Labrum (semacam mulut) terdapat di bagian ventral. Morfologi nauplius disajikan pada Gambar 3 (Sorgeloos 1980).

Transkripsi

1 2. TINJAUAN PUSTAKA 2.1. Klasifikasi dan Morfologi Genus Artemia mempunyai beberapa spesies, antara lain Artemia salina Leach, A. parthenogenetica, A. franciscana Kellog, A. urmiana Gunther, A. tunisiana Bowen, A. persimilis Prosdocimi dan Piccinelli, A. monica Verril, dan A. odesssensisr. Artemia merupakan zooplankton yang diklasifikasikan ke dalam filum Arthropoda dan kelas Crustacea. Secara lengkap klasifikasi Artemia menurut Bougis (1979) in Isnansetyo dan Kurniastuty (1995) adalah sebagai berikut. Filum : Arthropoda Kelas : Crustacea Subkelas : Branchiopoda Ordo : Anostraca Famili : Artemidae Genus : Artemia Spesies : Artemia salina Artemia diperjualbelikan dalam bentuk telur dorman (istirahat) yang disebut dengan kista. Kista tersebut berbentuk bulatan bulatan kecil berwarna kelabu kecoklatan dengan diameter berkisar antara mikron. Satu gram kista Artemia kering rata rata terdiri dari butir kista. Kista yang berkualitas baik akan menetas sekitar jam apabila diinkubasikan dalam air bersalinitas Terdapat beberapa tahap (proses) penetasan Artemia, yaitu tahap hidrasi, tahap pecah cangkang, dan tahap payung atau tahap pengeluaran. Pada tahap hidrasi terjadi penyerapan air sehingga kista yang diawetkan dalam bentuk kering tersebut akan menjadi bulat dan aktif melakukan metabolisme. Tahap selanjutnya adalah tahap pecah cangkang, disusul dengan tahap payung yang terjadi beberapa saat sebelum nauplius keluar dari cangkang. Tahap penetasan tersebut dapat dilihat pada Gambar 2 (Sorgeloos 1980). Artemia yang baru menetas disebut nauplius. Nauplius berwarna oranye, berbentuk bulat lonjong dengan panjang sekitar 400 mikron, lebar 170 mikron, dan berat 0,002 mg. Ukuran ukuran tersebut sangat bervariasi, tergantung pada galur (strain). Nauplius mempunyai sepasang antenulla dan sepasang antenna. Antenulla berukuran lebih kecil dan pendek dibandingkan dengan antenna. Selain itu, di antara antenulla terdapat bintik mata yang disebut dengan ocellus. Sepasang mandibulla

2 4 rudimenter terdapat di belakang antenna. Labrum (semacam mulut) terdapat di bagian ventral. Morfologi nauplius disajikan pada Gambar 3 (Sorgeloos 1980). Gambar 2. Tahapan Penetasan Artemia (Sorgeloos 1980) Gambar 3. Morfologi nauplius Artemia (1) bintik mata (2) antennula (3) antenna (4) calon thoracopoda (5) saluran pencernaan (6) mandibula (Sorgeloos 1980) Nauplius berangsur angsur mengalami perkembangan dan perubahan morfologis dengan 15 kali pergantian kulit hingga menjadi dewasa. Setiap tingkatan pergantian kulit disebut dengan instar, sehingga dikenal instar I hingga instar XV. Setelah cadangan makanan yang berupa kuning telur habis dan saluran pencernaan berfungsi, nauplius mengambil makanan ke dalam mulutnya dengan menggunakan setae pada antenna. Artemia mulai mengambil makanan setelah mencapai instar II

3 5 (Sorgeloos 1980). Sekitar 24 jam setelah menetas, nauplius instar I akan berubah menjadi instar II (Mudjiman 1989). Saat instar kedua, pada pangkal antenanya tumbuh gnatobasen setae, suatu struktur yang menyerupai duri menghadap ke belakang (Isnansetyo dan Kurniastuty 1995). Perubahan morfologis yang sangat mencolok terjadi setelah masuk instar X. Antenna mengalami perubahan sesuai dengan jenis kelaminnya. Thoracopoda mengalami diferensiasi menjadi tiga bagian, yaitu telopodite dan endopodite yang berfungsi sebagai alat gerak dan penyaring makanan, serta eksopodite yang berfungsi sebagai alat pernafasan (Lavens and Sorgeloos 1996). Artemia dewasa (Gambar 4) biasanya berukuran panjang 8 10 mm yang ditandai dengan adanya tangkai mata yang jelas terlihat pada kedua sisi bagian kepala, antenna sebagai alat sensori, saluran pencernaan yang terlihat jelas, dan 11 pasang thoracopoda. Pada Artemia jantan, antenna berubah menjadi alat penjepit (mascular grasper) dan sepasang penis di bagian belakang tubuh. Pada Artemia betina, antenna mengalami penyusutan dengan sepasang indung telur atau ovari terdapat di kedua sisi saluran pencernaan di belakang thoracopoda. Telur yang sudah matang akan disalurkan ke sepasang kantong telur atau uterus (Sorgeloos 1980). Artemia dewasa dapat hidup selama beberapa bulan (sampai 6 bulan). Di bawah kondisi optimal, Artemia dapat tumbuh dari nauplius sampai dewasa hanya dalam waktu 8 hari (Lavens and Sorgeloos 1996) atau 14 hari (Mudjiman 1989). Sementara itu, setiap 4 5 hari sekali mereka dapat memperbanyak diri secara cepat, dengan menghasilkan anak (pada kondisi lingkungan yang baik) dengan rata-rata 300 nauplius atau bertelur (pada lingkungan yang buruk) sebanyak butir. Menurut Harefa (1997), perkembangan Artemia dari proses penetasan sampai menjadi individu dewasa membutuhkan waktu sekitar 7 10 hari. Artemia dewasa bila diletakkan di air tawar akan bertahan 2 3 jam. Untuk sebagian besar strain, toleransi salinitas maksimum adalah 200. Artemia mencapai tingkat dewasa dalam hari ketika dibudidayakan pada kolam air garam (Kulasekarapandian and Ravichandran 2003 in Soundarapandian and Saravanakumar 2009). Menurut Soundarapandian and Saravanakumar (2009), salinitas air laut (35-55 ) yang sesuai untuk budidaya Artemia ditunjukkan dengan kelangsungan hidup yang lebih tinggi (80%), ukuran yang lebih besar (1,2 cm) dan durasi yang lebih pendek (14 hari) untuk mencapai tingkat dewasa. Menurut Vos (1979), morfologi dan penampilan umum dewasa berubah pada salinitas yang berbeda. Semakin tinggi salinitas, semakin kecil clasper pada Artemia jantan. Pada salinitas tinggi juga, tubuh menjadi lebih panjang

4 6 dan lebih kurus. Istilah-istilah yang digunakan dalam penelitian ini disajikan pada Lampiran 2. Gambar 4. Morfologi Artemia dewasa (Sorgeloos 1980) 2.2. Artemia sebagai pakan alami Artemia atau brine shrimp tergolong famili Artemiidae yang merupakan salah satu jenis pakan alami yang sangat penting dalam pembenihan ikan laut, Crustacea, ikan konsumsi air tawar, dan ikan hias. Hal ini dikarenakan Artemia memiliki nilai gizi yang tinggi dan ukuran yang sesuai dengan bukaan mulut hampir seluruh jenis larva ikan. Artemia memiliki posisi yang unik dalam sistem akuakultur dan sebagai pakan hidup yang lebih dari 85% spesies yang dibudidayakan di seluruh dunia. Artemia memiliki beberapa karakteristik, yang membuatnya menjadi ideal untuk kegiatan budidaya. Artemia mudah untuk dipelihara, adaptasi yang lebar terhadap kondisi lingkungan, non-selective filter feeder, mampu tumbuh pada padat tebar yang sangat tinggi. Selain itu, Artemia juga memiliki nilai nutrisi yang tinggi, efesiensi konversi yang tinggi, waktu untuk menghasilkan keturunan yang cepat, rataan fekunditas yang tinggi, dan masa hidup yang sangat panjang. Artemia terdistribusi sebagian besar pada danau hypersaline, kolam air asin, dan laguna. Artemia berkembang dengan sangat baik pada air laut alami dan memiliki toleransi salinitas pada kisaran Sebagian besar peneliti mencoba untuk membudidayakan Artemia pada salinitas yang lebih tinggi (>70 ) untuk memproduksi biomasa dan percobaan dilakukan hanya

5 7 pada kolam air garam (Gilchrist 1960; Arna 1987; Kulasekarapandian and Ravichandran 2003 in Soundarapandian and Saravanakumar 2009). Pembudidaya memperhatikan dua hal, yaitu menyediakan organisme dengan ukuran yang tepat sebagai pakan pertama larva dan menyediakan jumlah yang cukup dengan kelangsungan hidup yang tinggi dan pertumbuhan yang cepat mencapai tingkat dewasa sehingga dapat digunakan untuk pakan organisme (Arulvasu and Munuswamy 2009). Naupli Artemia salina instar I yang baru menetas umumnya digunakan sebagai pakan hidup untuk larva ikan. Selain dalam bentuk naupli, A. salina juga digunakan dalam bentuk dewasa. Tingkatan naupliar (contohnya. instar II, III, atau metanauplii) tidak sesuai lagi sebagai pakan larva ikan, karena memiliki panjang 50% lebih besar, berenang lebih cepat dan mengalami penurunan nilai nutrisi (Watanabe et al. 1987; Dye 1980; Sorgeloos et al in John et al. 2005). Oleh karena itu, penyediaan nauplius A. salina dilakukan melalui penetasan harian dari kista yang langsung diberikan untuk larva ikan. Selain itu, untuk mengurangi waktu kerja laboran dan proses yang tidak praktis, terdapat teknik lain berupa penyimpanan dingin dari nauplii A. salina yang dilakukan pada strain A. salina yang berbeda (Baust and Lawrence 1980a,b; Leger et al in Soundarapandian and Saravanakumar 2009). Menurut Mudjiman (1989), kedudukan Artemia dalam dunia budidaya ikan memiliki peranan penting, bukan hanya telurnya, melainkan juga Artemia dewasa. Artemia dewasa merupakan pakan alami yang baik, terutama untuk pembesaran dan pematangan gonad induk. Kandungan protein pada Artemia dewasa lebih besar daripada anak Artemia (nauplius). Kandungan protein pada anak Artemia (nauplius) adalah 42% dan Artemia dewasa 60% dari berat kering. Selain itu, kandungan lemak Artemia dewasa lebih kecil dari nauplius Artemia. Biomasa Artemia merupakan permintaan yang tinggi sebagai sumber dari pakan yang berkualitas tinggi untuk budidaya ikan dan Crustacea (Persoone and Sorgeloos 1982 in Royan et al. 1990). Artemia dewasa dapat menjadi sumber berharga dengan kualitas protein tinggi sebagai pakan hewan. Selain itu, pembesaran dan pematangan beberapa spesies penaeid lebih efektif menggunakan Artemia dewasa. Rataan pertumbuhan yang baik diamati pada Penaeus indicus, P. monoceros, dan P. monodon ketika diberi pakan hidup Artemia dewasa (Royan et al in Royan et al. 1990). Menurut Mudjiman (1989), Kandungan nutrisi Artemia terdiri dari protein, karbohidrat, lemak, air, dan abu. Protein merupakan kandungan terbesar, yaitu antara 40-60%. Kandungan protein yang tinggi inilah yang menyebabkan Artemia digunakan

6 8 sebagai pakan alami yang sulit digantikan dengan pakan yang lain. Menurut hasil penelitian Fakultas Peternakan (1994), kandungan protein di dalam Artemia dapat mencapai 58,58 %. Kandungan nutrisi lainnya adalah lemak 6,15%, karbohidrat 30,15%, abu 5,12%, dan kandungan energi 5,02 kkal/g. Selain Artemia, terdapat jenis zooplankton yang dapat dimanfaatkan sebagai pakan alami berbagai jenis ikan atau hewan air lainnya, misalnya Daphnia sp. Namun, kandungan nutrisi Daphnia sp. lebih kecil jika dibandingkan dengan Artemia (Mudjiman 1989). Secara umum larva-larva ikan-ikan laut berukuran sangat kecil dengan ukuran mulut yang kecil pula, misalnya ikan kerapu (Kohno et al in Suwirya et al. 2001). Keadaan ini menyulitkan dalam manajemen pakan, dimana secara fisik diperlukan pakan berukuran kecil, seperti rotifer tipe-ss. Rotifer dewasa tipe-s dan tipe-l masih terlalu besar untuk stadia awal larva dari kebanyakan spesies ikan kerapu (Lim 1993 in Suwirya et al. 2001). Asam lemak esensial bagi ikan-ikan laut adalah kelompok n-3 HUFA (Izquierdo et al. 1989). Untuk menyesuaikan kandungan asam lemak pakan hidup sehingga dapat memenuhi kebutuhan larva ikan telah dikembangkan dengan metode pengkayaan, baik dengan menggunakan plankton, pakan buatan, atau langsung dengan emulsi minyak yang mempunyai kandungan asam lemak yang tinggi (Teshima et al in Suwirya et al. 2001). Menurut Watanabe et al. (1983b), komposisi asam lemak nauplii Artemia salina lebih besar daripada komposisi asam lemak rotifer (Brachionus plicatilis) yang dikultur dengan pakan yang berbeda Ekologi, Fisiologi, dan Reproduksi Artemia terdistribusi di seluruh dunia, terdapat pada setiap benua kecuali Antartika. Artemia ditemukan di danau bergaram dan daerah bergaram komersial. Artemia dapat mentolerir salinitas naik lima kali lebih tinggi daripada air laut (Browne and MacDonald 1982). Udang kecil ini mendiami danau hypersaline dan kolam yang memiliki variasi komposisi ionik, suhu, dan altitute (ketinggian)(triantaphyllidis et al. 1998). Populasi Artemia ditemukan di sekitar 600 danau garam alami dan danau buatan manusia yang tersebar di seluruh zona beriklim tropis, subtropis, dan iklim sedang, sepanjang garis pantai (Van Stappen 2002 in El-Gamal 2010). Kehidupan Artemia dipengaruhi oleh faktor faktor eksternal, yaitu salinitas, oksigen terlarut, suhu, dan ph. Suhu di perairan dipengaruhi oleh musim, lintang, ketinggian dari permukaan laut, sirkulasi udara, penutupan awan, aliran, dan

7 9 kedalaman badan air. Perubahan suhu air berpengaruh terhadap sifat fisika, kimia, dan biologi perairan. Selain itu, peningkatan suhu juga dapat menyebabkan peningkatan laju metabolisme dan respirasi. Menurut Nontji (1993), suhu yang sangat ekstrim serta perubahannya dapat berdampak buruk bagi kehidupan organisme akuatik, baik secara langsung maupun tidak langsung. Suhu air permukaan di perairan Indonesia umumnya berkisar antara C. Menurut Mudjiman (1989), Artemia secara umum tumbuh dengan baik pada kisaran suhu C. Suhu merupakan parameter lingkungan yang mudah berubah sesuai dengan perbedaan tempat dan waktu. Suhu secara langsung berpengaruh terhadap proses metabolisme organisme air. Pada suhu tinggi, metabolisme terpacu; sedangkan pada suhu rendah, metabolisme lambat. Suhu air yang tinggi dan terlalu rendah mengakibatkan oksigen terlarut dalam air menjadi rendah (Supriya et al. 2002). Menurut Nontji (2007), salinitas adalah jumlah berat semua garam (dalam gram) yang terlarut dalam satu liter air, biasanya dinyatakan dengan satuan. Unsur unsur kimia terlarut dalam air laut, sebagian besar terdiri atas unsur makro (~95%) dan hanya sebagian kecil yang merupakan unsur mikro (~5%). Oleh karena itu, kandungan unsur makro (Na +, Mg 2+, K +, Ca 2+, Cl, SO 4 2 ) sangat menentukan salinitas suatu perairan. Sebaran salinitas di air laut dipengaruhi oleh berbagai faktor seperti pola sirkulasi air, penguapan, curah hujan, dan aliran sungai. Salinitas merupakan parameter yang penting untuk mengontrol pertumbuhan dan kelangsungan hidup dari Artemia. Artemia merupakan organisme euryhaline, tetapi Artemia merasa nyaman ketika berada pada salinitas yang optimum. Pada lingkungan yang alami, temperatur (suhu), makanan, dan salinitas merupakan faktor penting yang mempengaruhi populasi Artemia (Wear and Huslett 1987 in Soundarapandian and Saravanakumar 2009). Menurut Vanhaecke et al. (1987) in Kaiser et al. (2006), salinitas merupakan faktor lingkungan paling penting yang menentukan sebaran Artemia dengan populasi yang ditemukan di danau garam pada tingkat salinitas sekitar 40, dimana ikan dan banyak predator invertebrata tidak ada. Organisme hypersaline beradaptasi pada salinitas tinggi dengan beberapa mekanisme fisiologi, termasuk osmoregulasi, sintesis, dan akumulasi berbagai larutan yang cocok. Artemia merupakan makrozooplankton yang dominan yang terdapat pada lingkungan hypersaline (Wurtsbaugh and Gliwicz 2001 in Eimanifar and Mohebbi 2007). Salinitas yang diperlukan agar Artemia dapat menghasilkan kista bervariasi tergantung pada strainnya; pada umumnya membutuhkan salinitas di atas 100.

8 10 Penetasan kista Artemia membutuhkan salinitas kurang dari 85. Apabila salinitas air yang digunakan untuk penetasan tersebut lebih dari 85, maka kista tidak akan menetas. Hal ini disebabkan oleh tekanan osmosis di luar kista lebih besar, sehingga kista tidak dapat menyerap air yang diperlukan untuk proses metabolisme (Mudjiman 1989). Pada usaha penetasan kista, umumnya digunakan air laut (salinitas ). Namun pada penelitian Vanhaeckeet et al. in Purwanti (2004) ditemukan laju penetasan yang lebih tinggi dengan menggunakan salinitas lebih rendah dari air laut. Menurut Sorgeloos (1980), hal tersebut terjadi karena pada salinitas yang lebih rendah dari air laut terjadi penurunan kebutuhan energi untuk memecahkan cangkang. Dengan demikian, proses penetasan kista lebih mudah. Salinitas yang dibutuhkan untuk penetasan kista Artemia secara optimal adalah (Direktorat Jendral Perikanan dan Kelautan 2003). Pertumbuhan biomassa Artemia yang baik terjadi pada kisaran salinitas (Isnansetyo dan Kurniastuty 1995). Salinitas dapat berfluktuasi karena pengaruh penguapan dan hujan. Salinitas dapat mempengaruhi pertumbuhan dan perkembangbiakan zooplankton. Kisaran salinitas yang tidak sesuai berpengaruh terhadap tingkat kelangsungan hidup dan tingkat pertumbuhannya (Supriya et al. 2002). Oksigen terlarut (Dissolved oxygen/do) merupakan jumlah gas oksigen yang ditemukan terlarut di dalam air (mg/l). Jumlah oksigen yang terlarut ini tergantung pada suhu, salinitas, tekanan atmosfer, dan turbulensi air. Semakin tinggi temperatur dan salinitas perairan, semakin rendah tingkat kelarutan oksigen dalam air. Lapisan atas permukaan laut dalam keadaan normal mengandung oksigen terlarut sebesar 4,5 9,0 mg/l. Selain temperatur dan salinitas, oksigen terlarut juga dipengaruhi oleh tekanan hidrostatik. Semakin dalam laut, semakin rendah kandungan oksigen yang terlarut dalam perairan tersebut (Sanusi 2006). Oksigen terlarut dalam perairan sangat dibutuhkan oleh semua organisme yang ada di dalamnya untuk pernafasan dalam rangka melangsungkan metabolisme dalam tubuh mereka. Oksigen terlarut dalam air dapat berasal dari difusi, hasil fotosintesa fitoplankton dan adanya aliran air baru (Supriya et al. 2002). Dalam penentuan persyaratan pemeliharaan zooplankton, kandungan oksigen perairan bukan merupakan faktor utama. Kebutuhan akan oksigen terlarut tersebut dapat dipenuhi dari sumber pengudaraan tersendiri, yaitu dengan menggunakan blower (Supriya et al. 2002). Toleransi yang ekstrim terhadap konsentrasi oksigen terlarut adalah sifat umum untuk beberapa spesies Artemia yang sukses menghadapi kondisi buruk dibawah

9 11 kondisi ekstrim (Amat 1985 in Nunes et al. 2005). Artemia termasuk hewan euroksibion, yaitu hewan yang mempunyai kisaran toleransi yang lebar terhadap kandungan oksigen. Kandungan oksigen yang baik untuk pertumbuhan Artemia adalah di atas 3,0 mg/l. Untuk kehidupan biota laut secara layak oksigen terlarut harus lebih besar dari 5,0 mg/l (Kep.51/MENLH/2004) (Lampiran 1). Salah satu parameter lingkungan penting yang dapat mempengaruhi pertumbuhan dan keberadaan organisme air termasuk zooplankton adalah ph. Menurut Boyd (1982), dekomposisi bahan organik dan respirasi akan menurunkan kandungan oksigen terlarut, yang berdampak pada meningkatnya kadar CO 2 bebas, sehingga mengakibatkan menurunnya ph air. Sverdrup et al. (1960), mengatakan bahwa konsentrasi ion hidrogen dari air laut umumnya bersifat basa. Ion H + dan OH merupakan bagian dari kesetimbangan, beberapa pengertian dari sistem karbon dioksida memerlukan pengetahuan dari konsentrasi mereka. Air hasil sulingan murni dibagi menjadi ke dalam ion hidrogen dan hidroksil: H 2O H + + OH Jika konsentrasi ion H + melebihi ion OH, maka larutan adalah asam, dan jika lebih sedikit adalah basa. Konsentrasi ion hidrogen dinyatakan secara normal sebagai kesetimbangan per liter dan dinyatakan sebagai : 1 ph = log + [H ] Jadi, larutan netral memiliki ph sekitar 7, larutan asam memiliki ph kurang dari 7, dan larutan basa memiliki ph lebih dari 7. Kondisi ph air juga mempengaruhi kehidupan Artemia. Artemia membutuhkan ph air yang sedikit bersifat basa untuk kehidupannya. Nilai ph air sangat berpengaruh terhadap efisiensi penetasan kista. Efesiensi penetasan kista akan menurun pada ph yang kurang dari 8 (Mudjiman 1989). Artemia dapat tumbuh dengan baik pada ph air yang berkisar antara 7,5 8,5 (Isnansetyo dan Kurniastuty 1995). Untuk kehidupan biota laut secara layak nilai ph harus dalam kisaran 7,0 8,5 (Kep.51/MENLH/2004) (Lampiran 1). Amonia (NH 3) yang terkandung dalam suatu perairan merupakan salah satu hasil dari proses penguraian bahan organik. Amonia ini berada dalam dua bentuk, yaitu amonia tak berion (NH 3) dan amonia berion (NH 4). Amonia tak berion bersifat racun, sedangkan amonia berion bersifat tidak beracun. Tingkat peracunan amonia

10 12 tak berion berbeda untuk setiap species, tetapi pada kadar 0,6 ppm dapat membahayakan organisme tersebut (Boyd 1982). Efesiensi penetasan kista Artemia dipengaruhi oleh suhu, salinitas, ph, oksigen terlarut dan intensitas cahaya. Pengaruh intensitas cahaya terhadap 4 strain geografi dari kista Artemia menunjukkan bahwa kista Great Salt Lake memiliki perbedaan yang minimum dalam derajat penetasan dengan perlakuan intensitas cahaya berbeda (Sorgeloos 1973 in Vanhaecke et al. 1981). Amonia biasanya timbul akibat kotoran dan hasil aktivitas mikroorganisme dalam proses dekomposisi bahan organik yang kaya akan nitrogen. Bahan organik yang terkandung di dalam air berasal dari organisme yang mati, hasil ekskresi (kotoran organisme), dan sisa pakan. Tingginya kadar amonia biasanya diikuti naiknya kadar nitrit. Tingginya kadar nitrit terjadi akibat lambatnya perubahan dari nitrit ke nitrat oleh bakteri Nitrobacter (Supriya et al. 2002). Artemia memiliki ketahanan terhadap kandungan amonia yang tinggi. Menurut Sorgeloos (1980), konsentrasi amonia sebesar 2 mg/l dapat menghambat penelanan makanan. Untuk kehidupan biota laut secara layak, nilai amonia total (NH 3 N) harus kurang dari 0,3 mg/l (Kep.51/MENLH/2004)(Lampiran 1). Artemia bersifat pemakan segala atau omnivora. Makanan Artemia berupa plankton, detritus, dan partikel partikel halus yang dapat masuk ke dalam mulut. Dalam mengambil makanan, Artemia bersifat penyaring tidak selektif (non selectif filter feeder). Oleh karena itu, kandungan gizi Artemia sangat dipengaruhi oleh kualitas pakan yang tersedia pada perairan tersebut. Ukuran terbesar dari partikel pakan yang dapat ditelan Artemia adalah 50 mikron. Artemia mengambil pakan dari media hidupnya terus menerus sambil berenang. Pengambilan makanan dilakukan menggunakan antenna kedua pada nauplius, dan menggunakan telopodite yang merupakan bagian dari thoracopoda pada Artemia dewasa (Isnansetyo dan Kurniastuty 1995). Dalam melakukan proses tumbuh, Artemia secara periodik melakukan ganti kulit (molting) yang frekuensinya tergantung dari stadium siklus hidup dan kondisi lingkungan tempat hidupnya. Pada proses ganti kulit ini, aktivitas osmoregulasi memegang peranan penting yang berhubungan dengan besarnya energi yang digunakan (Riani 1990 in Purwanti 2004). Menurut Locwood (1989) in Purwanti (2004), walaupun ganti kulit hanya merupakan bagian yang pendek dari seluruh siklus hidup, tetapi periode ini cukup berbahaya dan tingkat kematian sering tinggi pada saat ini. Sumber dari bahaya

11 13 tersebut ada tiga macam, yaitu meliputi faktor mekanik, fisiologi, dan biologi. Masalah fisiologi yang timbul adalah akibat beragamnya rasio ionik dan konsentrasi total ion dalam cairan tubuh pada saat ganti kulit dan hasil pengenceran akibat penarikan kadar air yang masuk ke dalam sel dan dari perubahan permeabilitas pada permukaan tubuh. Menurut cara reproduksinya, Artemia dipilah menjadi dua, yaitu Artemia yang bersifat biseksual dan Artemia yang bersifat parthenogenetik. Artemia biseksual berkembangbiak secara seksual dengan perkembangbiakan yang didahului oleh perkawinan antara jantan dan betina. Artemia parthenogenetik berkembangbiak secara parthenogenesis, yaitu betina menghasilkan telur atau nauplius tanpa adanya pembuahan (Isnansetyo dan Kurniastuty 1995). Siklus hidup Artemia cukup unik, baik jenis biseksual maupun partenogenetik (Gambar 5). Perkembangbiakannya dapat secara ovovivipar maupun ovipar tergantung kondisi lingkungan, terutama salinitas. Pada salinitas tinggi akan dihasilkan kista yang keluar dari induk betina, sehingga disebut perkembangbiakan secara ovipar. Pada salinitas rendah tidak akan dihasilkan kista, tetapi telur langsung menetas menjadi nauplius, sehingga disebut perkembangbiakan secara ovovivipar (Isnansetyo dan Kurniastuty 1995). Dalam kehidupan Artemia, baik pada perkembangan biseksual maupun parthenogenesis kedua duanya dapat terjadi secara ovovivipar maupun ovipar. Pada cara ovovivipar (menghasilkan nauplius), sel telur yang telah dibuahi di dalam uterus berkembang menjadi embrio melalui stadia blastula dan gastrula. Dalam keadaan lingkungan yang baik, gastrula akan berkembang lebih lanjut menjadi nauplius, yang akhirnya dikeluarkan dari tubuh induknya. Apabila keadaan lingkungan tersebut buruk, perkembangannya terhenti sampai pada tingkat gastrula. Selanjutnya stadia gastrula dibungkus dengan cangkang telur yang kuat dan mengandung hematin yang dihasilkan oleh kelenjar cangkang telur, yang dikeluarkan dari tubuh induknya dalam bentuk kista. Kista akan menjadi nauplius melalui proses penetasan lebih dahulu yang disebut dengan cara ovivar (Mudjiman 1989). Menurut Mudjiman (1989), ovoviviparitas biasanya terjadi apabila keadaan lingkungan cukup baik dengan salinitas air berkisar antara ke bawah, sehingga burayak yang masih lembut itu dapat hidup tanpa gangguan. Oviparitas biasanya terjadi apabila keadaan lingkungan sangat buruk, terutama kadar oksigennya sangat rendah dan salinitas lebih dari 150. Dengan demikian, kista yang bercangkang tebal dan kuat itu mampu menghadapi keadaan yang buruk sambil

12 14 beristirahat. Apabila keadaan lingkungan sudah membaik, kista menetas menjadi nauplius, dan memulai kehidupan baru. Pada jenis biseksual, perkembangbiakan diawali dengan perkawinan. Perkawinan diawali dengan adanya pasangan jantan dan betina yang berenang bersama (riding pair). Artemia betina di depan, sedangkan Artemia jantan memeluk dengan menggunakan penjepit di belakangnya. Riding pair berlangsung cukup lama, walaupun perkawinan/kopulasinya hanya membutuhkan waktu singkat. Artemia jantan memasukkan penis ke dalam lubang uterus betina dengan cara membengkokkan tubuhnya ke depan (Isnansetyo dan Kurniastuty 1995). Gambar 5. Siklus Hidup Artemia (Mudjiman 1989)