Seminar Nasional Tahunan XI Hasil Penelitian Perikanan dan Kelautan, 30 Agustus 2014

Transkripsi

1 STUDI POPULASI BAKTERI TAMBAK PADA BUDIDAYA UDANG SISTEM INTEGRATED MULTITROPHIC AQUACULTURE (IMTA) prb17 Brata Pantjara dan Nur Hidayah Balai Penelitian dan pengembangan Budidaya Air Payau, Maros Abstrak Budidaya perikanan terintegrasi yang dikenal dengan integrated multitrophic aquaculture (IMTA) merupakan salah satu kegiatan budidaya tambak yang ramah lingkungan karena komoditas yang dibudidaya dapat memanfaatkan limbah pakan dan ekskresi melalui transfer enerji dan nutrien antar berbagai komoditas perikanan. dapat meningkatkan produktivitas tambak dan mengetahui komposisi ragam organisme yang dapat diintegrasikan pada sistem budidaya multitropik serta dapat memperbaiki kualitas air dan mengurangi mikroorganisme patogen terhadap organisme budidaya. Di harapkan hasil kegiatan dapat meningkatkan produktivitas tambak dan produksi serta mengurangi resiko kegagalan panen terhadap komoditas yang dibudidayakan di tambak. Studi ini bertujuan untuk mengetahui fluktuasi bakteri d tambak udang sistem integrated multitrophic aquaculture (IMTA). Lokasi kegiatan di Tambak Percobaan Balai Penelitian dan Pengembangan Perikanan Budidaya Air Payau, Desa Punaga, Kabupaten Takalar. Komoditas pada masingmasing perlakuan IMTA adalah (A). udang windu intensif, nila, kekerangan dan rumput laut; (B). udang windu semi intensif, kekerangan dan rumput laut; (C) udang vaname intensif, kekerangan dan rumput laut dan (D) udang vaname semi intensif, nila, kekerangan dan rumput laut. Hasil penelitian diperoleh informasi bahwa pengamatan populasi bakteri vibrio dasar tanah tertinggi terjadi pada perlakuan D (1, CFU/g) dan terendah pada B (3, CFU/g) dan populasi total bakteri tanah tertinggi terjadi pada perlakuan C (4, CFU/g) dan terendah pada B (1, CFU/g). Populasi bakteri vibrio tertinggi pada media air terjadi pada perlakuan C (ratarata 2, CFU/ml) dan terendah pada B (2, CFU/ml) dan total bakteri tertinggi terjadi pada perlakuan C (1, CFU/ml) dan terendah pada B (1, CFU/ml). Kata kunci: bakteri, budidaya udang, fluktuasi, IMTA Pengantar Sampai saat ini, udang merupakan komoditas primadona hasil perikanan. Komoditas ini mampu meningkatan pendapatan masyarakat dan memberikan kontribusi terhadap devisa Negara. Perkembangan tambak udang beberapa tahun terakhir mengalami stagnasi, bahkan cenderung mengalami penurunan produksi karena gagal panen yang disebabkan oleh menurunnya lingkungan dan mewabahnya penyakit udang. Budidaya udang Vaname Litopenaeus vannamei ataupun udang Windu Penaeus monodon secara intensif atau dengan padat tebar yang tinggi, menyebabkan akumulasi bahanbahan organik di dasar tambak (Smith dan Biggs, 1998; Smith et al., 2002). Akumulasi ini disebabkan ekskresi udang, kumpulan feses udang, sisasisa pakan yang tidak termakan, udang dan algae yang mati serta bahanbahan organik lainnya (Briggs and FungeSmith, 1994; Boyd, 1995). Kondisi ini dapat menurunkan kualitas air dalam tambak terutama meningkatnya amonia dan nitrit yang dapat menyebabkan kematian udang (Pantjara, 2008). Selain itu, pada kondisi tambak yang mengandung banyak bahan organik dapat menyebabkan bakteri heterotrof berkembang dengan baik (Chanratchakool et al., 1998). Pada tambak dengan bahan organik yang tinggi berdampak pada menurunnya kualitas air yaitu meningkatnya amonia dan nitrit serta populasi bakteri. Mikroorganisme pengurai bahan organik mendekomposisi limbah organik menjadi produk yang dimanfaatkan mikrorganisme lainnya seperti bakteri, jamur, virus, plankton, dan protozoa pada kondisi lingkungan yang sesuai untuk perkembangannya (GalavisSilva et al., 2004; Guevara dan Meyer, 2006). Dengan demikian, berkembangnya bakteri pengurai bahan organik diharapkan terjadi keseimbangan lingkungan sehingga komoditas budidaya yang dibudidaya dapat hidup secara optimal. Peranan bakteri nitrifikasi dalam proses purifikasi air tambak tidak memberikan pengaruh terhadap pertumbuhan udang, tetapi secara tidak langsung dapat mempertahankan kualitas air yang layak untuk hidup dan tumbuhnya udang, Semnaskan_UGM / Poster Rekayasa Budidaya (prb17) 559

2 Bakteri mengurai limbah organik dalam proses amonifikasi menghasilkan ammonia dan dalam proses nitrifikasi dapat mengoksidasikan amonia menjadi nitrit demikian seterusnya bakteri nitritrifikasi dapat mengoksidasikan nitrit menjadi nitrat (Elsas et al., 1997; Kennedy dan Gewin, 1997). Konsentrasi amonia <0,1 ppm aman bagi udang dan batas toleransi 0,10,5 ppm. Pada konsentrasi amonia yang tinggi dapat mengurangi nafsu makan yang akhirnya memperlambat pertumbuhan. Pada budidaya sistem integrated multitrophic aquaculture (IMTA), peranan bakteri pengurai bahan organik dalam proses dekomposisi limbah organik cukup signifikan (Pantjara, 2011 b ). Nutrien yang dihasilkan dari dekomposisi bahan organik dimanfaatkan rumput laut atau menjadi pakan alami terutama plankton yang dimanfaatkan kekerangan (Santoso et al., 2007). Kondisi ini dapat meningkatkan daya dukung lahan dan kualitas lingkungan dapat diperbaiki yang dapat mengurangi resiko kegagalan budidaya dibanding sistem budidaya monokultur serta peningkatan nilai tambah bagi pembudidaya tambak. Tujuan studi ini adalah untuk mengetahui fluktuasi bakteri d tambak udang sistem integrated multitrophic aquaculture (IMTA). Bahan dan Metode Penelitian dilakukan di Instalasi Tambak Percobaan Balai Penelitian Perikanan Budidaya Air Payau, Maros yang berlokasi di Desa Punaga, Kabupaten Takalar. Pemantau dilakukan pada saat berlangsung budidaya udang sistem multitropik terintegrasi. Komoditas budidaya yang digunakan adalah udang windu, udang vaname, nila merah, kekerangan dan rumput laut. Komposisi komoditas pada masingmasing perlakuan adalah (A). udang windu intensif, nila, kekerangan dan rumput laut; (B). udang windu semi intensif, kekerangan dan rumput laut; (C) udang vaname intensif, nila merah kekerangan dan rumput laut dan (D) udang vaname semi intensif, nila, kekerangan dan rumput laut. Pemantauan populasi bakteri dilakukan setiap 2 minggu pada tanah dan air dengan cara mengambil sampel air dengan menggunakan botol yang sudah diseterilkan, sampel tersebut dimasukkan dalam coolbox pada suhu dingin kemudian dibawa ke laboratorium Pathologi, Balai Penelitian dan Pengembangan Budidaya Air payau, Maros. Sebelum dilakukan analisis bakteri, sampel air distabilkan suhunya dan dihomogenkan terlebih dahulu dan setelah stabil diambil sebanyak 1 ml dengan menggunakan pipet dimasukkan ke dalam larutan fisiologis yang berisi 9 ml larutan fisiologis (SS). Sedangkan untuk sampel tanah tambak dengan cara menimbang sebanyak 1 gram dan dilarutkan ke dalam larutan fisiologis sebanyak 9 ml. Pengenceran dilakukan secara berseri atau bertingkat mulai dari 0 sampai dengan 10 6 pada sampel air dan 0 sampai dengan 10 2 pada sampel tanah. Pengenceran dilakukan dengan cara sampel air diambil sebanyak 1 ml dari sampai setiap pengenceran yang diinginkan, setelah itu dilakukan isolasi sampel pada media agar TSA dan TCBSA. Penanaman isolat pada media agar dilakukan dengan cara dipipet sebanyak 0,1 ml dari pengenceran yang diinginkan lalu diinokulasi pada media TSA dan TCBSA. Sampel tersebut diratakan dengan menggunakan stik kaca dan diinkubasi dalam inkubator selama 2448 jam pada suhu 2730 o C. Populasi bakteri dihitung berdasarkan jumlah koloni yang tumbuh pada media TSA dan TCBSA. Pengamatan terhadap pertumbuhan berat dilakukan setiap 2 minggu selama pemeliharaan. Pengamatan kualitas air secara insitu meliputi suhu dan oksigen terlarut, salinitas, ph yang dilakukan setiap hari, sedangkan pengambilan sampel air dilakukan setiap 2 minggu meliputi; BOT, nitrit, nitrat, total ammonia nitrogen (TAN), fospat mengacu pada APHA (2005). Hasil dan Pembahasan Populasi Bakteri Sisa pakan dan hasil ekskresi atau metabolit serta faeces yang masuk ke lingkungan perairan menjadi beban limbah organik di tambak. Keberadaan limbah organik pada tambak selama budidaya dapat terdekomposisi oleh bakteri menghasilkan NH 4 + dan NO 2, bila konsentrasinya berlebihan dapat menjadi toksik bagi udang yang dibudidaya (Thakur dan Lin, 2003). Selain itu, limbah organik yang tinggi menurunkan kualitas air dan terjadi peningkatan berbagai mikroorganisme termasuk bakteri pathogen dalam tambak yang dapat menyerang udang (Worne, 1992; Kim et al., 2002; Merican, 2004). Peningkatan aktivitas mikroorganisme dalam tambak memerlukan lingkungan yang baik untuk bisa berkembang seperti oksigen dan media air pada ph netral (ph 6,57,5). Dilaporkan Pantjara (2011 b ), 560 Semnaskan_UGM / Brata Pantjara dan Nur Hidayah

3 bahwa jenis mikroorganisme pendekomposisi limbah organik pada tambak udang intensif diantaranya adalah Pseudomonas sp.; Vibrio sp.; Bacillus sp.; Flavobacterium sp.; Micrococcus sp.; Cytophaga sp.; dan Enterobacterium sp. Hasil pengamatan terhadap populasi bakteri disajikan Gambar 1. Pada umumnya populasi bakteri baik total bakteri maupun bakteri vibrio berfluktuasi setiap pengamatan selama penelitian. Namun demikian dari data yang diperoleh populasi bakteri vibrio dan total bakteri pada semua perlakuan pengamatan hari ke 90 memperlihatkan pola yang lebih stabil (Gambar 1). Gambar 7. Fluktuasi bakteri vibrio dan total bakteri pada tanah dan air pada sistem Integrated Multitrophic Aquaculture (IMTA) di tambak (Data transformasi). Keterangan: (A). udang windu intensif, nila, kekerangan dan rumput laut; (B). udang windu semi intensif, kekerangan dan rumput laut; (C) udang vaname intensif, nila merah kekerangan dan rumput laut dan (D) udang vaname semi intensif, nila, kekerangan dan rumput laut. Populasi total bakteri vibrio pada dasar tanah tambak pada studi ini tidak jauh berbeda pada semua perlakuan, masingmasing pada perlakuan A, B, C dan D adalah 3, , CFU/g (x=3, ±0,4328 CFU/g); 8, , CFU/g (x=3, ± 0,3324 CFU/g); 2, , CFU/g (x=1, ±0,6651 CFU/g) dan 3, , CFU/g (x=1, CFU/g). Sementara itu, total bakteri pada masingmasing perlakuan A, B, C dan D adalah 8, , CFU/g (x=2, ±0,2895 CFU/g); 8, , CFU/g (x=1, ±0,3874 CFU/g); 8, , CFU/g (x=4, ±0,4935 CFU/g) dan 5, , CFU/g (x=3, ±0,4467 CFU/g). Tingginya total bakteri pada dasar tambak disebabkan bahan organiknya yang tersedia mengendap didasar tambak sehingga menjadi nutrisi yang baik untuk perkembangan bakteri (Atlas dan Bartha, 1987; Moriarti, 1997). Demikian pula yang terjadi pada media air, diperoleh informasi bahwa total bakteri mempunyai fluktuasi yang lebih jelas pada setiap pengamatan (Boyd, 1995). Menurut Pantjara (2011 a ), perkembangan mikroorganisme cukup pesat dan peningkatannya disebabkan mikroorganisme tersebut mampu memanfaatkan karbon dari limbah yang tersediakan. Selanjutnya dilaporkan Shen dan Bartha (1996), bahwa bakteri menggunakan limbah organik menghasilkan karbon dioksida. Bila Semnaskan_UGM / Poster Rekayasa Budidaya (prb17) 561

4 kondisinya anaerob, maka bakteri anaerob menghasilkan senyawa CH 4, CO 2, NH 3, H 2 S, dan asam organik lainnya (Burford dan Williams, 2001). Senyawa tersebut dapat teroksidasi secara sempurna dan terbentuk biomassa bahan baru sebagai hasil dekomposisi. Populasi total bakteri vibrio pada media air dalam studi ini juga hampir sama pada semua perlakuan (Gambar 1), masingmasing pada perlakuan A, B, C dan D adalah 1, , CFU/ml (x=6, ±0,3982 CFU/ml); 5, , CFU/ml (x=2, ±0,3457 CFU/ml); 2, , CFU/ml (x=2, ±0,4571 CFU/ml) dan 0, , CFU/ml (x=1, ±0,7534 CFU/ml). Sementara itu, total bakteri pada media air, masingmasing perlakuan A, B, C dan D adalah 2, , CFU/ml (x=2, ±0,4046 CFU/ml); , CFU/ml (x=1, ±0,3462 CFU/ml); 1, , CFU/ml (x=1, ±0,8013 CFU/ml) dan 1, , CFU/mll (x=1, ±0,5041 CFU/ml). Dilaporkan Elsas et al. (1997), proses dekomposisi bakteri memerlukan oksigen untuk mengoksidasi senyawa organik. Selama proses dekomposisi, bakteri mengasimilasi karbon, nitrogen, fosfor dan belerang serta unsur lain untuk mensintesis sel yang jumlahnya diperkirakan 1070 % atau tergantung dari sifatsifat bahan organik. Bahan organik dari tambak intensif berasal dari sisa pakan yang tidak termakan yang jumlahnya diperkirakan mencapai 6070%. Pada proses amonifikasi dan nitrifikasi limbah organik yang terdekomposisi menjadi nutrien dan terlarut dalam air dan dimanfaatkan komoditas akuatik lainnya. Bakteri yang tumbuh pada media tanah dasar umumnya didominasi bakteri aerob dan bakteri heterotroph, demikian pula dengan bakteri yang tumbuh di media air (Pantjara, 2008). Bakteri aerob pada studi ini menunjukkan perkembangan yang baik karena mendapatkan suplai oksigen dari kincir air. Selanjutnya proses biokonversi limbah organik dilakukan bakteri heterotrof lebih bersifat selulolitik dan ligninolitik yang yang peranannya sangat besar dalam proses dekomposisi limbah organik yang banyak mengandung lignoselulosa (Kennedy dan Gewin, 1997). Dilaporkan Coyne (1999), bahwa metabolisme ototrof jasad fotosintetik dan khemolitotrof menghasilkan produks primer dari CO 2 anorganik menjadi Corganik. Bila terjadi di tambak secara alami proses metabolisme melakukan respirasi dan fermentasi, bakteri heterotrof melepaskan CO 2 anorganik ke atmosfer. Kualitas Air Kualitas air dalam tambak sangat menentukan keberhasilan panen udang, kandungan bahan organik yang tinggi pada budidaya pathogen mudah berkembang, sementara itu udang rentan terhadap penyakit sehingga dapat menyebabkan kematian masal dan gagal panen. Limbah pakan dan metabolit melalui proses nitrifikasi dirubah menjadi nutrien dan larut dalam air (Jackson, et al., 2003). Pada proses tertentu limbah dioksidasi oleh bakteri autotrof (Nitrosomonas sp. dan Nitrobacter sp.) menjadi amonia dan nitrit, kemudian nitrit yang terbentuk dioksidasi lebih lanjut oleh bakteri Nitrobacter sp. dalam proses nitrifikasi menghasikan nitrat (Atlas dan Bartha, 1987; Moriarti, 1997). Pada budidaya udang sistem IMTA (udang, nila merah, kekerangan dan rumput laut) kelebihan nutrien ditambak secara langsung dan tidak langsung dimanfaatkan pertumbuhan rumput laut dan plankton. Selanjutnya plankton dan sebagian bakteri tersebut kemudian dimanfaatkan kekerangan. Dengan demikian, kualitas air tetap stabil dan aman bagi udang. Bahan organik terlarut (BOT) dalam air pada semua perlakuan tampak berfluktuasi. Kandungan BOT tertinggi dicapai pada petakan udang windu intensif, 17,27049,906 ppm, disusul pada petakan udang windu semi intensif, 17,12155,926 ppm, udang vaname intensif, 15,32661,350 ppm dan udang vaname semi intensif, 17,57054,624 ppm. Sedangkan BOT pada air sumber laut dan tandon masingmasing mencapai 15,55048,280 ppm dan 19,0953,06 pp. 562 Semnaskan_UGM / Brata Pantjara dan Nur Hidayah

5 Tabel 1. Pengukuran kualitas air tambak udang windu intensif dan semi intensif sistem IMTA. No Parameter udang windu intensif, nila, kekerangan dan rumput laut (A) 1.BOT (ppm) 2. NH 3 N (ppm) 3. NO 2 (ppm) 4. NO 3 (ppm) 5.PO 4 2 (ppm) 17, ,906 39,160±10,7461 0,0440,492 0,193±0,1310 0,0370,191 0,099±0,0573 0,0921,294 0,523±0,452 0,0320,837 0,370±0,2988 udang windu semi intensif, kekerangan dan rumput laut (B) 17,12155,926 38,938±11,6571 0,0500,726 0,318±0,2550 0,017 0,107 0,054±0,0305 0,1001,859 0,697±0,6881 0,0221,064 0,697±0,6682 Pada proses penguraian bakteri heterotrof di air dapat menyebabkan timbulnya gasgas beracun seperti amonia (NH 3+ ), nitrit (NO 2 ) dan Hidrogen sulfida (H 2 S), dan pada konsentrasi tertentu dapat menyebabkan kematian massal pada udang (Effendi, 2003; Pantjara, 2008). Pada tambak intensif dengan padat penebaran tinggi memerlukan sejumlah pakan yang tinggi pula. Kondisi ini dapat menghasilkan nutrien nitrogen lebih tinggi. Pada petak A, ratarata kandungan N total mencapai kisaran 0,3611,730 ppm per hari. Pada petak C, ratarata kandungan N total mencapai kisaran 0,245 1,926 ppm per hari. Pada petak B ratarata kandungan N total mencapai kisaran 0,2711,671 ppm per hari. Pada petak D, ratarata kandungan N total mencapai kisaran 0,2401,272 ppm per hari. Tabel 2. Pengukuran kualitas air tambak udang vaname intensif dan semi intensif sistem IMTA. No Parameter udang vaname intensif, nila, kekerangan dan rumput laut (C) 1.BOT (ppm) 2. NH 3 N (ppm) 15,32661,350 38,374± 14,0821 0,0080,484 0,162± 0,1406 udang vaname semi intensif, kekerangan dan rumput laut (D) 19,09353,060 35,146± 12,755 0,0920,448 0,243± 0, NO 2 (ppm) 4. NO 3 (ppm) 5.PO 4 2 (ppm) 0,0170,107 0,059 0,0315 0,0721,518 0,349± 0,4566 0,0181,040 0,352± 0,2897 0,0110,068 0,036± 0,0182 0,0011,542 0,634± 0,2041 0,0011,542 0,634± 0,2041 Limbah organik sisa pakan, feaces dan metabolit serta bahan terlarut lainnya yang masuk dalam tambak dan meningkatkan kandungan nitrogen dalam tambak (Burford dan Williams, 2001). Tingginya nutrien budget nitrogen pada udang windu intensif dan udang vaname intensif disebabkan proses amonifikasi yaitu terurainya limbah organik sebagai sumber karbon (C) lebih cepat dibandingkan proses nitrifikasi. Selain itu, proses terbentuknya nitrat pada perlakuan A dan B berjalan agak lambat terutama proses nitrifikasi dari nitrit ke nitrat. Hasil perombakan limbah organik bakteri anaerob menghasilkan CO 2, NH 4, NO 3, SO 4, H 2 PO 4 2. Menurut Moriarty (1997), bahwa terdapat hubungan yang erat antara nisbah dari karbon dengan nitrogen terhadap laju perombakan bahan organik. Setiap 10 bagian C diperlukan 1 bagian untuk membentuk plasma sel. nisbah C/N yang baik untuk pertambakan adalah 10 hingga 15 (Boyd, 1995). Fluktuasi N dalam tambak dipengaruhi kandungan bahan organik dalam tambak masih banyak dan belum mengalami proses penguraian yang optimal. Sebagian dari nutrien mengendap di dasar tambak menjadi sedimen organik dan yang larut dalam air akan dikonversi menjadi nutrien anorganik yang dimanfaatkan rumput laut dan plankton serta sebagian N menguap ke udara. Sementara itu, diperkirakan 6080 % dari seluruh kandungan karbon yang ada dibebaskan dalam bentuk CO 2 dalam kondisi aerobik. Semnaskan_UGM / Poster Rekayasa Budidaya (prb17) 563

6 Kandungan amonia dalam air selama penelitian pada semua petakan tampak berfluktuasi. kandungan amonia tertinggi dicapai pada B yaitu 0, ppm (ratarata 0,318±0,2550 ppm), disusul perlakuan D dengan kisaran 0,0920,448 ppm (ratarata 0,243±0,1411 ppm), A dengan kisaran 0,0440,492 ppm (ratarata 0,193±0,1310 ppm) dan C yaitu 0,0080,484 ppm (0,162± 0,1406 ppm). Sedangkan pada air sumber laut dan tandon mempunyai kandungan amonia 0,0370,177 ppm dan 0,0170,219 ppm. Amonia yang tinggi di tambak dapat membahayakan kehidupan udang karena menyebabkan peningkatan ph darah, gangguan terhadap reaksi yang dikatalisis enzim, gangguan kestabilan membran, peningkatan permeabilitas tubuh terhadap air dan penurunan konsentrasi ion internal. Amonia juga meningkatkan konsumsi oksigen jaringan, merusak insang dan menurunkan kemampuan darah dalam mengangkut oksigen. Perubahan histologis terjadi di dalam ginjal, limfa, jaringan tiroid dan darah pada ikan yang terkena amonia dengan konsentrasi subletal dan kandungan amonia <0,1 ppm cukup aman bagi kehidupan udang. Konsentrasi nitrit air selama budidaya pada studi ini berfluktuasi, Namun masih dalam batas yang toleran untuk kehidupan udang. Kandungan nitrit <0,1 ppm aman bagi kehidupan udang. Kandungan nitrit tertinggi dicapai pada petak A (0, ppm), disusul perlakuan B (0,0170,107 ppm), C (0,0170,107 ppm) dan D (0,0110,068 ppm). Proses nitrifikasi, bakteri memerlukan oksigen yang cukup untuk merombak amonia menjadi nitrit. Proses perombakan yang tidak sempurna dapat mengakibatkan akumulasi ion nitrit (NO 2 ) dan kurang terbentuk ion nitrat (NO 3 ). Efek toksik dari nitrit terutama pada transport oksigen serta kerusakan jaringan. Kelebihan nitrit dalam air dan bila diabsorbsi udang menyebabkan ion besi dalam haemocyanin akan teroksida dari ferro ke ferri sehingga dapat menghambat transportasi oksigen dalam darah. Nitrit bersifat racun bagi udang, karena mengoksidasi Fe 2+ dalam hemoglobin, sehingga kemampuan darah untuk mengikat oksigen sangat rendah. Kandungan nitrit 6,4 ppm NO 2 N dapat mempengaruhi transport oksigen dalam darah dan merusak jaringan serta menghambat pertumbuhan udang. Toksisitas nitrit sangat dipengaruhi oleh ph air, penurunan ph air meningkatkan efek toksisitas. Konsentrasi nitrat dalam air selama studi pada semua perlakuan tampak berfluktuasi. kandungan nitrat tertinggi dicapai pada petak B (0,1001,819 ppm), disusul perlakuan A (0,0091,294 ppm), C (0,072 1,518 ppm) dan D (0,0630,680 ppm). Kandungan nitrat cenderung menurun karena digunakan untuk pertumbuhan fitoplankton. Secara umum kandungan NO 3 dalam air tergolong rendah dan berfluktuasi pada semua perlakuan. Kandungan nitrat yang optimum bagi kehidupan udang windu adalah <100 ppm. Kandungan PO 4 2 dalam air tambak selama penelitian tergolong rendah, sehingga sulit untuk menumbuhkan pakan alami meskipun dasar tambak telah dipupuk dengan SP36. Konsentrasi fosfat dalam air selama penelitian pada semua perlakuan tampak berfluktuasi. kandungan fosfat tertinggi dicapai pada petak D yaitu 0, ppm, disusul perlakuan A dengan kisaran 0,0320,837 ppm, C dengan kisaran 0,0181,040 ppm dan B yaitu 0,0211,441 ppm. Kandungan nitrat dan posfat dalam tambak merupakan indikator tingkat kesuburan tambak untuk menumbuhkan pakan alami. Kesimpulan 1. Populasi bakteri pada budidaya udang intensif sistem Integrated Multitrophic Aquaculture (IMTA) yang berada di dasar tambak lebih tinggi dibandingkan di media air. 2. Populasi bakteri vibrio dasar tanah tertinggi terjadi pada perlakuan D (1, CFU/g) dan terendah pada B (3, CFU/g) dan populasi total bakteri tanah tertinggi terjadi pada perlakuan C (4, CFU/g) dan terendah pada B (1, CFU/g). 3. Populasi bakteri vibrio tertinggi pada media air terjadi pada perlakuan C (ratarata 2, CFU/ ml) dan terendah pada B (2, CFU/ml) dan total bakteri tertinggi terjadi pada perlakuan C (1, CFU/ml) dan terendah pada B (1, CFU/ml). Daftar Pustaka APHA (American Public Health Association) Standard Methods for Examination of Water and Wastewater. 20 th edition. APHA, AWWA, WEF, Washington 1,085 pp. 564 Semnaskan_UGM / Brata Pantjara dan Nur Hidayah

7 Atmomarsono M., Pengelolaan kesehatan udang windu, Penaeus monodon di tambak. Akuakultura Indonesiana 5 (2) :7378. Atlas, R. M & R. Bartha Microbial ecology. fundamentals and application. Second edition. The Benyamin/Cummings Publishing Company, Inc. California. 532 p. Avnimelech, Y & G. Ritvo Shrimp and fish pond soils: Processes and Aquaculture. Aquaculture :220: Boyd, C Bottom soils, sedimen, and pond aquaculture. Auburn University, Alabama. 347 pp. Briggs M.R.P. & FungeSmith S.J A nutrient budget of some intensive marine shrimp ponds in Thailand. Aquaculture and Fisheries Management 25 : Burford, M. A. & K.C. Williams, The fate of nitrogenous waste from shrimp feeding. Aquaculture 198, Chanratchakool, P., J.F Turnbull., S.J FungeSmith., I.H MacRae. & C.Limsuwan Health aquaculture in shrimp ponds. Aquatic Animal Health Research Institute. 