiology, Diagnosis and Control of Poultry Parasites. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome. Rhoads ML, Fetterer RH, and Urban Jr. JF Secretion an Aminopeptidase During Transition of Third to Fourth Stage Larvae of Ascaris suum. J. of Parasitol. 83(5): Rhoads ML, Fetterer RH, and Urban Jr. JF Release of Hyaluronidase During in vitro Development of Ascaris suum from the Third to Fourth Larval Stage. Parasitol. Res. 87(9): (12 Agustus 2006). Rukayadi Y dan Suhartono MT Penuntun Praktikum Biokimia (BIM.511). Program Pascasarjana, IPBBogor. Suhartono MT Enzim dan Bioteknologi. Departemen Pendidikan dan Kebudayaan, Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi. Todorova VK Proteolytic Enzymes Secreted by Larval Stage of the Parasitic Nematode Trichinella spiralis. Fol. Parasitol. 47: