KEEFEKTIFAN BAKTERI ENDOFIT DAN PLANT GROWTH PROMOTING RHIZOBACTERIA DALAM MENEKAN PENYAKIT LAYU BAKTERI (Ralstonia solanacearum) PADA TOMAT

Transkripsi

1 KEEFEKTIFAN BAKTERI ENDOFIT DAN PLANT GROWTH PROMOTING RHIZOBACTERIA DALAM MENEKAN PENYAKIT LAYU BAKTERI (Ralstonia solanacearum) PADA TOMAT ZHENITA VINDA TRI HANDINI DEPARTEMEN PROTEKSI TANAMAN FAKULTAS PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2011

2 ABSTRAK ZHENITA VINDA TRI HANDINI. Keefektifan Bakteri Endofit dan Plant Growth Promoting Rhizobacteria dalam Menekan Penyakit Layu Bakteri (Ralstonia solanacearum) pada Tomat. Dibimbing oleh ABDJAD ASIH NAWANGSIH. Penyakit layu bakteri merupakan salah satu penyakit penting pada tanaman tomat. Penyakit ini disebabkan oleh bakteri patogen Ralstonia solanacearum. Kisaran inang dari R. solanacearum sangat luas. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui keefektifan bakteri endofit jika dikombinasikan dengan bakteri PGPR dalam menekan penyakit layu bakteri pada tomat secara in planta di rumah kaca dan di lapangan serta mengetahui pengaruhnya terhadap pemacuan pertambahan tinggi tanaman. Metode penelitian yang dilakukan yaitu dengan menyiram bibit tomat dengan agens biokontrol yang dilakukan sebelum pindah tanam dan media tanam yang digunakan mengandung R. solanacearum. Bakteri endofit yang digunakan berasal dari penelitian sebelumnya yaitu isolat dengan kode BL10, BC4, dan BC10. Bakteri PGPR yang digunakan merupakan koleksi Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, IPB yaitu P. fluorescens RH4003 dan B. subtilis AB89. Perlakuan yang diberikan terdiri dari 12 perlakuan yaitu aplikasi dari masing-masing bakteri endofit, masing-masing bakteri PGPR, dan kombinasi keduanya serta kontrol. Rancangan percobaan yang digunakan yaitu Rancangan Acak Kelompok (RAK) dan data yang diperoleh dianalisis menggunakan analisis ragam (anova) dengan menggunakan program SAS. R. solanacearum kurang berkembang baik di rumah kaca sehingga tingkat kejadian penyakitnya cukup rendah. Gabungan antara bakteri endofit dan PGPR kurang efektif dalam menekan perkembangan penyakit layu bakteri di lapangan. Aplikasi gabungan antara PGPR dan endofit juga tidak mempengaruhi pertambahan tinggi tanaman dan bobot kering. Bakteri endofit S. epidermidis (BC4) bersifat antagonis jika dikombinasikan dengan bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 dan B. subtilis AB89.

3 KEEFEKTIFAN BAKTERI ENDOFIT DAN PLANT GROWTH PROMOTING RHIZOBACTERIA DALAM MENEKAN PENYAKIT LAYU BAKTERI (Ralstonia solanacearum) PADA TOMAT ZHENITA VINDA TRI HANDINI Skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Pertanian pada Departemen Proteksi Tanaman DEPARTEMEN PROTEKSI TANAMAN FAKULTAS PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2011

4 Judul Nama NIM : Keefektifan Bakteri Endofit dan Plant Growth Promoting Rhizobacteria dalam Menekan Penyakit Layu Bakteri (Ralstonia solanacearum) pada Tomat : Zhenita Vinda Tri Handini : A Menyetujui Dosen Pembimbing Dr. Ir. Abdjad Asih Nawangsih, MSi NIP Mengetahui Ketua Departemen Proteksi Tanaman Dr. Ir. Dadang, MSc NIP Tanggal lulus :

5 RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan di Klaten, Jawa Tengah pada tanggal 3 September Penulis merupakan anak ketiga dari tiga bersaudara pasangan Wuryanto dan Siti Salami. Pada tahun 2004, penulis diterima di SMA Negeri 1 Karanganom dan menamatkan pendidikan di SMA pada tahun Setelah lulus dari SMA, penulis diterima di Institut Pertanian Bogor pada tahun 2007 melalui jalur Undangan Seleksi Masuk IPB (USMI). Pada tahun 2008, penulis menjadi mahasiswa Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian IPB. Selama di IPB penulis bergabung dengan organisasi Himpunan Mahasiswa Proteksi Tanaman (HIMASITA) dan Organic Farming Club. Penulis pernah menjadi asisten praktikum Ilmu Hama Tumbuhan Dasar dan pernah mengikuti Program Kreativitas Mahasiswa (PKM).

6 PRAKATA Puji syukur penulis panjatkan kepada Allah swt. yang telah memberikan rahmat dan karunia-nya sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi yang berjudul Keefektifan Bakteri Endofit dan Plant Growth Promoting Rhizobacteria dalam Menekan Penyakit Layu Bakteri (Ralstonia solanacearum) pada Tomat. Skripsi ini telah mendapatkan banyak bantuan dari beberapa pihak sehingga dapat diselesaikan dengan baik. Penulis mengucapkan banyak terima kasih kepada : 1. Dr. Ir. Abdjad Asih Nawangsih, MSi selaku dosen pembimbing yang telah sabar membimbing dan meluangkan banyak waktu serta telah banyak memberikan ilmu, nasihat, masukan, dan saran kepada penulis. 2. Dr. Ir. Sugeng Santoso, MAgr selaku dosen penguji tamu yang telah memberikan banyak masukan dan saran dalam penyempurnaan skripsi ini. 3. Ibunda dan ayahanda tercinta yang selalu mendoakan penulis dan telah banyak berkorban serta selalu memberikan motivasi dan dukungan bagi penulis sehingga penulis dapat memperoleh gelar sarjana. 4. Kakak-kakakku, Ririn dan Dhian yang telah turut memberikan semangat, doa, dan dukungan selama penelitian sampai penulisan skripsi. 5. Yana Anisa dan Ida Parida sebagai teman satu bimbingan yang telah banyak membantu dan memberikan semangat. 6. Bapak Mput, mbak Didi, teman-teman di laboratorium bakteriologi tumbuhan, dan saudara-saudaraku PTN44 yang telah banyak membantu dan memberikan motivasi. Skripsi ini masih jauh dari sempurna, oleh karena itu saran dan kritik sangat diharapkan oleh penulis. Semoga skripsi ini bisa memberikan banyak manfaat kepada semua pihak yang membaca dan terutama dalam bidang proteksi tanaman. Bogor, Agustus 2011 Zhenita Vinda Tri Handini

7 DAFTAR ISI DAFTAR TABEL... DAFTAR GAMBAR... DAFTAR LAMPIRAN... PENDAHULUAN... 1 Halaman Latar Belakang... 1 Tujuan Penelitian... 3 Hipotesis... 3 TINJAUAN PUSTAKA... 4 Layu Bakteri... 4 Pengendalian Layu Bakteri... 5 Penggabungan Berbagai Jenis Agens Biokontrol... 6 Bakteri Endofit... 7 Isolat Bakteri Endofit BC Isolat Bakteri Endofit BC Isolat Bakteri Endofit BL Rizobakteri Pemacu Pertumbuhan Tanaman... 9 Bacillus subtilis AB Pseudomonas fluorescens RH BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Bahan dan Alat Metode Penelitian Penyiapan Tanaman Uji Isolasi Bakteri Ralstonia solanacearum Peremajaan Bakteri Endofit, PGPR,dan Bakteri Patogen (R. solanacearum) Penyiapan Suspensi Bakteri Patogen, endofit dan PGPR Pengujian Pengaruh Aplikasi Bakteri Endofit dan PGPR terhadap Penyakit Layu Bakteri pada Tomat Percobaan di Rumah Kaca Percobaan di Lapangan Analisis Data HASIL DAN PEMBAHASAN Pengaruh Aplikasi Bakteri Endofit dan PGPR terhadap Pertumbuhan Tanaman dan Kejadian Penyakit Layu Bakteri di Rumah Kaca Laju Pertambahan Tinggi Tanaman Kejadian Penyakit Layu Bakteri x xi xii

8 ix Masa Inkubasi Penyakit Layu Bakteri Bobot Kering Tanaman Pengaruh Aplikasi Bakteri Endofit dan PGPR terhadap Kejadian Penyakit Layu Bakteri di Lapangan Jenis Hubungan Antar Agens Biokontrol KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan Saran DAFTAR PUSTAKA LAMPIRAN... 45

9 x DAFTAR TABEL Halaman 1 Laju Pertambahan Tinggi Tanaman Tomat pada Berbagai Perlakuan Bakteri PGPR dan Endofit secara Tunggal dan Kombinasi serta Nilai AUHPGC di Rumah Kaca pada Musim Kemarau Laju Pertambahan Tinggi Tanaman Tomat pada Berbagai Perlakuan Bakteri PGPR dan Endofit secara Tunggal dan Kombinasi serta Nilai AUHPGC di Rumah Kaca pada Musim Penghujan Kejadian Penyakit Layu Bakteri pada Berbagai Perlakuan Bakteri PGPR dan Endofit secara Tunggal dan Kombinasi serta Nilai AUDPC di Rumah Kaca pada Musim Penghujan Masa Inkubasi Penyakit Layu Bakteri pada Berbagai Perlakuan Bakteri PGPR dan Endofit secara Tunggal dan Kombinasi di Rumah Kaca pada Musim Penghujan Rata-rata Bobot Kering Tanaman Tomat pada Berbagai Perlakuan Bakteri PGPR dan Endofit secara Tunggal dan Kombinasi di Rumah Kaca pada Musim Penghujan Rata-rata Bobot Kering Tanaman Tomat pada setiap Blok di Rumah Kaca pada Musim Penghujan Kejadian Penyakit Layu Bakteri pada Berbagai Perlakuan Bakteri PGPR dan Endofit secara Tunggal dan Kombinasi serta Nilai AUDPC di Lapangan Hasil Perbandingan Rata-Rata Kejadian Penyakit pada Masing-Masing Perlakuan dengan Kontrol (Uji Dunnett) Keefektifan Pengendalian (Index Penekanan), Nilai SF (Synergy Factor) dan Jenis Hubungan Antar Agens Biokontrol Berdasarkan Nilai AUDPC... 38

10 xi DAFTAR GAMBAR Halaman 1 Hasil Isolasi Patogen; R. solanacearum pada Media TZC Hasil Peremajaan Bakteri endofit, PGPR, dan R. solanacearum; bakteri endofit Bacillus amyloliquefaciens (BL10) a), bakteri endofit Staphylococcus epidermidis (BC4) b), bakteri endofit isolat BC10 c), bakteri PGPR B. subtilis AB89 (B12) d), bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) e), R. solanacearum pada media King s B f)... 15

11 xii DAFTAR LAMPIRAN Halaman 1 Hasil Analisis Ragam Laju Pertambahan Tinggi Tanaman Tomat di Rumah Kaca pada Musim Kemarau Hasil Analisis Ragam Laju Pertambahan Tinggi Tanaman Tomat di Rumah Kaca pada Musim Penghujan Hasil Analisis Ragam Kejadian Penyakit Layu Bakteri pada Tanaman Tomat di Rumah Kaca pada Musim Penghujan Hasil Analisis Ragam Bobot Kering Tanaman Tomat di Rumah Kaca pada Musim Penghujan Hasil Analisis Ragam Kejadian Penyakit Layu Bakteri pada Tanaman Tomat di Lapangan Persiapan Tanah Terinfestasi R. solanacearum; pencampuran suspense R. solanacearum dengan air (a), pencampuran tanaman tomat terserang layu bakteri dengan air (b), pencampuran suspensi R. solanacearum dengan tanah dari lapangan Persiapan Perlakuan Agens Biokontrol; 200 ml suspensi agens biokontrol dimasukkan ke dalam ember (a), pencampuran 200 ml agens biokontrol dengan 1800 ml air Gejala Layu Bakteri di Rumah Kaca Keadaan Pertanaman Tomat di Rumah Kaca; umur 25 hst (kiri), umur 32 hst (kanan) Pengukuran Bobot Kering Tanaman Tomat; penjemuran tanaman (a), penimbangan bobot kering tanaman (b) Gejala Layu Bakteri di Lapangan... 54

12 PENDAHULUAN Latar Belakang Tomat merupakan salah satu dari kelompok sayuran yang memiliki banyak manfaat. Tanaman tomat mudah ditemukan dimana saja dan dapat tumbuh di daerah dataran rendah serta tinggi. Tomat termasuk dalam famili Solanaceae, genus Lycopersicon, dan spesies Lycopersicum esculentum (Tigchelaar 2006). Tanaman tomat termasuk tanaman semusim yaitu tanaman dengan sekali panen dan setelah itu tanaman akan mati. Budidaya tomat lebih banyak dilakukan di daerah dataran tinggi daripada di daerah dataran rendah, karena budidaya tomat di daerah dataran rendah sering terjadi serangan penyakit layu bakteri. Menurut Tigchelaar (2006) suhu optimum bagi pertumbuhan tomat yaitu C, pertumbuhan dan perkembangan tomat hampir akan berhenti jika suhu di bawah 10 0 C. Masa tanam tomat yang baik yaitu pada awal musim kemarau atau pada akhir musim hujan. Salah satu penyakit penting pada tomat yaitu layu bakteri yang dapat mengakibatkan penurunan hasil panen. Layu bakteri menyebabkan tanaman menjadi layu dan akhirnya mati. Gejala awal dari penyakit layu bakteri yaitu layunya daun-daun termuda dari tanaman. Gejala selanjutnya yaitu seluruh tanaman menjadi layu secara tiba-tiba. Sampai saat ini penyakit layu bakteri merupakan penyakit penting dan sangat merugikan sampai ± 75% (Gunawan 1997). Penyakit layu bakteri disebabkan oleh bakteri patogen Ralstonia solanacearum (McCarter 2006). Penyakit ini penting karena dapat menyerang beberapa tanaman yang termasuk ke dalam famili Solanaceae dan beberapa famili tanaman yang lain. Menurut Yang (1979) patogen ini dapat menyerang lebih dari 25 famili tanaman, kebanyakan terdiri dari tanaman seperti tomat, kentang, tembakau, lada, terung, kacang tanah, kedelai, dan pisang. Sampai saat ini beberapa cara pengendalian layu bakteri sudah dilakukan, seperti diproduksinya benih tahan layu bakteri. Namun, variasi ras dan strain dari R. solanacearum menyebabkan sulitnya penggunaan varietas tahan tersebut di beberapa daerah, varietas tahan yang akan digunakan harus mampu bertahan dan cocok di daerah setempat (AVRDC 2004). Beberapa teknik pengendalian secara

13 2 biologi atau hayati sudah banyak dicoba. Sebagai contohnya yaitu yang telah dilakukan oleh Nawangsih (2006) yang menggunakan bakteri antagonis Pseudomonas fluorescens RH4003 dan Bacillus subtilis AB89 dalam menghambat perkembangan R. solanacearum pada tomat. P. flurorescens RH40003 merupakan bakteri gram negatif, tidak membentuk spora, menghasilkan senyawa floresen pada medium King s B agar (Nawangsih 2006). Dari hasil penelitian Nawangsih (2006) diketahui bahwa B. subtilis AB89 menghasilkan zone hambatan dengan diameter paling besar dan mampu menginduksi aktifitas peroxidase paling tinggi, serta menghasilkan siderofor dan protease. Pseudomonas fluorescens RH4003 dan Bacillus subtilis AB89 tersebut merupakan kelompok bakteri PGPR. Menurut Soesanto (2008) PGPR merupakan rizobakteri pemacu pertumbuhan tanaman, bakteri PGPR mampu mengkoloni perakaran tanaman. Karena keaktifan pengkolonian akar tersebut, akar dapat menyerap produk mikroba yang secara langsung mempengaruhi pertumbuhan dan fisiologi akar serta invasi patogen. Selain penggunaan bakteri PGPR tersebut, bakteri endofit juga telah diteliti untuk menekan perkembangan patogen R. solanacearum. Menurut Hayward & Hartman (1994) bakteri endofit yaitu mikroorganisme yang hidup di dalam jaringan tanaman dan akan bersaing dengan patogen. Damayanti (2010) mengisolasi bakteri endofit dari tanaman tomat sehat dan diperoleh beberapa isolat bakteri endofit yang mampu menekan perkembangan patogen R. solanacearum. Bakteri endofit tersebut diantaranya yaitu isolat dengan kode BC4, BC10, dan BL10. Ketiga isolat tersebut akan digunakan dalam penelitian ini. Penggunaan bakteri antagonis memiliki beberapa keuntungan. Pada dasarnya bakteri antagonis mampu mengeksploitasi kondisi yang disukai patogen. Bakteri antagonis yang ideal harus dapat mengkolonisasi dan bertahan pada jaringan pada berbagai kondisi saat jaringan tumbuh tanpa mengurangi hasil (Saddler 2008). Sampai saat ini pengujian bakteri antagonis (bakteri PGPR dan bakteri endofit) untuk menekan perkembangan bakteri R. solanacearum dilakukan secara masing-masing, belum ada penelitian yang menggabungkan bakteri PGPR dengan bakteri endofit dalam menekan perkembangan patogen. Dalam penelitian ini akan dilakukan penggabungan bakteri PGPR dan bakteri endofit dalam menekan

14 3 perkembangan penyakit layu bakteri pada tomat. Pemberian agens biokontrol dengan cara kombinasi/ penggabungan dari dua atau lebih agens biokontrol dimaksudkan untuk meningkatkan keefektifannya dalam mengendalikan suatu penyakit pada tanaman. Seperti yang telah diketahui bahwa bakteri PGPR berfungsi melindungi (memberikan proteksi) tanaman dari serangan patogen dengan mengkolonisasi di daerah perakaran dan bakteri endofit hidup dalam jaringan tanaman yang berfungsi melindungi tanaman dari serangan patogen. Dengan aplikasi gabungan dari kedua bakteri ini diharapkan tanaman dapat terlindungi dari serangan patogen. Patogen yang akan masuk melalui akar akan dicegah masuknya oleh bakteri PGPR dan apabila patogen masih lolos maka patogen tersebut akan dihambat perkembangannya oleh bakteri endofit dalam jaringan tanaman. Penggabungan kedua bakteri ini untuk melihat apakah kedua bakteri efektif dalam mengendalikan penyakit layu bakteri jika diaplikasikan secara bersama dan apakah kedua bakteri tersebut bersifat sinergis (saling mendukung) atau antagonis (saling menghambat). Tujuan Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui keefektifan bakteri endofit jika dikombinasikan dengan bakteri PGPR dalam menekan perkembangan penyakit layu bakteri pada tomat secara in planta di rumah kaca dan di lapangan serta mengetahui pengaruhnya terhadap pemacuan pertambahan tinggi tanaman tomat. Hipotesis Gabungan bakteri endofit dan PGPR dapat menekan perkembangan penyakit layu bakteri pada tomat dengan efektif dan dapat memacu pertambahan tinggi tanaman tomat.

15 TINJAUAN PUSTAKA Layu Bakteri Salah satu penyakit yang banyak menyerang tanaman tomat yaitu penyakit layu bakteri. Penyakit ini disebabkan oleh bakteri Ralstonia solanacearum (McCarter 2006). Serangan berat penyakit layu bakteri banyak terjadi di daerah beriklim tropis dan subtropis dengan curah hujan tinggi dan temperatur panas. R. solanacearum masuk dan memperbanyak diri melalui pembuluh xylem dalam jaringan tanaman sehingga mengganggu proses translokasi air dan nutrisi, akibatnya tanaman menjadi terkulai layu dan mati (Agrios 1988). Tanaman yang pertama layu terjadi pada daun paling muda selama suhu panas (AVRDC 2004), selanjutnya dalam waktu 7-25 hari tanaman akan mati (Nasrun et al. 2007). Tanaman yang terinfeksi dapat kembali segar untuk sementara pada sore hari ketika suhu udara menjadi lebih dingin. Beberapa hari kemudian, tiba-tiba tanaman menjadi layu permanen. Akar dan bagian bawah dari batang berwarna cokelat pada sistem pembuluhnya, warna cokelat pada berkas pembuluh tersebut akan terlihat jika akar atau batang dipotong/ diiris secara melintang (AVRDC 2004). Gejala lain dari layu bakteri yaitu jika batang tanaman terserang dipotong dan diletakkan pada suatu wadah kecil yang berisi air maka akan terlihat oose (massa) bakteri seperti benang-benang putih halus yang keluar dari potongan batang tersebut (AVRDC 2004). Ketika keadaan kurang menguntungkan bagi perkembangan penyakit (seperti kondisi yang terlalu dingin dan kering), tanaman yang terinfeksi hanya akan menunjukkan gejala kerdil dan akar adventif berkembang pada batang utama, daun bagian bawah akan menjadi kuning sebelum gejala layu terjadi (AVRDC 2004). Tanaman tampak seolah-olah seperti kekurangan air. Hal ini karena bakteri menyerang pembuluh kayu (xylem) sehingga air dan unsur hara tidak dapat masuk ke dalam tanaman akibat tersumbat oleh massa bakteri (Gunawan 1997). Layu bakteri biasanya muncul pada saat tanaman dalam fase paling rentan yaitu menjelang pembungaan (Nawangsih 2006). R. solanacearum dapat bertahan dalam jaringan tanaman atau berasosiasi

16 5 dengan inang alternatif seperti Ageratum conyzoides, Crassocephalum crepidiodes, Crotalaria juncea, dan Croton hirtus (Mehan et al. 1994). Penyakit layu bakteri menyerang tanaman tomat pada berbagai stadia pertumbuhan dan dapat menyebabkan kerugian sampai ± 75% (Gunawan 1997). Penyakit layu bakteri ini kadang-kadang dikelirukan dengan penyakit yang disebabkan oleh cendawan seperti layu Fusarium (AVRDC 2004). Untuk membedakannya, batang tanaman dipotong lalu dimasukkan ke dalam air steril. Jika mengeluarkan lendir maka layu tersebut disebabkan oleh bakteri (McCarter 2006). Pengendalian Layu Bakteri Teknik pengendalian yang dapat dilakukan untuk menekan atau mengurangi penyakit layu bakteri yaitu: 1) rotasi tanaman dengan menggunakan tanaman yang bukan termasuk famili Solanaceae (jagung, kubis, wortel) yang dipadukan dengan sanitasi tanah, 2) perbaikan drainase dan irigasi serta pengendalian gulma, 3) pemberian kapur untuk meningkatkan ph tanah sehingga semua unsur hara dapat diserap tanaman, 4) menghindari tanah yang terinfeksi berat dengan cara pergiliran tanaman yang lama dan hindari penyebaran nematoda dengan menggunakan nematisida/ insektisida untuk mengendalikan serangga tanah yang diaplikasikan sebelum tanam (Gunawan 1997). Bustamam (2006) melakukan seleksi mikroba rizosfer antagonis dari tanah suppressive yang terinfeksi R. solanacearum, dari hasil isolasi diperoleh beberapa mikroba antagonis yang efektif dalam mengendalikan penyakit layu bakteri pada jahe. Menurut McCarter (2006) pengendalian layu bakteri pada tanaman yang tumbuh pada tanah yang telah terinfestasi R. solanacearum sulit dilakukan. Varietas tahan yang berhasil di daerah setempat mungkin akan gagal ketika ditanam di tempat lain. Hal tersebut dapat terjadi karena strain patogen yang berbeda dan keadaan lingkungan yang berbeda. Menurut Sigee (1993) pengendalian layu bakteri banyak menggunakan strain-strain bakteri yang bersifat antagonis terhadap patogen, agens antagonis tersebut dapat berasal dari mikroorganisme alamiah atau strain hasil rekayasa genetik.

17 6 Pengendalian secara biologi terhadap layu bakteri yang telah dilakukan yaitu dengan menggunakan P. fluorescens dan Bacillus spp. pada nilam (Chrisnawati et al. 2009) serta P. fluorescens dan B. subtilis pada tomat (Nawangsih 2006). Damayanti (2010) menggunakan bakteri endofit untuk menekan perkembangan penyakit layu bakteri pada tomat. Dari beberapa isolat yang digunakan terdapat tiga isolat yang menunjukkan potensinya dalam menekan perkembangan penyakit layu bakteri. Ketiga isolat tersebut yaitu BC4, BC10, dan BL10. Tingkat kejadian penyakit dari ketiga isolat tersebut lebih rendah dibandingkan tingkat kejadian penyakit pada perlakuan lain dan kontrol. Sehingga diambil isolat dengan kode BC4, BC10, dan BL10 untuk uji lanjut. Penggabungan Berbagai Jenis Agens Biokontrol Konsep dari penggunaan agens biokontrol didasarkan pada kemampuan agens biokontrol itu untuk berkolonisasi di rizosfer, untuk menghasilkan antibiotik dalam jaringan tanaman, untuk mendukung perkembangan agens biokontrol, dan mencegah atau menghambat perkembangan patogen (Hayward & Hartman 1994). Berdasarkan hasil pengujian Nawangsih (2006) bahwa P. fluorescens RH4003, Bacillus subtilis AB89 dan B. cereus L32 menunjukkan antagonisme bila diaplikasikan secara bersamaan. Hal tersebut dapat terjadi karena adanya kompetisi ruang maupun nutrisi atau agens biokontrol mengeluarkan senyawa yang dapat menghambat populasi maupun kinerja agens biokontrol yang lain. Ketiga agens biokontrol yang digunakan dalam pengujian (B. subtilis AB89, B.cereus L32, dan P. fluorescens RH4003) menghasilkan siderofor sehingga bila diaplikasikan secara bersamaan akan terjadi persaingan antar agens biokontrol dalam mengchelat Fe 3+ (Nawangsih 2006). Persyaratan agar aplikasi dua agens biokontrol atau lebih dapat bekerja secara optimal yaitu: 1) bekerja pada tempat yang berbeda misalnya pada rizosfer atau sisa-sisa bahan organik, 2) memiliki mekanisme pengendalian yang berbeda, misalnya kompetisi dan antibiosis, 3) memerlukan substrat yang berbeda, misalnya lendir tanaman dan bakteri untuk cendawan dan eksudat akar untuk bakteri kelompok pseudomonas, dan 4) kompatibel dengan lingkungan tanah serta

18 7 perubahan yang terjadi karena peningkatan cara bercocok tanam (Graham & Mitchell 1999 dalam Nawangsih 2006). Penggabungan P. fluorescens dengan Bacillus spp. juga diuji untuk mengendalikan layu bakteri pada nilam dan diperoleh hasil bahwa kombinasi kedua bakteri tersebut mampu menekan perkembangan layu bakteri, selain itu mampu meningkatkan tinggi tanaman, jumlah daun, jumlah tunas, berat basah daun, dan berat kering daun (Chrisnawati et al. 2009). Sudarsono & Malik (2006) melakukan pengujian untuk mengendalikan penyakit layu bakteri pada kentang dengan mengkombinasikan agens antagonis P. fluorescens dan B. subtilis yang diaplikasikan bersama dengan EM4 dan bokashi. Dari beberapa perlakuan yang diberikan yaitu kombinasi antara P. fluorescens, B. subtilis, dan bokashi mampu memberikan efektifitas pengendalian yang lebih besar daripada perlakuan lain yaitu sebesar 53,13%. Kombinasi tersebut juga memiliki bobot kering yang lebih besar dibanding perlakuan yang lain yaitu sebesar 4,08 gram. Bakteri Endofit Bakteri endofit yaitu mikroorganisme yang hidup di dalam jaringan tanaman dan akan bersaing dengan patogen serta keberadaannya dalam jaringan tanaman tidak membahayakan inangnya (Hayward & Hartman 1994; Tan 2001 dalam Radji 2005). Penggunaan endofit yang bersifat antagonis ini memiliki beberapa keuntungan dibanding dengan penggunaan mikroba antagonis lain, diantaranya yaitu: mikroba endofit sudah terbentuk dalam tanaman yang akan tetap ada atau bertahan selama perkembangan tanaman dan terus memberikan perlindungan bagi tanaman (Hayward & Hartman 1994). Damayanti (2010) melakukan isolasi bakteri endofit dari tanaman tomat yang berasal dari tiga tempat yaitu Bogor, Cipanas, dan Lembang. Dari hasil isolasi diperoleh sebanyak 49 isolat, 17 diisolasi dari tanaman asal Bogor, 18 isolat dari Cipanas, dan 14 isolat dari Lembang. Masing-masing bakteri endofit memiliki ciri fisik yang berbeda satu sama lain. Berdasarkan uji reaksi hipersensitif (HR) diketahui bahwa terdapat sejumlah bakteri endofit yang menimbulkan reaksi negatif pada uji tersebut, seperti BC4, BC10, dan BL10 yang akan digunakan dalam penelitian ini. Isolat dengan kode BC4 dan BC10 mampu

19 8 memberikan penekanan terhadap perkembangan R. solanacearum sebesar 66,67% dan 60% lebih baik dibandingkan dengan BL10. Isolat Bakteri Endofit BC4 BC4 merupakan isolat untuk bakteri endofit yang diisolasi dari bagian batang bawah tanaman tomat asal Cipanas. Dalam pengujian penghambatan pertumbuhan R. solanacearum secara in vitro dengan metode dual culture diperoleh hasil bahwa BC4 membentuk zona bening (zona hambatan) dengan diameter rata-rata terpanjang sebesar 0,5 cm. Karakter biokimia dan fisiologi dari isolat ini yaitu: 1) karakter biokimia; memiliki reaksi positif terhadap uji katalase, strach, glukosa, manitol, laktosa, maltosa, dan salicin, 2) karakter fisiologi; gram negatif, bentuk batang, tidak berspora, non motil, dapat tumbuh dalam suhu anaerob dan anaerob fakultatif, katalase positif, oksidase positif. Karakter morfologi dari BC4 yaitu: permukaan cembung, tepian rata, bentuk bulat licin, ukuran sedang, dan ciri lain yaitu tidak lengket serta pertumbuhannya cepat pada medium King s B (Damayanti 2010). Berdasarkan sekuens 16S rrna (Nawangsih 7 Maret 2011, komunikasi pribadi) spesies dari isolat BC4 yaitu Staphylococcus epidermidis. Isolat Bakteri Endofit BC10 BC10 merupakan isolat untuk bakteri endofit yang diisolasi dari bagian batang bawah tanaman tomat asal Cipanas. Dalam pengujian penghambatan pertumbuhan R. solanacearum secara in vitro dengan metode dual culture diperoleh hasil bahwa BC10 membentuk zona bening (zona hambatan) dengan diameter sebesar 0,4 cm. Karakter morfologi dari BC10 yaitu: permukaan datar, tepian bergerigi, bentuk bulat, ukuran kecil, dan ciri lain yaitu tidak lengket serta pertumbuhan pada medium King s B sedang. Untuk isolat dengan kode BC10 ini belum dilakukan uji untuk mengetahui spesies dan belum dilakukan pengujian terhadap karakter fisiologi dan biokimianya (Damayanti 2010). Isolat Bakteri Endofit BL10 BL10 merupakan isolat untuk bakteri endofit yang diisolasi dari bagian batang bawah tanaman tomat asal Lembang. Karakter morfologi dari BL10 berdasarkan uji kemampuan penghambatan populasi R. solanacearum yaitu: permukaan cembung, tepian rata, bentuknya bulat licin, ukuran sedang, dan ciri

20 9 lain yaitu tidak lengket serta pertumbuhannya cepat pada media King s B. Karakter fisiologi dan biokimia dari isolat ini yaitu: 1) karakter biokimia; memiliki reaksi positif terhadap uji katalase, strach, glukosa, manitol, laktosa, maltosa, dan salicin, 2) karakter fisiologi; gram negatif, bentuk batang, tidak berspora, motilitas dubius, dapat tumbuh dalam suhu anaerob dan anaerob fakultatif, katalase positif, oksidase negatif (Damayanti 2010). Berdasarkan sekuens 16S rrna spesies dari isolat BL10 yaitu Bacillus amyloliquefaciens (Nawangsih 7 Maret 2011, komunikasi pribadi). Dari hasil pengujian tersebut diketahui bahwa isolat asal Cipanas memiliki zona hambatan yang lebih besar dibandingkan isolat asal Bogor dan Lembang. Oleh karena itu, isolat asal Cipanas lebih besar potensinya untuk dijadikan sebagai bakteri antagonis untuk melawan patogen dalam menekan penyakit layu bakteri pada tanaman tomat. Damayanti (2010) juga melakukan uji pengaruh aplikasi bakteri endofit terhadap tinggi tanaman tomat. Dari uji tersebut diketahui bahwa aplikasi bakteri endofit tidak menunjukkan perbedaan yang nyata terhadap tinggi tanaman. Rizobakteri Pemacu Pertumbuhan Tanaman (PGPR) Menurut Soesanto (2008) PGPR merupakan rizobakteri pendukung pertumbuhan tanaman, bakteri PGPR mampu mengkoloni perakaran tanaman. Oleh karena itu, keaktifan pengkolonian akar tersebut, akar dapat menyerap produk mikroba yang secara langsung mempengaruhi pertumbuhan dan fisiologi akar serta invasi patogen. Kecepatan pertumbuhan PGPR di sepanjang akar menentukan tingkat persaingan untuk mengkoloni akar. Kemampuan pengkolonian akar oleh PGPR dipengaruhi oleh faktor di dalam tanah dan persaingannya dengan mikroba lain. Menurut Kloepper (1991) pengaruh PGPR terhadap tanaman secara umum terdiri dari dua kategori yaitu: pemacu pertumbuhan tanaman, kelompok Pseudomonas sp. menghasilkan pengkelat Ca 2+ yang berguna bagi pertumbuhan tanaman (Soesanto 2008) dan sebagai pengendalian biologi (Kloepper 1991). Beberapa strain PGPR memacu pertumbuhan tanaman secara langsung dengan memproduksi metabolit yang merangsang pertumbuhan tanaman sendiri dari mikroflora tanah.

21 10 Menurut Soesanto (2008) kelebihan dari PGPR yaitu: a) mampu menghasilkan atau mengubah konsentrasi fitohormon asam indolasetat (IAA), b) antagonisme terhadap mikroba fitopatogen melalui produksi siderofor, glukanase, kitinase, selulase, antibiotika, dan sianida, c) pelarut fosfat mineral dan nutrisi lainnya, d) mengatur produksi etilen pada perakaran, e) menurunkan ketoksinan logam berat. Keaktifan PGPR dipengaruhi oleh beberapa faktor diantaranya yaitu: potensi kelembaban, tekanan oksigen, suhu, ph, kandungan lempung, daya larut ion, dan tahap organik tanah (Soesanto 2008). Menurut Glick & Pasternak (2003) keuntungan dari mekanisme PGPR dibedakan menjadi dua yaitu secara langsung dan tidak langsung. Keuntungan secara langsung pada tanaman mencakup mampu memfiksasi nitrogen dan memberikannya pada tanaman; meningkatkan ketersediaan atau menyimpan besi dan fosfor dari tanah, menyediakan mineral-mineral tersebut dalam bentuk yang dapat digunakan oleh tanaman; mensintesis enzim yang dapat mengatur tingkat hormon etilen tanaman; dan mensintesis fitohormon seperti auksin, sitokinin, atau giberelin yang memicu perkembangbiakan sel tanaman (Glick & Pasternak 2003). Keuntungan PGPR secara tidak langsung terjadi ketika strain mikroba bermanfaat mencegah pertumbuhan patogen dalam tanah yang dapat mengganggu pertumbuhan dan perkembangan normal tanaman. PGPR menghasilkan siderofor yang menghasilkan strain bermanfaat untuk mencegah perkembangan fitopatogen (Glick & Pasternak 2003). B. subtilis AB89 Nawangsih (2006) menggunakan isolat B. subtilis AB89 untuk menghambat perkembangan bakteri patogen R. solanacearum pada tomat. Aplikasi agens biokontrol di lapangan menunjukkan bahwa isolat AB89 mampu menekan perkembangan penyakit layu bakteri. Bacillus subtilis AB89 positif menghasilkan siderofor setelah diinkubasi selama 3 hari (Nawangsih 2006). Siderofor dari bahasa Yunani berarti pembawa ion besi, siderofor akan muncul pada saat kondisi lingkungan dengan ion Fe 3+ terbatas dan mengakibatkan besi tidak tersedia bagi patogen. Menurut Nawangsih (2006) B. subtilis AB89 memiliki kelebihan dibandingkan dengan agens biokontrol lain yang digunakan dalam pengujian

22 11 antara lain yaitu: menghasilkan zone hambatan dengan diameter paling besar, menghasilkan penekanan paling tinggi terhadap keparahan penyakit di lapangan meskipun kemampuan mengkolonisasi perakaran bibit lebih rendah, mampu menginduksi aktifitas peroxidase paling tinggi, serta menghasilkan siderofor dan protease. Enzim peroksidase merupakan salah satu enzim yang berperan dalam proses ketahanan tanaman terhadap patogen (Brimecombe et al dalam Nawangsih 2006). P. fluorescens RH4003 Isolat P. fluorescens RH4003 menurut Nawangsih (2006) tidak menghasilkan zona hambatan pada media NA tetapi pada media King s B dan CPMA Ca 2+ menunjukkan adanya zona hambatan. Luas zona hambatan dipengaruhi oleh jenis media. Media King s B merupakan media yang memiliki kandungan Fe yang sangat rendah, hal tersebut sangat cocok bagi pembentukan siderofor oleh P. fluorescens. Isolat RH4003 membentuk zona hambatan pada media yang mengandung glukosa tetapi tidak pada media yang mengandung mannitol maupun dextrose. Pengujian di rumah kaca menunjukkan bahwa isolat RH4003 mampu menekan perkembangan penyakit layu bakteri, indeks penekanan oleh isolat RH4003 yaitu sebesar 62%. Berdasarkan hasil sekuensing parsial 16S rdna, isolat RH4003 memiliki kesamaan 98% dengan P. fluorescens. Karakter fisiologi RH4003 yaitu gram negatif, tidak membentuk spora, menghasilkan senyawa floresen pada medium King s B agar, Levan negatif, reaksi oksidase positif, Arginine dihydrolase positif, tidak menghasilkan reaksi hipersensitif pada tembakau, tidak tumbuh pada 41 0 C, tidak mencairkan gelatin, dan pertumbuhannya positif pada L-arabinosa, D- galaktosa serta sorbitol. Produksi asam dari xylose positif, lactose negatif, glukosa positif, maltosa negatif, dan sukrosa positif lemah (Nawangsih 2006).

23 BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilakukan pada bulan Juli 2010 Maret Penelitian dilakukan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor dan di Rumah Kaca serta di Kebun Percobaan, University Farm, Institut Pertanian Bogor. Bahan dan Alat Bakteri endofit yang digunakan diperoleh dari penelitian sebelumnya yang diisolasi dari batang tanaman tomat sehat di wilayah Bogor, Cipanas, dan Lembang yaitu isolat dengan kode BL10, BC4, dan BC10 (Damayanti 2010). Bakteri PGPR yang digunakan yaitu Pseudomonas fluorescens RH4003 dan Bacillus subtilis AB89 yang merupakan koleksi Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, IPB (Nawangsih 2006). Bakteri Ralstonia solanacearum diisolasi dari tanaman tomat yang terserang layu bakteri, tanaman sampel berasal dari Lembang, Bandung. Dalam penelitian digunakan pula tanah dari lapangan yang telah mengandung bakteri R. solanacearum yang diambil di sekitar pertanaman tomat yang terserang layu bakteri dan tanah steril. Digunakan pula pupuk kandang untuk menambah unsur hara tanah. Bahan-bahan kimia yang digunakan terdiri dari media TZC, King s B Agar (KBA), media cair 523, nutrient agar dan nutrient broth. Benih tomat yang digunakan dalam pengujian adalah varietas Arthaloka. Pot tray dan polybag digunakan dalam pembibitan dan pengujian tanaman tomat di rumah kaca. Metode Penelitian Penyiapan tanaman uji Varietas tomat yang digunakan dalam pengujian yaitu varietas Arthaloka. Media tanam yang digunakan dalam pembibitan yaitu kompos dan sekam dengan perbandingan 1:1. Benih tomat disemai pada pot tray dengan dua benih tiap lubang. Setelah disemai, benih disiram secukupnya kemudian pot tray ditutup menggunakan koran selama dua hari untuk menjaga kelembaban. Bibit disiram

24 13 setiap dua hari sekali. Setelah berumur tiga minggu bibit tomat dipindah tanam pada polybag untuk aplikasi di rumah kaca dan dipindah tanam ke lahan untuk aplikasi di lapangan. Polybag yang digunakan berdiameter 20 cm dengan media tanam yang terdiri dari tanah, kompos, dan tanah yang telah terinfestasi bakteri R. solanacearum. Tanah dan kompos dicampur lalu disterilkan. Tanah yang terinfestasi bakteri patogen berasal dari lapangan di sekitar pertanaman tomat yang terserang layu bakteri dan ditambah dengan biakan bakteri patogen yang telah diisolasi dari tanaman tomat yang terserang layu bakteri. Suspensi bakteri patogen yang digunakan sebanyak 600 ml dalam media cair 523. Kemudian suspensi terebut dilarutkan dalam 2 liter air. Media tanam tersebut dimasukkan ke dalam polybag dengan susunan dari bawah yang terdiri dari tanah steril ± 6 cm, tanah terinfestasi bakteri patogen ± 9 cm, lalu ditutup lagi dengan tanah steril ± 10 cm. Isolasi bakteri R. solanacearum Isolasi bakteri patogen dilakukan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, IPB. Tanaman sampel diperoleh dari Lembang, Bandung. Tanaman dicuci lalu batangnya dipotong melintang. Potongan batang tersebut dicelupkan ke dalam air steril dalam tabung reaksi. Massa bakteri (oose) yang mirip dengan benang-benang putih halus akan keluar dari potongan batang selama beberapa menit. Batang dibiarkan tercelup beberapa saat sampai air steril menjadi keruh. Massa bakteri (oose) patogen dari hasil isolasi diambil sebanyak 100 µl dengan pipet volumetrik dan disebar pada media TZC, kemudian diinkubasikan pada suhu ruang selama jam. Setelah jam akan terlihat koloni bakteri patogen seperti pada Gambar 1. Koloni yang digunakan untuk infestasi tanah adalah yang virulen ditandai dengan bentuk koloni berlendir (fluidal) dan dibagian tengah berwarna merah muda.

25 14 Gambar 1 Hasil isolasi patogen; R. solanacearum pada media TZC Peremajaan bakteri endofit, PGPR, dan bakteri patogen (R. solanacearum) Bakteri endofit yang digunakan diperoleh dari penelitian sebelumnya yang diisolasi dari batang tanaman tomat sehat yang dipilih diantara tanaman tomat yang terserang parah oleh layu bakteri (Damayanti 2010). Sumber bakteri endofit tersebut diisolasi dari pertanaman tomat di daerah Bogor, Lembang, dan Cipanas. Kode isolat yang digunakan dalam penelitian yaitu BL10, BC4, dan BC10. Bakteri endofit hasil isolasi pada penelian sebelumnya dan bakteri PGPR yang ada di laboratorium disimpan dalam media cair yang mengandung gliserol 20% pada suhu C. Bakteri endofit dan PGPR diremajakan terlebih dulu pada media nutrient agar dalam cawan petri (Gambar 2). Sebelum digunakan untuk pengujian, bakteri patogen diremajakan pada media King s B Agar (KBA) dan diinkubasikan selama jam pada suhu kamar (Gambar 2). Bakteri patogen diremajakan pada media King s B untuk dilihat koloni tunggalnya.

26 15 a b c d e f Gambar 2 Hasil peremajaan bakteri endofit, PGPR, dan R. solanacearum; bakteri endofit Bacillus amyloliquefaciens (BL10) a), bakteri endofit Staphylococcus epidermidis (BC4) b), bakteri endofit isolat BC10 c), bakteri PGPR B. subtilis AB89 (B12) d), bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) e), R. solanacearum pada media King s B f) Penyiapan suspensi bakteri patogen, endofit, dan PGPR Permukaan media King s B Agar yang telah ditumbuhi bakteri patogen disiram dengan 6 ml air steril dan digosok menggunakan jarum ose hingga bakteri terlepas dari media dan membentuk suspensi. Suspensi tersebut diambil sebanyak 6 ml menggunakan pipet volumetrik lalu diinokulasikan ke dalam media cair 523 yang ditambah dengan supernatan daun tomat sebanyak 100 µl. Kemudian

27 16 suspensi tersebut dikocok menggunakan shaker selama jam. Supernatan dibuat dengan cara mencampur 0,5 gram daun tomat dengan air steril 10 ml lalu ditumbuk dan diambil ekstraknya sebanyak 1 ml kemudian dimasukkan ke dalam Eppendorf. Eppendorf yang berisi ekstrak daun tomat disentrifugasi dengan kecepatan rpm pada suhu 25 0 C selama lima menit. Suspensi bakteri patogen tersebut disiapkan sebanyak 600 ml. Bakteri endofit dan PGPR yang digunakan diambil dari stok yang disimpan pada suhu C. Bakteri tersebut didiamkan beberapa saat sampai mencair. Setelah mencair, suspensi bakteri diambil sebanyak 100 µl menggunakan pipet volumetrik dan masing-masing bakteri disebar pada permukaan media nutrient agar dalam cawan petri. Cawan yang telah diinokulasi bakteri endofit dan PGPR kemudian diinkubasikan pada suhu ruang selama jam. Pada permukaan media yang telah ditumbuhi bakteri endofit dan PGPR selanjutnya disiram dengan 5 ml air steril dan digosok menggunakan jarum ose hingga bakteri terlepas dari media agar dan membentuk suspensi. Selanjutnya suspensi tersebut diambil sebanyak 1 ml menggunakan pipet volumetrik dan diinokulasikan ke dalam media cair nutrient broth 250 ml, lalu dikocok menggunakan shaker selama jam. Kerapatan bakteri yang digunakan yaitu cfu/ml. Pengujian pengaruh aplikasi bakteri endofit dan PGPR terhadap penyakit layu bakteri pada tomat Percobaan di Rumah Kaca Percobaan di rumah kaca dilakukan pada dua musim yaitu musim kemarau (bulan September-November) dan musim penghujan (bulan Desember-Maret). Bibit tomat yang telah berumur 3 minggu disiram akarnya dengan agens biokontrol sesuai perlakuan. Untuk perlakuan tunggal setiap bibit disiram sebanyak 50 ml agens biokontrol dan untuk perlakuan kombinasi disiram sebanyak 25 ml dari masing-masing agens biokontrol yang dikombinasikan. Sebelumnya, agens biokontrol yang akan digunakan dilarutkan terlebih dulu. Suspensi agens biokontrol dalam 250 ml media cair nutrient broth diambil sebanyak 200 ml lalu dilarutkan dalam 1800 ml air. Sehingga diperkirakan

28 17 populasi bakteri adalah cfu/ml. Untuk pelakuan kontrol, bibit tomat disiram dengan air sebanyak 50 ml tanpa diberi perlakuan agens biokontrol. Perlakuan yang diberikan terdiri dari 12 perlakuan termasuk kontrol dan tiap perlakuan diulang sebanyak 3 kali. Perlakuan tersebut yaitu: K = perlakuan kontrol diberi patogen tetapi tanpa agens biokontrol P1 = P. fluorescens RH4003 B12 = B. subtilis AB89 BC4 = bakteri endofit isolat BC4 BC10 = bakteri endofit isolat BC10 BL10 = bakteri endofit isolat BL10 P1 + BC4 = P. fluorescens RH bakteri endofit isolat BC4 P1 + BC10 = P. fluorescens RH bakteri endofit isolat BC10 P1 + BL10 = P. fluorescens RH bakteri endofit isolat BL10 B12 + BC4 = B. subtilis AB89 + bakteri endofit isolat BC4 B12 + BC10 = B. subtilis AB89 + bakteri endofit isolat BC10 B12 + BL10 = B. subtilis AB89 + bakteri endofit isolat BL10 Bibit tomat yang telah diberi perlakuan tersebut didiamkan selama satu hari, selanjutnya bibit tomat dipindah tanam pada polybag. Media tanam terdiri dari tanah yang telah mengandung R. solanacearum dari lapangan dan ditambah dengan tanah yang telah terinfestasi patogen R. solanacearum (patogen tersebut dibiakkan dalam media cair 523) serta tanaman tomat yang terserang layu bakteri. Tanaman tomat yang terserang layu bakteri tersebut dipotong-potong dan ditambah air. Potongan tanaman beserta airnya kemudian dicampur dengan tanah yang mengandung R. solanaceaum. Sebanyak 600 ml suspensi biakan bakteri patogen dilarutkan dalam 2 liter air lalu dicampur dengan tanah dari lapangan. Lokasi untuk tiap perlakuan dilakukan secara acak. Setiap unit perlakuan di rumah kaca terdiri dari lima tanaman. Setiap ulangan terdiri dari 12 plot, sehingga dalam satu lahan terdiri 36 plot/ petak. Penyiraman dengan air dalam rangka pemeliharaan dilakukan setiap dua hari sekali. Namun jika tanah masih cukup lembab, maka tanaman tidak disiram. Tanaman tomat dipasang ajir setelah satu minggu dari waktu pindah tanam.

29 18 Peubah yang diamati yaitu kejadian penyakit, masa inkubasi, bobot kering, dan tinggi tanaman. Pengamatan dilakukan selama 9 minggu dan data diambil setiap dua hari sekali. Kejadian penyakit (Kp) dihitung menggunakan rumus: Selain kejadian penyakit dihitung pula nilai AUHPGC (Area Under Height of Plant Growth Curve) dengan rumus yang dinyatakan oleh Van der Plank (1963 dalam Cooke 1998) sebagai berikut: y = laju pertambahan tinggi tanaman t = hari Serta dihitung pula nilai AUDPC (Area Under Disease Progress Curve) dengan rumus yang dinyatakan oleh Van der Plank (1963 dalam Cooke 1998) sebagai berikut: y = persentase kejadian penyakit t = hari Percobaan di Lapangan Percobaan di lapangan dilakukan pada bulan Juli-Oktober Bibit tomat yang telah berumur 3 minggu disiram dengan agens biokontrol. Perlakuan yang diberikan sama dengan perlakuan di rumah kaca. Namun jumlah suspensi agens biokontrol yang digunakan yaitu sebanyak 100 ml untuk aplikasi tunggal dan 50 ml dari masing-masing agens biokontrol untuk aplikasi kombinasi. Kontrol disiram dengan 100 ml air. Setelah disiram, bibit akan dipindah tanam di lapangan pada plot percobaan di luar rumah kaca yaitu di Kebun Percobaan, University Farm, IPB. Media tanam di lapangan berbeda dengan media tanam untuk percobaan di rumah kaca. Tanah di lapangan hanya ditambah dengan kompos karena tanah sudah

30 19 mengandung patogen R. solanacearum. Kondisi lahan di lapangan berlereng antara blok satu dengan blok yang lain. Lahan yang digunakan dipersiapkan dengan membuat bedengan dan dilakukan pemupukan pada setiap lubang tanam. Dalam satu blok terdiri dari 12 bedeng. Dalam satu bedeng/ setiap unit perlakuan ditanam dengan 20 bibit tomat, setiap lubang tanam terdiri dari satu bibit tomat. Jarak tanam yang digunakan yaitu 60 x 75 cm. Setiap ulangan terdiri dari 12 plot, sehingga dalam satu lahan terdiri 36 plot/ petak. Perawatan yang dilakukan di lapangan hanya mencakup penyiangan. Pengamatan di lapangan dilakukan selama 9 minggu dan peubah yang diamati yaitu kejadian penyakit layu bakteri. Pengamatan terhadap kejadian penyakit dilakukan setiap satu minggu sekali. Kejadian penyakit dihitung dengan menggunakan rumus sama seperti di rumah kaca. Serta dilakukan perhitungan terhadap nilai AUDPC menggunakan rumus sama seperti di rumah kaca. Dilakukan pula perhitungan terhadap index penekanan penyakit (keefektifan pengendalian) dengan rumus: DIc = AUDPC pada kontrol DIb = AUDPC pada perlakuan agens biokontrol Untuk mengetahui tingkat sinergisme antara dua agens biokontrol diprediksi menggunakan rumus Abbott s (Guetsky et al dalam Nawangsih 2006), yaitu: E (exp) = a + b a x b/ 100 dan SF (Synergy Factor) = E (obs) /E (exp) a b E (exp) E (obs) = keefektifan pengendalian oleh agens biokontrol I = keefektifan pengendalian oleh agens biokontrol II = keefektifan pengendalian dugaan oleh campuran agens biokontrol = keefektifan pengendalian oleh campuran berdasarkan hasil pengamatan

31 20 Nilai SF = 1 ; interaksi antar agens biokontrol bersifat additif SF < 1 ; interaksi antar agens biokontrol bersifat antagonis SF > 1 ; interaksi antar agens biokontrol bersifat sinergis Analisis Data Rancangan percobaan yang digunakan yaitu Rancangan Acak Kelompok (RAK) dengan kelompok sebagai ulangan. Data yang diperoleh dianalisis menggunakan analisis ragam (anova) dengan menggunakan program Statistical Analysis System (SAS) versi 9.1 dan dilanjutkan dengan uji Duncan dan Dunnett masing-masing pada taraf 5% untuk pengujian di rumah kaca. Pengujian di lapangan menggunakan uji lanjut Duncan dan Dunnett masing-masing pada taraf 10%.

32 HASIL DAN PEMBAHASAN Pengaruh Aplikasi Bakteri Endofit dan PGPR terhadap Pertumbuhan Tanaman dan Kejadian Penyakit Layu Bakteri di Rumah Kaca Laju pertambahan tinggi tanaman Pengukuran laju pertambahan tinggi tanaman di rumah kaca dilakukan pada dua musim tanam yaitu musim kemarau dan penghujan. Pengukuran dilakukan setiap satu minggu sekali selama 5 minggu. Pengukuran terhadap laju pertambahan tinggi tanaman dilakukan untuk mengetahui apakah agens biokontrol yang diberikan berpengaruh terhadap pemacuan pertambahan tinggi tanaman atau tidak. Berdasarkan hasil analisis ragam, perlakuan yang diberikan tidak berpengaruh nyata terhadap pertambahan tinggi tanaman baik pada musim kemarau maupun penghujan (Tabel 1 & 2). Meskipun pada beberapa minggu terdapat huruf yang berbeda antar perlakuan, namun tidak dikatakan berbeda nyata karena berdasarkan hasil analisis ragam nilai dari Pr>F lebih dari taraf nyata yang digunakan yaitu 5%. Hal tersebut disebabkan adanya keragaman data yang tinggi. Pengaruh perlakuan tidak berbeda nyata, namun agens biokontrol yang diaplikasikan tidak memberikan efek negatif terhadap tanaman. Hal tersebut dikarenakan agens biokontrol tidak menyebabkan pertumbuhan tanaman menjadi kerdil meskipun terjadi penekanan laju pertambahan tinggi tanaman pada beberapa perlakuan. Berdasarkan uji lanjut dengan Dunnett baik pada musim kemarau maupun penghujan tidak terdapat perlakuan yang berbeda nyata dengan kontrol. Pada musim kemarau, laju pertambahan tinggi tanaman tomat relatif lebih rendah (Tabel 1) dibandingkan dengan laju pertambahan tinggi pada musim penghujan (Tabel 2). Hal ini kemungkinan terjadi karena di dalam rumah kaca suhu relatif lebih tinggi sehingga tanah menjadi cepat kering dan kebutuhan air meningkat. Pada musim penghujan kondisi lingkungan lebih mendukung bagi pertumbuhan tanaman. Suhu di dalam rumah kaca relatif lebih rendah sehingga tanaman tumbuh lebih nyaman.

33 22 Berdasarkan nilai AUHPGC pada Tabel 1 dan Tabel 2, yang menunjukkan laju pertambahan tinggi tanaman total selama pengamatan, perlakuan yang cenderung mampu memacu pertambahan tinggi tanaman pada musim kemarau adalah perlakuan kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit isolat BC10 (P1BC10). Nilai AUHPGC pada perlakuan P1BC10 paling besar yaitu sebesar 26 cm hari. Pada musim penghujan nilai AUHPGC yang terbesar terjadi pada perlakuan kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit isolat BC10 (B12BC10) sebesar 153 cm hari. Nilai AUHPGC paling rendah pada musim kemarau terlihat pada kontrol yaitu sebesar 7 cm hari sedangkan pada musim penghujan nilai AUHPGC paling rendah terjadi pada perlakuan B. subtilis AB89 (B12) sebesar 92 cm hari. Berdasarkan nilai AUHPGC dari dua musim tanam diperoleh hasil yang tidak konsisten. Pada musim kemarau perlakuan yang cenderung lebih baik memacu tinggi tanaman yaitu kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit isolat BC10 (P1BC10) sedangkan pada musim penghujan yaitu kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit isolat BC10 (B12BC10). Untuk meningkatkan potensi dari agens biokontrol ini salah satunya yaitu dengan menambah frekuensi aplikasi. Dalam penelitian ini terlihat jelas bahwa pada musim penghujan (Tabel 2) aplikasi bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) dengan bakteri endofit cenderung menurunkan laju pertambahan tinggi tanaman. Karena aplikasi tunggal P. fluorescens RH4003 (P1) mampu memacu pertambahan tinggi tanaman lebih baik dibandingkan aplikasi P. fluorescens RH4003 (P1) secara kombinasi. Namun, bakteri PGPR B. subtilis AB89 (B12) justru menunjukkan sinergis jika dikombinasikan dengan bakteri endofit. Perlakuan kombinasi antara B. subtilis AB89 (B12) dan bakteri endofit mampu memacu pertambahan tinggi lebih besar dibandingkan aplikasi B. subtilis AB89 (B12) secara tunggal.

34 Tabel 1 Laju pertambahan tinggi tanaman tomat pada berbagai perlakuan bakteri PGPR dan endofit secara tunggal dan kombinasi serta nilai AUHPGC di rumah kaca pada musim kemarau Laju pertambahan tinggi tanaman (cm) Perlakuan AUHPGC *) Minggu I Minggu II Minggu III Minggu IV Minggu V ( cm hari ) P1 **) 2.1 ± 0.8ab ***) 5.4 ± 1.6b 7.0 ± 1.9ab 6.5 ± 1.6b 2.8 ± 0.6ab 10 B ± 0.2ab 6.5 ± 1.0ab 6.4 ± 2.9ab 11.5 ± 7.6ab 4 ± 2.0ab 14 BC4 3.0 ± 0.9ab 6.4 ± 0.4ab 4.4 ± 2.8b 9.9 ± 1.3ab 4.2 ± 0.2ab 15 BC ± 1.4ab 6.1 ± 3.1ab 8.9 ± 1.1a 9.1 ± 4.3ab 3.2 ± 0.9ab 11 BL ± 0.4ab 5.5 ± 1.1b 6 ± 3.2ab 11 ± 1.2ab 4.4 ± 3.1ab 15 P1BC4 1.6 ± 0.5b 6.9 ± 0.6ab 7.1 ± 1.0ab 8.9 ± 2.3ab 3.2 ± 1.0ab 11 P1BC ± 1.6a 9.0 ± 1.6a 6.4 ± 1.7ab 8.7 ± 3.9ab 7.4 ± 6.1a 26 P1BL ± 1.5ab 6.4 ± 2.0ab 6.9 ± 1.5ab 9.6 ± 0.8ab 2.3 ± 0.2b 8 B12BC4 2.2 ± 1.1ab 5.8 ± 1.2ab 6.2 ± 2.8ab 8.4 ± 2.9ab 3.8 ± 3.1ab 13 B12BC ± 2.0ab 6 ± 0.7ab 5.8 ± 1.8ab 12 ± 0.7a 4.2 ± 1.9ab 15 B12BL ± 0.4ab 8.1 ± 2.0ab 6.7 ± 1.2ab 9.4 ± 1.5ab 3 ± 1.0ab 11 K 2.0 ± 1.1ab 6.5 ± 3.2ab 4.6 ± 1.0b 9.3 ± 3.1ab 2.1 ± 0.9b 7 *) AUHPGC= Area Under Height of Plant Growth Curve. **) Kode isolat bakteri: P1= Pseudomonas fluorescens RH4003, B12= Bacillus subtilis AB89, BC4= Staphylococcus epidermidis, BC10= bakteri endofit isolat BC10, BL10= Bacillus amyloliquefaciens, K= kontrol. **) Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji Duncan pada taraf 5%. 23

35 24 Tabel 2 Laju pertambahan tinggi tanaman tomat pada berbagai perlakuan bakteri PGPR dan endofit secara tunggal dan kombinasi serta nilai AUHPGC di rumah kaca pada musim penghujan Perlakuan Laju pertambahan tinggi tanaman (cm) AUHPGC *) Minggu I Minggu II Minggu III Minggu IV Minggu V (cm hari) P1 **) 19.4 ± 1.3a ***) 22.7 ± 8.8a 23.7 ± 6.3a 15.4 ± 2.0a 35 ± 4.6abc 123 *) B ± 1.2a 20.6 ± 4.7a 20.6 ± 3a 11.6 ± 3.0a 26.4 ± 2.0c 92 BC ± 2.5a 19.1 ± 6.4a 19.1 ± 7.7a 14.3 ± 4.4a 30.2 ± 5.7bc 106 BC ± 1.0a 20.5 ± 2.4a 19.5 ± 3.8a 15.6 ± 2.2a 39.2 ± 7.9ab 137 BL ± 3.4a 20.2 ± 5.0a 19.9 ± 2.6a 13.1 ± 2.4a 30.9 ± 7.6bc 108 P1BC ± 3.1a 21.4 ± 9.8a 21 ± 10.2a 12.8 ± 3.2a 30.1 ± 6.7bc 105 P1BC ± 3.0a 17.8 ± 3.6a 19.3 ± 4.3a 12.0 ± 4.8a 27.3 ± 12.1c 96 P1BL10 20 ± 1.6a 17.6 ± 0.8a 17.2 ± 4a 13.7 ± 2.6a 32 ± 5.2bc 112 B12BC ± 0.7a 23.1 ± 7.2a 22 ± 3.8a 12.8 ± 0.5a 30.3 ± 8.7bc 106 B12BC ± 1.1a 21.9 ± 2.5a 21.4 ± 0.8a 15.3 ± 2.0a 43.7 ± 8.1a 153 B12BL10 20 ± 0.2a 21.3 ± 2.2a 22.1 ± 1.1a 15.4 ± 1.3a 36.7 ± 6.1abc 128 K 18.7 ± 1.4a 22 ± 3.3a 21.2 ± 4.4a 14.8 ± 1.1a 38.8 ± 7.2ab 136 AUHPGC = Area Under Height of Plant Growth Curve. *) Kode isolat bakteri: P1= Pseudomonas fluorescens RH4003, B12= Bacillus subtilis AB89, BC4= Staphylococcus epidermidis, BC10= bakteri endofit isolat BC10, BL10= Bacillus amyloliquefaciens, K= kontrol. **) Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji Duncan pada taraf 5%. 24

36 25 Kejadian Penyakit Layu Bakteri Pengamatan terhadap kejadian penyakit layu bakteri di rumah kaca dilakukan selama 9 minggu. Data yang disajikan merupakan data tiap minggu meskipun sebenarnya pengamatan terhadap kejadian penyakit layu bakteri dilakukan setiap dua hari sekali. Hal itu dikarenakan tidak terjadi peningkatan gejala layu bakteri yang cukup mencolok. Pada Tabel 3 dapat dilihat bahwa ratarata tingkat kejadian penyakit layu bakteri menunjukkan angka yang rendah. Hal tersebut berarti tanaman yang terserang penyakit layu bakteri terjadi dalam jumlah yang cukup rendah. Rendahnya tingkat kejadian penyakit layu bakteri di rumah kaca dapat terjadi karena beberapa kemungkinan seperti: populasi R. solanacearum yang rendah sehingga tidak menunjukkan gejala layu bakteri, R. solanacearum kurang aktif masuk ke dalam jaringan tanaman, dan keadaan lingkungan yang kurang mendukung bagi perkembangan R. solanacearum misalnya intensitas hujan yang cukup tinggi ketika dilakukan penelitian karena R. solanacearum tidak menyukai kondisi yang terlalu basah atau lembab dan jarak tanam antar tanaman yang cukup rapat sehingga mengakibatkan terjadinya kelembaban dalam rumah kaca. Bakteri R. solanacearum merupakan patogen yang unik karena patogen ini kisaran inangnya sangat luas, dapat mengakibatkan kegagalan panen hingga 50%, dan R. solanacearum merupakan bakteri patogen yang cepat kehilangan virulensinya sehingga cukup sulit untuk membiakkan R. solanacearum. Berdasarkan hasil analisis ragam dengan uji lanjut Duncan (Tabel 3), perlakuan yang diberikan tidak berpengaruh nyata dalam menghambat perkembangan penyakit layu bakteri. Berdasarkan uji lanjut dengan Dunnett tidak terdapat pula pengaruh dari masing-masing perlakuan yang berbeda nyata dengan kontrol. Meskipun tidak berbeda nyata, agens biokontrol yang digunakan dalam penelitian ini yaitu bakteri endofit dan PGPR juga tidak memberikan efek negatif bagi tanaman. Perkembangan dan pertumbuhan tanaman tidak terhambat akibat adanya agens biokontrol.

37 Tabel 3 Kejadian penyakit layu bakteri pada berbagai perlakuan bakteri PGPR dan endofit secara tunggal dan kombinasi serta nilai AUDPC di rumah kaca pada musim penghujan Perlakuan Kejadian penyakit AUDPC *) Minggu I Minggu II Minggu III Minggu IV Minggu V Minggu VI Minggu VII Minggu VIII Minggu IX (% hari) P1 **) 0a ***) 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 13.3 ± 23.1a 13.3 ± 23.1a 13.3 ± 23.1a 13.3 ± 23.1a 13.3 ± 23.1a 46.6 B ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 46.6 BC4 0a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 23.5 BC ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 20.0 ± 20a 70.0 BL10 0a 0a 0a 0a 0a 0a 0a 0a 6.7 ± 11.5a 23.5 P1BC4 0a 0a 0a 0a 0a 0a 0a 0a 0a 0.0 P1BC10 0a 0a 0a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 46.6 P1BL10 0a 13.3 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 20.0 ± 0a 20.0 ± 0a 20.0 ± 0a 20.0 ± 0a 20.0 ± 0a 70.0 B12BC4 0a 0a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 20.0 ± 0a 70.0 B12BC10 0a 0a 0a 0a 0a 0a 0a 0a 6.7 ± 11.5a 23.5 B12BL10 0a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 13.3 ± 11.5a 20.0 ± 20a 70.0 K 0a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 6.7 ± 11.5a 20.0 ± 0a 70.0 *) AUDPC = Area Under Disease Progress Curve. **) Kode isolat bakteri: P1= Pseudomonas fluorescens RH4003, B12= Bacillus subtilis AB89, BC4= Staphylococcus epidermidis, BC10= bakteri endofit isolat BC10, BL10= Bacillus amyloliquefaciens, K= kontrol. ***) Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji Duncan pada taraf 5%. 26

38 27 Pada minggu pertama pengamatan, tanaman belum banyak yang menunjukkan gejala layu bakteri dan baru terlihat pada dua perlakuan yaitu B. subtilis AB89 (B12) dan bakteri endofit isolat BC10 dengan masing-masing ratarata kejadian penyakitnya 6,7%. Rata-rata kejadian penyakit dari minggu ke minggu tidak menunjukkan perbedaan yang terlalu mencolok, rata-rata kejadian penyakit yang terjadi di rumah kaca hanya berkisar pada 6,7%; 13,3%; dan 20%. Total rata-rata tingkat kejadian penyakit selama pengamatan berdasarkan nilai AUDPC yang terendah yaitu sebesar 0 % hari pada perlakuan kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit Staphylococcus epidermidis (P1BC4) dan AUDPC tertinggi sebesar 70 % hari pada beberapa perlakuan bakteri endofit isolat BC10, kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit Bacillus amyloliquefaciens (P1BL10), kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit S. epidermidis (B12BC4), kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (B12BL10), dan kontrol. Berdasarkan hasil analisis ragam dan nilai AUDPC, tanaman dengan perlakuan kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit S. epidermidis (P1BC4) belum menunjukkan gejala layu bakteri sampai minggu kesembilan setelah aplikasi. Namun, dalam penelitian ini P1BC4 tidak dapat dikatakan sebagai agens biokontrol yang berpotensi atau mampu menghambat perkembangan layu bakteri meskipun kejadian penyakitnya 0%. Karena dalam penelitian ini secara keseluruhan tingkat kejadian penyakitnya cukup rendah. R. solanacearum kurang berkembang dengan baik sehingga tanaman yang menunjukkan gejala layu bakteri hanya sedikit. Dari penelitian ini dapat diketahui bahwa bakteri patogen R. solanacearum kurang menunjukkan pertumbuhan yang baik sehingga tanaman yang terserang layu bakteri cukup sedikit jumlahnya, hal ini dapat terjadi karena beberapa kemungkinan seperti yang telah disebutkan sebelumnya. Menurut Agrios (1988) perkembangan R. solanaceraum dapat dipengaruhi oleh keadaan inang atau keadaan sekelilingnya sehingga gejala layu bakteri akan muncul dalam waktu yang cukup lama. Nilai AUDPC bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 dan B. subtilis AB89 lebih rendah dibandingkan nilai AUDPC pada kontrol. Nilai AUDPC pada P.

39 28 fluorescens RH4003 dan B. subtilis AB89 masing-masing yaitu sebesar 46,6 % hari sedangkan pada kontrol sebesar 70 % hari. Hal tersebut menunjukkan bahwa bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 dan B. subtilis AB89 memiliki potensi dalam menekan perkembangan penyakit layu bakteri. Menurut Nawangsih (2006) kedua isolat bakteri PGPR yang digunakan yaitu P. fluorescens RH4003 dan B. subtilis AB89 mampu menekan penyakit layu bakteri pada tomat. Beberapa penelitian lain juga mengemukakan bahwa P. fluorescens dan B. subtilis memiliki kemampuan dalam mengendalikan penyakit, seperti yang dikemukakan oleh Ratih & Eviyati (2007) bahwa kedua bakteri tersebut mampu menghambat perkembangan bakteri Xanthomonas campestris pv. glycines penyebab pustul pada kedelai. Khalimi & Wirya (2009) menyatakan bahwa Pseudomonas aeruginosa sebagai bakteri PGPR mampu menghambat pertumbuhan enam cendawan patogen, dan penelitian yang dilakukan oleh Chrisnawati et al. (2009) menunjukkan bahwa gabungan antara bakteri PGPR Bacillus spp. Bc 26 dan Pseudomonas fluorescens Pf 101 mampu mengendalikan layu bakteri pada nilam. Pengendalian penyakit di lapangan menggunakan mikroorganisme sering mengalami kendala antara lain disebabkan oleh kolonisasi dari bakteri PGPR pada akar cukup rendah dan karena adanya persaingan tempat maupun nutrisi dengan bakteri patogen. Menurut Soesanto (2008) B. subtilis mengalami kesulitan utama yaitu pengendalian sering sangat beragam dengan hasil sangat berbeda di lokasi yang berbeda dan pengaruh metabolit sekunder yang dihasilkan P. fluorescens pada umumnya menunjukkan keberhasilan di laboratorium, sedangkan di lapangan belum tentu berhasil. Salah satu cara untuk meningkatkan potensi PGPR dalam menekan perkembangan penyakit yaitu dengan menambah frekuensi aplikasi agens biokontrol pada tanaman sehingga memungkinkan semakin tingginya kolonisasi PGPR pada akar. Menurut Soesanto (2008) pengkolonian akar oleh PGPR lebih awal akan mencegah pengkolonian akar oleh mikroba patogen. PGPR harus menempati niche yang sama dengan patogen untuk meningkatkan kemampuan PGPR dalam mengendalikan penyakit (Kloepper 1991). Penelitian ini merupakan serangkaian penelitian yang telah dilakukan sebelumnya oleh Damayanti (2010). Pada penelitian sebelumnya dilakukan

40 29 pengujian terhadap kemampuan bakteri endofit dalam menekan perkembangan penyakit layu bakteri pada tomat di rumah kaca. Bakteri endofit yang digunakan dalam pengujian diaplikasikan secara tunggal (tidak dikombinasikan dengan bakteri PGPR). Dari hasil penelitian tersebut diketahui bahwa bakteri endofit S. epidermidis (BC4) mampu memberikan penekanan terbaik terhadap perkembangan penyakit layu bakteri pada tomat yaitu sebesar 66,67%. Dan dalam penelitian ini bakteri endofit S. epidermidis (BC4) menunjukkan nilai AUDPC yang lebih rendah dari kontrol meskipun sama besar dengan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) yaitu sebesar 23,5 % hari. Masa inkubasi penyakit layu bakteri Pada Tabel 4 terlihat bahwa R. solanacearum pada masing-masing perlakuan memiliki masa inkubasi yang berbeda-beda. Gejala layu bakteri ratarata mulai muncul pada 17 hari setelah pindah tanam (hst). Penghitungan masa inkubasi ini dimulai dari pindah tanam bibit ke polybag. Masa inkubasi R. solanacearum yang paling cepat adalah 15 (hst). Pada tabel tersebut terlihat bahwa tanaman yang diberi bakteri PGPR B. subtilis AB89 (B12) dan bakteri endofit isolat BC10 menunjukkan gejala layu bakteri lebih cepat dibandingkan perlakuan lain yaitu pada 15 hst. Masa inkubasi penyakit layu bakteri pada tanaman yang diberi kedua agens biokontrol tersebut lebih cepat dari kontrol yang baru menunjukkan gejala layu bakteri pada 17 hst. Tetapi kedua isolat bakteri tersebut (B12 dan BC10) mampu menekan perkembangan R. solanacearum lebih lama jika diaplikasikan secara kombinasi yaitu antara B. subtilis AB89 (B12) dengan bakteri endofit S. epidermidis (BC4), bakteri endofit isolat BC10, dan dengan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10). Bakteri endofit isolat BC10 mampu menekan perkembangan R. solanacearum lebih lama jika diaplikasikan secara kombinasi yaitu antara bakteri endofit isolat BC10 dengan bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) dan B. subtilis AB89 (B12).

41 30 Tabel 4 Masa inkubasi penyakit layu bakteri pada berbagai perlakuan bakteri PGPR dan endofit secara tunggal dan kombinasi di rumah kaca pada musim penghujan Masa inkubasi Masa inkubasi Perlakuan (hari setelah tanam) Perlakuan (hari setelah tanam) P1 *) 17 P1BC10 29 *) B12 15 P1BL10 17 BC4 17 B12BC4 25 BC10 15 B12BC10 57 BL10 61 B12BL10 17 P1BC4 > 63 K 17 Kode isolat bakteri: P1= Pseudomonas fluorescens RH4003, B12= Bacillus subtilis AB89, BC4= Staphylococcus epidermidis, BC10= bakteri endofit isolat BC10, BL10= Bacillus amyloliquefaciens, K= kontrol. Bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) menunjukkan masa inkubasi yang lebih lama jika diaplikasikan secara tunggal dibandingkan secara kombinasi dengan bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) dan B. subtilis AB89 (B12). Dalam percobaan ini terdapat tiga perlakuan yang menunjukkan masa inkubasi yang lebih lama. Ketiga perlakuan tersebut yaitu kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit S. epidermidis (P1BC4), bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10), dan kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit isolat BC10 (B12BC10) dengan masing-masing masa inkubasi > 63, 61, dan 57 hst. Tanaman dengan perlakuan kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit S. epidermidis (P1BC4) belum menunjukkan gejala penyakit layu bakteri sampai minggu kesembilan. Bobot kering tanaman Pada Tabel 5 dapat dilihat bahwa pemberian bakteri PGPR maupun endofit tidak berpengaruh nyata terhadap bobot kering tanaman dibandingkan dengan kontrol. Bobot kering tanaman yang lebih besar dibanding perlakuan lain yaitu pada tanaman yang diberi P. fluorescens RH4003 (P1) sebesar 15,9 gram/tanaman. Sedangkan bobot kering tanaman yang paling rendah yaitu pada tanaman dengan perlakuan kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan

42 31 bakteri endofit isolat BC10 (P1BC10) sebesar 9,4 gram/tanaman. Dalam penelitian ini kombinasi antara P. fluorescens dan B. subtilis dengan bakteri endofit tidak menunjukkan bobot kering yang lebih besar bila dibandingkan dengan kontrol bahkan perlakuan dengan B12 (B. subtilis AB89) baik yang diaplikasikan secara tunggal maupun kombinasi tidak lebih besar dari kontrol. Tabel 5 Rata-rata bobot kering tanaman tomat pada berbagai perlakuan bakteri PGPR dan endofit secara tunggal dan kombinasi di rumah kaca pada musim penghujan *) Bobot kering Bobot kering Perlakuan (gram/tanaman) Perlakuan (gram/tanaman) P1 *) 15.9 ± 7.7a **) P1BC ± 3.8a B ± 3.1a P1BL ± 2.6a BC ± 7a B12BC ± 3a BC ± 0.8a B12BC ± 1.2a BL ± 2.1a B12BL ± 2.4a P1BC ± 9.9a K 13.7 ± 2.8a Kode isolat bakteri: P1= Pseudomonas fluorescens RH4003, B12= Bacillus subtilis AB89, BC4= Staphylococcus epidermidis, BC10= bakteri endofit isolat BC10, BL10= Bacillus amyloliquefaciens, K= kontrol. **) Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji Duncan pada taraf 5%. Dalam penelitian ini perlakuan yang diberikan tidak nyata meningkatkan bobot kering tanaman berdasarkan hasil analisis ragam, namun perlakuan yang diberikan juga tidak memberikan efek negatif bagi tanaman. Perlakuan yang diberikan tidak menghambat pertumbuhan dan perkembangan tanaman. Berdasarkan hasil analisis ragam, perlakuan berpengaruh nyata terhadap blok untuk bobot kering tanaman (Tabel 6). Rata-rata bobot kering tanaman pada blok 1 berbeda nyata dengan bobot kering tanaman pada blok 3, sedangkan pada blok 2 tidak berbeda nyata baik dengan blok 1 maupun blok 3. Rata-rata bobot kering tanaman yang lebih besar terdapat pada blok 3 dengan rata-rata 14,7 gram/tanaman. Tanaman pada blok 3 memang lebih besar dan lebih baik pertumbuhannya dibandingkan dengan blok lain. Pada blok 1, rata-rata bobot kering tanamannya paling rendah bila dibandingkan dengan blok 3 dan 2, tanaman pada blok 1 lebih kecil ukurannya dan menunjukkan pertumbuhan yang kurang

43 32 baik. Hal tersebut kemungkinan dapat terjadi karena tanaman pada blok 1 kurang mendapatkan penyinaran matahari secara sempurna. Tabel 6 Rata-rata bobot kering tanaman tomat pada setiap blok di rumah kaca pada musim penghujan Blok Bobot kering (gram/tanaman) ± 2.8b *) ± 2.4ab ± 5.5a **) Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji Duncan pada taraf 5%. Menurut Sudarsono & Malik (2006) kombinasi P. fluorescens dan B. subitilis dengan bokashi mampu meningkatkan bobot kering tanaman kentang, dan menurut Chrisnawati et al. (2009) kombinasi antara Bacillus spp. Bc 26 dengan P. fluorescens Pf 101 mampu meningkatkan bobot kering daun nilam. Bakteri endofit Pseudomonas pseudomallei, Bacillus mycoides dan Klebsiella ozaenae baik yang diaplikasikan secara tunggal maupun kombinasi mampu meningkatkan bobot kering tanaman kentang (Juwita 2010). Pengaruh Aplikasi Bakteri Endofit dan PGPR terhadap Kejadian Penyakit Layu Bakteri di Lapangan Kejadian penyakit layu bakteri di lapangan menunjukkan angka yang lebih tinggi dibandingkan tingkat kejadian penyakit di rumah kaca yang berarti bahwa tanaman yang terserang layu bakteri lebih banyak terjadi di lapangan (Tabel 7). Hal ini bisa disebabkan oleh kondisi di lapangan yang lebih heterogen, patogen R. solanacearum memiliki virulensi yang tinggi dan terdapat dalam jumlah yang banyak karena tanah di lapangan merupakan tanah yang pernah ditanami tanaman tomat yang terserang layu bakteri dan kondisi lingkungan yang lebih kompleks seperti suhu udara dan sinar matahari. Patogen R. solanacearum tidak diinokulasikan ke dalam media tanam seperti pada perlakuan di rumah kaca karena tanah di lapangan sudah mengandung patogen R. solanaceraum dari pertanaman tomat sebelumnya. Pada percobaan di lapangan tidak dilakukan pengukuran tinggi tanaman, bobot kering, dan pengamatan masa inkubasi seperti pada pengujian di rumah kaca. Kondisi lapangan yang digunakan dalam

44 33 penelitian ini tidak rata atau tidak datar antar blok, antara blok 1 dengan blok lain agak berlereng. Berdasarkan hasil analisis ragam, perlakuan yang berpengaruh nyata hanya pada minggu ketiga baik berdasarkan uji lanjut dengan Duncan maupun Dunnett (Tabel 7 & 8). Meskipun pada minggu-minggu yang lain terdapat huruf yang berbeda antar perlakuan dengan uji lanjut Duncan, namun tidak dikatakan berbeda nyata karena berdasarkan hasil analisis ragam nilai dari Pr>F lebih dari taraf nyata yang digunakan yaitu 10%. Perlakuan yang berbeda nyata berdasarkan uji lanjut Duncan yaitu bakteri endofit S. epidermidis (BC4), kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (P1BL10), dan kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (B12BL10) yang masing-masing berbeda nyata dengan kontrol. Rata-rata tingkat kejadian penyakit pada tanaman dengan ketiga perlakuan tersebut secara berturutturut yaitu 33,3%; 35%; dan 36,7% sedangkan pada kontrol sebesar 65%. Pada Tabel 7 dapat dilihat pula bahwa bakteri endofit S. epidermidis (BC4) berbeda nyata dengan bakteri endofit yang lain yaitu bakteri endofit isolat BC10 dan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) dengan rata-rata kejadian penyakit pada tanaman dengan bakteri endofit S. epidermidis (BC4) lebih rendah dari kedua isolat bakteri endofit tersebut. Hasil pengolahan dengan uji lanjut Dunnett merupakan selisih dari masing-masing perlakuan agens biokontol dengan kontrol. Selisih rata-rata antara dua perlakuan yang menunjukkan hasil negatif berarti bahwa kejadian penyakit pada kontrol lebih tinggi dibandingkan kejadian penyakit pada agens biokontrol. Uji lanjut dengan Dunnett menunjukkan bahwa terdapat dua perlakuan yang berbeda nyata dengan kontrol yaitu kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (P1BL10) dan bakteri endofit S. epidermidis (BC4). Uji Dunnett ini digunakan untuk melihat pengaruh dari masing-masing perlakuan terhadap kontrol. Berdasarkan nilai AUDPC, bakteri endofit S. epidermidis (BC4) menunjukkan potensi yang lebih baik dalam menekan kejadian penyakit layu bakteri bila dibandingkan dengan bakteri endofit yang lain yaitu bakteri endofit isolat BC10 dan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10). Hal tersebut karena

45 34 total rata-rata kejadian penyakit (AUDPC) pada tanaman yang diberi bakteri endofit S. epidermidis (BC4) lebih rendah dari tanaman dengan bakteri endofit isolat BC10 dan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) yaitu sebesar 303,5 % hari. Hal ini sesuai dengan penelitian yang telah dilakukan oleh Damayanti (2010) bahwa bakteri endofit S. epidermidis (BC4) mampu menekan kejadian penyakit layu bakteri pada tomat dengan lebih baik dibandingkan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) dan bakteri endofit isolat BC10. Secara keseluruhan agens biokontrol yang menunjukkan total rata-rata kejadian penyakit (AUDPC) yang paling rendah adalah kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (B12BL10) sebesar 297,5 % hari sedangkan yang tertinggi yaitu pada bakteri endofit isolat BC10 sebesar 344,1 % hari. Pada Tabel 7 terlihat bahwa tanaman yang diberi perlakuan kombinasi antara bakteri PGPR dengan bakteri endofit menunjukkan nilai AUDPC yang lebih rendah dibandingkan dengan kontrol. Sedangkan untuk perlakuan tunggal, tidak semua nilai AUDPC lebih rendah dari kontrol. Nilai AUDPC dari bakteri endofit isolat BC10 lebih tinggi dari kontrol yaitu sebesar 344,1 % hari sedangkan pada kontrol sebesar 338,5 % hari. Terdapat pula nilai AUDPC yang sama besar dengan kontrol yaitu pada perlakuan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) masing-masing sebesar 338,5 % hari. Meskipun nilai AUDPC dari semua kombinasi bakteri endofit dengan bakteri PGPR lebih rendah dari kontrol, namun tidak semua kombinasi agens biokontrol tersebut bersifat sinergis. Seperti pada perlakuan tunggal bakteri endofit S. epidermidis (BC4) yang memiliki nilai AUDPC lebih rendah dibandingkan perlakuan kombinasi antara bakteri endofit S. epidermidis baik dengan bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1BC4) maupun dengan bakteri PGPR B. subtilis AB89 (B12BC4). Nilai AUDPC dari masingmasing perlakuan bakteri endofit S. epidermidis (BC4), kombinasi antara bakteri endofit S. epidermidis dengan P. fluorescens RH4003 (P1BC4), dan kombinasi antara bakteri endofit S. epidermidis dengan B. subtilis AB89 (B12BC4) secara berturut-turut yaitu 303,5 % hari; 309,1 % hari; dan 326,6 % hari.

46 Tabel 7 Kejadian penyakit layu bakteri pada berbagai perlakuan bakteri PGPR dan endofit secara tunggal dan kombinasi serta nilai AUDPC di lapangan Perlakuan Kejadian penyakit Minggu I Minggu II Minggu III Minggu IV Minggu V Minggu VI Minggu VII Minggu VIII Minggu IX P1 **) 15 ± 13.2c ***) 36.7 ± 10.4ab 43.3 ± 12.6ab 51.7 ± 25.7abc 61.7 ± 24.7b 66.7 ± 20.2c 73.3 ± 15.3bc 86.7 ± 5.8a 95 ± 5abc B12 35 ± 22.9abc 45 ± 21.8ab 45 ± 21.8ab 53.3 ± 23.6abc 71.7 ± 22.5ab 76.7 ± 16.1abc 83.3 ± 16.1abc 86.7 ± 15.3a 91.7 ± 7.6abcd BC ± 22.5abc 26.7 ± 23.6b 33.3 ± 29.3b 46.7 ± 23.6bc 61.7 ± 20.2b 68.3 ± 20.2bc 71.7 ± 14.4c 81.7 ± 10.4a 86.7 ± 12.6cd BC ± 41.6ab 60 ± 35a 63.3 ± 33.3a 68.3 ± 24.7a 73.3 ± 20.8ab 83.3 ± 12.6ab 88.3 ± 16.1ab 95 ± 5a 98.3 ± 2.9a BL ± 5.8a 58.3 ± 7.6a 63.3 ± 11.5a 68.3 ± 12.6a 78.3 ± 16.1a 85 ± 13.2a 86.7 ± 10.4abc 93.3 ± 7.6a 96.7 ± 2.9ab P1BC4 45 ± 36.1abc 48.3 ± 34ab 55 ± 26.5ab 65 ± 21.8ab 73.3 ± 20.8ab 78.3 ± 16.1abc 78.3 ± 16.1abc 83.3 ± 11.5a 88.3 ± 7.6bcd P1BC ± 23.6abc 43.3 ± 7.6ab 48.3 ± 15.3ab 58.3 ± 18.9abc 70 ± 18ab 76.7 ± 12.6abc 78.3 ± 12.6abc 85 ± 18a 91.7 ± 14.4abcd P1BL ± 20.2bc 31.7 ± 14.4b 35 ± 8.7b 45 ± 20c 66.7 ± 18.9ab 68.3 ± 16.1bc 76.7 ± 5.8abc 83.3 ± 2.9a 90 ± 5abcd B12BC ± 30.1abc 36.7 ± 32.1ab 45 ± 31.2ab 61.7 ± 20.2abc 70 ± 22.9ab 75 ± 26bc 83.3 ± 16.1abc 88.3 ± 16.1a 93.3 ± 7.6abcd B12BC ± 36.9abc 45 ± 27.8ab 48.3 ± 27.5ab 51.7 ± 28.4abc 61.7 ± 15.3b 68.3 ± 7.6abc 73.3 ± 11.5bc 85 ± 5a 86.7 ± 5.8cd B12BL10 15 ± 15c 33.3 ± 16.1b 36.7 ± 18.9b 48.3 ± 24.7bc 66.7 ± 14.4ab 71.7 ± 15.3abc 76.7 ± 18.9abc 81.7 ± 14.4a 85 ± 8.7d K 50 ± 27.8ab 58.3 ± 25.7a 65 ± 22.9a 70 ± 18a 76.7 ± 15.3ab 83.3 ± 20.2ab 90 ± 8.7a 95 ± 5a 96.7 ± 5.8ab *) AUDPC = Area Under Disease Progress Curve. **) Kode isolat bakteri: P1= Pseudomonas fluorescens RH4003, B12= Bacillus subtilis AB89, BC4= Staphylococcus epidermidis, BC10= bakteri endofit isolat BC10, BL10= Bacillus amyloliquefaciens, K= kontrol. ***) Angka yang diikuti huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji Duncan pada taraf 10%. AUDPC *) (% hari) 35

47 36 Tabel 8 Hasil perbandingan rata-rata kejadian penyakit pada masing-masing perlakuan dengan kontrol (Uji Dunnett) Perbandingan Minggu 1 Minggu 2 Minggu 3 Minggu 4 Minggu 5 Minggu 6 Minggu 7 Minggu 8 Minggu 9 1) Selisih rata-rata 2) P1 K 3) -35 4) B12 -K BC4 - K *** BC10 - K BL10 - K P1BC4 - K P1BC10 - K P1BL10 - K *** B12BC4 - K B12BC10 - K B12BL10 - K ) Perbandingan dua perlakuan. 2) Selisih rata-rata dua perlakuan. 3) Kode isolat bakteri: P1= Pseudomonas fluorescens RH4003, B12= Bacillus subtilis AB89, BC4= Staphylococcus epidermidis, BC10= bakteri endofit isolat BC10, BL10= Bacillus amyloliquefaciens, K= kontrol. 4) Angka yang diikuti *** berbeda nyata berdasarkan uji Dunnett pada taraf 10%. 36

48 37 Dalam penelitian yang telah dilakukan ini menunjukkan bahwa agens biokontrol yang diberikan yaitu bakteri endofit S. epidermidis (BC4), bakteri endofit isolat BC10, dan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) serta bakteri PGPR yaitu P. fluorescens (P1) dan B. subtilis (B12) belum menunjukkan potensi yang maksimal dalam mengendalikan penyakit layu bakteri di lapangan. Hal tersebut dikarenakan tingkat kejadian penyakit layu bakteri yang masih cukup tinggi meskipun telah diberi perlakuan dengan agens biokontrol. Beberapa kemungkinan yang menyebabkan masih tingginya tingkat kejadian penyakit di lapangan yaitu: populasi R. solanacearum yang cukup tinggi karena R. solanacearum sudah terdapat dalam tanah, populasi R. solanacearum lebih banyak dibandingkan populasi dari bakteri antagonis, kurangnya frekuensi aplikasi agens biokontrol, kondisi lapangan yang cukup heterogen, cukup rendahnya populasi bakteri agens biokontrol yang mampu mengkolonisasi daerah perakaran, dan adanya patogen lain yang menyebabkan terjadinya persaingan antara agens biokontrol dengan patogen. Untuk meningkatkan kemampuan agens biokontrol tersebut yaitu dengan menambah frekuensi aplikasi agens biokontrol pada beberapa umur tanaman, sehingga agens biokontrol yang diberikan mampu mengkolonisasi akar dalam jumlah yang cukup besar dan mampu masuk ke dalam jaringan tanaman sehingga dapat bersaing dengan R. solanacearum. Jenis hubungan antar agens biokontrol Berdasarkan Tabel 9 dapat dilihat bahwa bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) tidak memberikan penekanan terhadap kejadian penyakit layu bakteri karena index penekanannya sebesar 0%. Penekanan terbaik terhadap kejadian penyakit layu bakteri yaitu pada perlakuan kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (B12BL10) karena index penekanannya paling besar dibandingkan perlakuan yang lain yaitu sebesar 12,11%.

49 38 Tabel 9 Keefektifan pengendalian (Index Penekanan), nilai SF (Synergy Factor) dan jenis hubungan antar agens biokontrol berdasarkan nilai AUDPC Perlakuan Index penekanan (%) 1) 2) E (exp) SF JH 3) P1 4) 1.77 B BC BC BL10 0 P1BC A P1BC S P1BL S B12BC A B12BC S B12BL S 1) 2) 3) 4) Relatif dibandingkan dengan kontrol. Keefektifan pengendalian dugaan oleh campuran agens biokontrol. JH = Jenis Hubungan; A = antagonis dan S = sinergis. Kode isolat bakteri: P1= Pseudomonas fluorescens RH4003, B12= Bacillus subtilis AB89, BC4= Staphylococcus epidermidis, BC10= bakteri endofit isolat BC10, BL10= Bacillus amyloliquefaciens, K= kontrol. Untuk mengetahui apakah antar agens biokontrol yang dikombinasikan bersifat sinergis atau antagonis maka dilakukan pendugaan dengan menggunakan rumus Abbott s (Guetsky et al dalam Nawangsih 2006). Agens biokontrol yang dikombinasikan tidak selalu memberikan hasil yang lebih baik dibandingkan aplikasi secara tunggal. Kombinasi antar agens biokontrol kemungkinan ada yang bersifat sinergis dan ada yang antagonis. Berdasarkan Tabel 9 terlihat bahwa bakteri endofit S. epidermidis (BC4) bersifat antagonis jika diaplikasikan secara kombinasi baik dengan P. fluorescens RH4003 (P1) maupun dengan B. subtilis AB89 (B12). Hal tersebut menunjukkan bahwa bakteri endofit S. epidermidis (BC4) lebih baik jika diaplikasikan secara tunggal/ sendiri-sendiri. Bakteri endofit isolat BC10 dan bakteri endofit B. amyloliquefaciens (BL10) menunjukkan sifat sinergis jika dikombinasikan dengan bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) maupun dengan B. subtilis AB89 (B12). Salah satu cara yang mungkin perlu dicoba untuk meningkatkan potensi bakteri endofit S. epidermidis (BC4) jika dikombinasikan dengan bakteri PGPR yaitu dengan mengaplikasikan masing-masing bakteri pada waktu yang berbeda. Misalnya, bakteri endofit S. epidermidis (BC4) diaplikasikan satu minggu setelah aplikasi

50 39 bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) maupun B. subtilis AB89 (B12) dilakukan. Beberapa penelitian telah menunjukkan hasil bahwa penggunaan bakteri endofit dan PGPR mampu mengendalikan penyakit pada tumbuhan termasuk penyakit layu bakteri pada beberapa tanaman. Namun, penelitian yang telah dilakukan tersebut merupakan aplikasi dari bakteri PGPR dan endofit secara masing-masing bukan penggabungan dari bakteri PGPR dengan bakteri endofit. Penggabungan antar agens biokontrol belum tentu memberikan hasil yang lebih baik dari aplikasi agens biokontrol secara sendiri-sendiri. Seperti yang disebutkan oleh Arwiyanto & Hartana (1999) bahwa kombinasi antara P. fluorescens Pf20 dengan B. subtilis Ba118 justru memperparah munculnya penyakit layu bakteri pada tembakau. Arwiyanto & Hartana (1999) juga menyatakan bahwa kombinasi antar P. fluorescens Pf33 dengan P. fluorescens Pf15 bersifat antagonis karena menunjukkan indeks penyakit yang tinggi. Hal tersebut kemungkinan terjadi karena adanya kompetisi nutrisi dan ruang fisik maupun ruang biologi antar P. fluorescens (Arwiyanto & Hartana 1999). Namun, terdapat pula kombinasi antar agens biokontrol yang menunjukkan sifat sinergis. Handiyanti (2010) menyatakan bahwa kombinasi antara P. fluorescens Pf10 dengan B. subtilis B12 bersifat kompatibel atau sinergis. Kombinasi antar kedua agens biokontrol tersebut mampu menekan perkembangan penyakit busuk lunak pada anggrek. Tanaman dengan perlakuan P. fluorescens RH4003 (P1) memiliki bobot kering yang lebih tinggi dibanding perlakuan yang lain meskipun secara keseluruhan tidak berbeda nyata. Namun disisi lain P. fluorescens RH4003 (P1) tidak berpotensi dalam memacu tinggi tanaman. Karena laju pertambahan tinggi tanaman dengan perlakuan P1 lebih rendah dari kontrol pada musim penghujan. Tingkat kejadian penyakit pada tanaman yang diberi P. fluorescens RH4003 (P1) lebih rendah dari kontrol baik pengujian di rumah kaca maupun di lapangan. Berdasarkan nilai AUHPGC, bakteri endofit isolat BC10 yang diaplikasikan bersama bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) dan B. subtilis AB89 (B12) menunjukkan laju pertambahan tinggi yang lebih besar dibandingkan perlakuan yang lain. Namun jika dilihat dari pengaruhnya terhadap tingkat

51 40 kejadian penyakit layu bakteri, bakteri endofit isolat BC10 yang diaplikasikan baik secara tunggal maupun kombinasi kurang menunjukkan kemampuannya dalam menghambat perkembangan penyakit layu bakteri terutama di lapangan. Meskipun tanaman dengan perlakuan kombinasi antara P. fluorescens RH4003 dengan bakteri endofit isolat BC10 (P1BC10) dan kombinasi antara B. subtilis AB89 dengan bakteri endofit isolat BC10 (B12BC10) menunjukkan laju pertambahan yang lebih tinggi dibandingkan perlakuan lain, namun bobot kering tanaman dengan kedua perlakuan tersebut tidak menunjukkan bobot yang besar pula. Hal tersebut karena tanaman yang tumbuh lebih tinggi belum tentu memiliki bobot yang lebih besar juga, sebab mungkin saja tanaman yang lebih tinggi tersebut jaringannya lebih sukulen. Dari uraian diatas dapat diketahui bahwa suatu agens antagonis yang digunakan dalam penelitian ini tidak semuanya berpotensi menekan perkembangan layu bakteri sekaligus meningkatkan laju pertambahan tinggi maupun bobot kering tanaman.

52 KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan Diantara 5 isolat bakteri agens biokontrol yang diuji di lapangan secara tunggal ternyata bakteri Staphylococcus epidermidis (BC4) paling efektif dalam menekan kejadian penyakit layu bakteri berdasarkan nilai AUDPC. Gabungan antara bakteri endofit dan PGPR kurang efektif dalam menekan perkembangan penyakit layu bakteri di lapangan. Bakteri endofit S. epidermidis (BC4) bersifat antagonis jika dikombinasikan dengan bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) maupun B. subtilis AB89 (B12). Sedangkan bakteri endofit Bacillus amyloliquefaciens (BL10) dan bakteri endofit isolat BC10 bersifat sinergis ketika dikombinasikan dengan bakteri PGPR P. fluorescens RH4003 (P1) maupun B. subtilis AB89 (B12). Aplikasi gabungan antara PGPR dan endofit tidak mempengaruhi pertambahan tinggi tanaman dan bobot kering. Namun, aplikasi tersebut juga tidak memberikan efek yang negatif bagi pertumbuhan tanaman. Saran Untuk meningkatkan potensi agens antagonis ini perlu ditambah frekuensi aplikasi pada berbagai usia tanaman serta perlu dilakukan penelitian mengenai perbandingan konsentrasi antara bakteri endofit dengan PGPR yang efektif dalam menekan penyakit layu bakteri.

53 DAFTAR PUSTAKA Agrios GN Plant Pathology. Ed ke- 3. London: Academic Press. Arwiyanto T, Hartana I Pengendalian hayati penyakit layu baketri tembakau: 2. percobaan di rumah kaca. Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia 5(1):50-59 [jurnal on-line]. download.php [23 Juli 2011]. [AVRDC] Asian Vegetable Research and Development Center Bacterial wilt. The World Vegetable Center. Bacterial wilt.pdf [22 Oktober2010]. Bustamam H Seleksi mikroba rizosfer antagonis terhadap bakteri Ralstonia solanacearum penyebab penyakit layu bakteri pada tanaman jahe di lahan tertindas. Jipi 8(1):12-18 [jurnal on-line]. [22 Oktober 2010]. Chrisnawati, Nasrun, Arwiyanto T Pengendalian penyakit layu bakteri nilam menggunakan Bacillus spp. dan Pseudomonas fluorescens. Littri 15(3): [jurnal on-line]. [22 April 2010]. Cooke BM Disease assessment and yield loss. Di dalam: Jones DG, editor. The Epidomiology of Plant Diseases. London: Kluwer Academic Publishers. hlm Damayanti I Seleksi dan karakterisasi bakteri endofit untuk menekan kejadian penyakit layu bakteri (Ralstonia solanacearum) pada tanaman tomat [skripsi]. Bogor: Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor. Glick BR, Pasternak JJ Molecular Biotechnology Principles and Applications of Recombinant DNA. Ed ke-3. Washington, DC: American Society for Microbiology ASM Press. Gunawan OS Teknologi Produksi Tomat. Bandung: Balai Penelitian Tanaman Sayuran. Handiyanti M Potensi Bacillus spp. dan Pseudomonas fluorescens sebagai agens pengendali penyakit busuk lunak bakteri (Erwinia carotovora) pada anggrek Phalaenopsis [skripsi]. Bogor: Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor. Hayward AC, Hartman GL Bacterial Wilt. Wallingford: Cab International. Juwita Potensi bakteri endofit dalam meningkatkan ketahanan tanaman kentang (Solanum tuberosum) terhadap serangan nematoda sista kuning (Globodera rostochiensis) [skripsi]. Malang: Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Islam Negeri Malang.

54 43 Khalimi K, Wirya GNAS Pemanfaatan plant growth promoting rhizobakteria untuk biostimulants dan bioprotectants. Ecotrophic 4(2): [jurnal on-line]. khamdan_edit.pdf [22 Oktober 2010]. Kloepper JW Plant Growth-Promoting Rhizobacteria as biological control agents of soilborne diseases. Di dalam: Petersen JB, editor. The Biological Control of Plant Diseases. Proceedings of The International Seminar Biological Control of Plant Diseases and Virus Vectors ; Tsukuba, September Japan: NARC. hlm McCarter SM Bacterial wilt. Di dalam: Jones JB et al., editor. Compendium of Tomato Diseases. Minnesota: The American Phytopathological Society. hlm Mehan VK, Liao BS, Tan YJ, Smith AR, McDonald D, Hayward AC Bacterial Wilt of Groundnut. India: International Crops Research Institute for the Semi-Arid Tropics. Nasrun, Christanti, Arwiyanto T, Mariska I Karakteristik fisiologis Ralstonia solanacearum penyebab penyakit layu bakteri nilam. Littri 13 (2): [jurnal on-line]. Files/File/publikasi/jurnal/Jurnal%202007/Artikel% NASRUN. pdf [22 Oktober 2010]. Nawangsih AA Seleksi dan karakterisasi bakteri biokontrol untuk mengendalikan penyakit layu bakteri (Ralstonia solanacearum) pada tomat [disertasi]. Bogor: Sekolah Pasca Sarjana, Institut Pertanian Bogor. Radji M Peranan bioteknologi dan mikroba endofit dalam pengembangan obat herbal. Majalah Ilmu Kefarmasian 2(3): [jurnal on-line]. [22 Oktober 2010]. Ratih S, Eviyati R Pestisida organik berbahan aktif bakteri agensia hayati yang efektif mengendalikan pustul kedelai. Agrijati 6(1): [jurnal on-line]. [22 Oktober 2010]. Saddler GS Management of bacterial wilt disease. Di dalam: Allen C et al., editor. Bacterial Wilt Disease and The Ralstonia solanacearum Species Complex. Minnesota: The American Phytopathological Society. hlm Sigee DC Bacterial Plant Pathology : Cell and Molecular Aspect. Manchester : Cambridge University Press. Soesanto L Pengantar Pengendalian Hayati Penyakit Tanaman. Jakarta: PT Raja Grafindo Persada. Sudarsono, Malik A Efektifitas bakteri antagonis yang dikombinasikan dengan EM 4 dan bokashi terhadap penyakit layu bakteri pada tanaman kentang. Agros 8(1): 1-8 [jurnal on-line]. jurnal/ pdf [22 Oktober 2010].

55 44 Tigchelaar E.C Botany and culture. Di dalam: Jones JB et al., editor. Compendium of Tomato Diseases. Minnesota: The American Phytopathological Society. hlm 2-4. Yang CY Bacterial and fungal diseases of tomato. Di dalam: Robert C, editor. 1 st International Symposium on Tropical Tomato. Shanhua: AVRDC. hlm

56 LAMPIRAN Lampiran 1 Hasil analisis ragam laju pertambahan tinggi tanaman tomat di rumah kaca pada musim kemarau Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 1 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi

57 46 Lampiran 1 (lanjutan) Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 5 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Lampiran 2 Hasil analisis ragam laju pertambahan tinggi tanaman tomat di rumah kaca pada musim penghujan Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 1 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi

58 47 Lampiran 2 (lanjutan) Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 4 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Lampiran 3 Hasil analisis ragam kejadian penyakit layu bakteri pada tanaman tomat di rumah kaca pada musim penghujan Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 1 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi

59 48 Lampiran 3 (lanjutan) Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 3 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi

60 49 Lampiran 3 (lanjutan) Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 8 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu 9 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Lampiran 4 Hasil analisis ragam bobot kering tanaman tomat di rumah kaca pada musim penghujan Sumber DB JK KT F hit Pr > F Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi

61 50 Lampiran 5 Hasil analisis ragam kejadian penyakit layu bakteri pada tanaman tomat di lapangan Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 1 Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok <.0001 Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok <.0001 Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok <.0001 Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi

62 51 Lampiran 5 (lanjutan) Sumber DB JK KT F hit Pr > F Minggu 5 Blok <.0001 Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu 6 Minggu Blok <.0001 Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Blok <.0001 Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi Minggu Blok Perlakuan Error/ galat Total terkoreksi

63 52 a b c Lampiran 6 Persiapan tanah terinfestasi R. solanacearum; pencampuran suspensi R. solanacearum dengan air (a), pencampuran tanaman tomat terserang layu bakteri dengan air (b), pencampuran suspensi R. solanacearum dengan tanah dari lapangan (c) a b Lampiran 7 Persiapan perlakuan agens biokontrol; 200 ml suspensi agens biokontrol dimasukkan ke dalam ember (a), pencampuran 200 ml agens biokontrol dengan 1800 ml air (b)

64 53 Lampiran 8 Gejala layu bakteri di rumah kaca Lampiran 9 Keadaan pertanaman tomat di rumah kaca; umur 25 hst (kiri), umur 32 hst (kanan)

65 54 a b Lampiran 10 Pengukuran bobot kering tanaman tomat; penjemuran tanaman (a), penimbangan bobot kering tanaman (b) Lampiran 11 Gejala layu bakteri di lapangan