152 pp. Chopin, T., A. H. Buschmann, C. Halling, M. Troell, N. Kautsky, A. Neori, G. Kraemer, J. Zertuche Gonzalez, C. Yarish, & C. Neefus Integrating seaweeds into aquaculture systems: a key towards sustainability. Journal of Phycology 37: Coyne, M Soil microbiology: an exploratory approach. Delmar Publisher. 62 p. Effendi, H Telaah kualitas air air bagi pengelolaan sumber daya dan lingkungan perairan. Penerbit Kanisius. 255 Hlm. Elsas, J. D. V., J. T. Trevors & E. M. H. Wellington Modern soil microbiology. Marcell Decker, Inc. 683 pp. GalavizSilva L, Z.J. MolinaGraza, J.M. AlcocorGonzalez, J.L. RosalesEncinas, C. IbarraGamez White spot syndrome virus variants detected in Mexico by a new multiplex PCR method. Aquaculture 242 : Guevara L.I.P & M.L. Meyer Detailed monitoring of white spot syndrome virus (WSSV) in shrimp commercial ponds in Sinaloa, Mexico by nested PCR. Aquaculture 251:3345. Jackson, C., N. Preston., P. J. Thompson., & M. Burford Nitrogen budget and effluent nitrogen components at an intensive shrimp farm. Aquaculture 218 : Kennedy, A.C. & V.L. Gewin Soil microbial diversity: Present and future considerations. Soil Science 162 (9) : Kim D.K, I.K. Jang, H.C. Seo, S.O. Shin, S.Y. Yang, J.W. Kim, Shrimp protected from WSSV diseases by treatment with egg yolk antibodies (IgY) against a truncated fusion protein derivated from WSSV. Aquaculture 237 : Merican, Z Focus on shrimp culture management. Aquaculture Asia Pasific. p Moriarty, D.J.W The role of microorganisms in aquaculture ponds. Aquaculture 151 : Neiland, A.E. N. J.B.V Soley & D.J. Whitmars Shrimp aquaculture : economic perspectives for policy development. Marine Policy 25 : Pantjara, B Efektivitas sumber C terhadap dekomposisi bahan organik limbah tambak udang Semnaskan_UGM / Poster Rekayasa Budidaya (prb17) 565

8 intensif. Seminar Nasional Kelautan IV Universitas Hangtuah II : a. Budidaya perikanan di tambak melalui teknologi IMTA yang ramah lingkungan. dalam : C. Nainggolan, F.M. Sondita, A.Sudrajat, S. Masengi (Eds). Prosiding Seminar Nasional Perikanan Indonesia. Pusat Penelitian dan Pengabdian Masyarakat, Sekolah Tinggi Perikanan, Jakarta. Hlm: b. Pemanfaatan bakteri pada peningkatan produktivitas tambak. Prosiding Seminar Nasional VII Inspiring sea for life : Tantangan dalam pengelolaan sumberdaya secara bijaksana dan berkelanjutan. Univ. Hang Tuah Surabaya, C2:2331. Santoso, A.D., W. Komarawidjaya, R.A. Darmawan, & Arman, E Studi kemampuan rumput laut dalam penyerapan nutrien. Jurnal Hidrosdfir Indonesia 2 (1) : Smith, S. J. F. & M. R. P. Briggs Nutrient budget in intensive shrimp ponds: implications for sustainability. Aquaculture 164 : Smith, D. M., M. A. Burford., S. J. Tabrett., S. J. Irvin., & L. Ward., The effect of feeding frequency on water quality and growth of the black tiger shrimp (Penaeus monodon). Aquaculture 207, Thakur, D.P., & C. K. Lin, Water quality and budget nutrient in closed shrimp (Penaeus monodon) culture systems. Aqua. Engeneering 27 : Worne, H Introduction to microbial biotechnology including hazardous waste treatment. Hazardous Materials Control Resources Institute, USA. 566 Semnaskan_UGM / Brata Pantjara dan Nur Hidayah