STUDI PATOGEN ANTRAKNOSA PADA PEPAYA
|
|
- Suparman Hartono
- 7 tahun lalu
- Tontonan:
Transkripsi
1 STUDI PATOGEN ANTRAKNOSA PADA PEPAYA Abstrak Identifikasi spesies Colletotrichum sangat dibutuhkan untuk penerapan metode pengendalian yang efektif dan pembentukan varietas resisten. Metode tradisional untuk mendeteksi spesies Colletotrichum penyebab antraknosa pada pepaya dapat dilakukan dengan cara mengkarakterisasi morfologi, ada tidaknya seta dan warna koloni. Berdasarkan bentuk konidia, adanya seta dan warna dari koloni, isolat dari pepaya termasuk Colletotrichum gloeosporiedes. Isolat TJR1 menunjukkan pertumbuhan optimum pada suhu 28 o C (suhu kamar) sehingga isolat ini dapat digunakan sebagai isolat untuk penapisan genotipe pepaya terhadap penyakit antraknosa yang dilakukan dilaboratorium pada suhu kamar (28 o C). Kecepatan pertumbuhan optimum Colletotrichum gloeosporiedes isolat dari pepaya (TJR1,TJR2, TJR3,TJR4, GG1 dan GG2) dan isolat dari cabai (BGR11) pada suhu 24 o C, sedangkan Colletotrichum capsici (GGc) isolat dari cabai menunjukkan kecepatan pertumbuhan optimum pada suhu 32 o C. Seluruh isolat dari pepaya dan cabai yang berhasil di koleksi menunjukkan potensi infeksi pada buah cabai dan pepaya. Metode inokulasi yaitu tempel dilukai dan semprot tidak dilukai, menunjukkan masa inkubasi, diameter dan kejadian penyakit yang tidak berbeda nyata, sehingga kedua metode ini dapat digunakan dalam metode inokulasi dalam kegiatan penapisan genotipe pepaya terhadap penyakit antraknosa. Kata kunci : Colletotrichum, isolat, konidia Abstract Identification of Colletotrichum species that responsible to the as well as disease epidemic is essential for development and implementation an effective control methods and for breeding for resistance to specific species. In traditional methods, morphological character such as shape conidia, precence, absence and morphology of setae have been used to identify Colletotrichum spesies. To develop an effective resistance screeing technique, experiments were conducted to understand the growth character, such as relationship beetwen temperature, infection potencial on different host, inoculation studies for the best method in identifying the resistant germplasm. Isolates from papaya produced mainly cylindrical conidia and colony colours ranging from pale salmon pink to dark grey. The optimum temperature for the development Colletotrichum gloeosporioides from papaya isolate (TJR1, TJR2, TJR3, TJR4, GG1, GG2) and pepper isolate (BGR11) were 24 o C and Colletotrichum capsici (GGc) from pepper isolate was 32 o C. All papaya isolate and pepper isolate produced lesions on pepper and papaya. Papaya fruit were inoculated by two inoculation methods, wounding and spray inoculations produced no different respons. Keyword : Colletotrichum, isolate, conidia
2 21 Pendahuluan Latar Belakang Penyakit antraknosa merupakan salah satu penyakit pasca panen yang penting pada pepaya yang dapat menurunkan mutu buah. Patogen yang menyebabkan penyakit tersebut adalah Colletotrichum gloeosporiedes (Penz) Sacc. (Snowdown 1990; OECD 2005). Selanjutnya Sepiah et al. (1991) dan Sepiah (1992) melaporkan bahwa patogen yang penting penyebab antraknosa pada pepaya eksotika adalah C. capsici yang merupakan penyakit penting di Malaysia. Patogen penyebab antraknosa pada buah pepaya di Indonesia adalah C. gloeosporioides (Sulusi et al dan Semangun 2000). Gejala serangannya dapat muncul pada saat pengiriman atau ketika dipasarkan. Gejala serangan pasca panen umumnya timbul ketika buah sedang dalam transportasi, pemasaran atau penyimpanan. Pada saat buah masih berada di pohon, patogen dalam kondisi laten dan akan berkembang setelah buah menjadi matang. Perlu melakukan identifikasi untuk konfirmasi patogen antraknosa pada pepaya. Identifikasi dapat dilakukan dengan beberapa cara, antara lain dengan melihat tanda penyakit, karakterisasi morfologi dan sifat biologi patogen. Spesies Colletotrichum dapat dikelompokkan menjadi dua grup berdasarkan bentuk konidianya yaitu straight dan curve (Skipp et al. 1995). Selanjutnya Sutton (1992) menyatakan bahwa identifikasi Colletotrichum sp dapat dilakukan berdasarkan morfologi dan kisaran inangnya. Respon terhadap suhu juga dapat digunakan untuk menunjukkan kesamaan antar isolat (Adaskaveg dan Hartin 1997). Freeman (2000) menyatakan bahwa identifikasi spesies Collethotrichum dapat dilakukan dengan melihat karakter morfologi, respon suhu terhadap pertumbuhan optimal, vegetatif compatibility, respon terhadap fungisida dan biologi molekuler. Setelah identifikasi patogen dilakukan, maka perlu diketahui kisaran inang antraknosa. Informasi kisaran inang dapat dilakukan dengan melakukan inokulasi silang antara isolat yang berasal dari pepaya diinokulasikan ke buah cabai dan sebaliknya. Isolat C. gloeosporioides dari mangga dan alpokat berhasil diinokulasikan ke strawberry, cabai, jambu biji, pepaya dan jeruk (Swart 1999). Hal ini menunjukkan bahwa C. gloeosporioides memiliki kisaran inang yang luas.
3 22 Identifikasi dan sifat biologi patogen antraknosa merupakan informasi yang sangat diperlukan dalam usaha pengendalian yang akan di lakukan. Pengendalian antraknosa pada pepaya yang dilakukan antra lain dengan penggunaan fungisida, perendaman dengan air panas, pelapisan lilin dan pengendalian biologi dengan agen hayati. Salah satu pengendalian yang aman dan murah adalah dengan menciptakan varietas resisten. Dalam pembentukan varietas resisten, salah satu tahapan yang harus dilakukan adalah kegiatan penapisan genotipe pepaya. Metode inokulasi yang tepat sangat diperlukan untuk penapisan genotipe pepaya yang tahan terhadap antraknosa. Penelitian dilakukan untuk mengidentifikasi penyebab antraknosa pada pepaya melalui pengamatan morfologi koloni dan konidia. Isolat patogen yang dikoleksi dari lapang akan digunakan dalam uji patogenitas, uji kisaran inang, dan uji suhu optimum. Selanjutnya isolat-isolat tersebut akan digunakan dalam evaluasi metode inokulasi. Hasil identifikasi dan karakterisasi penyebab antraknosa pada pepaya memberikan dasar dalam upaya pengendalian penyakit pada pepaya. Bahan dan Metode Waktu dan Tempat Percobaan mencakup empat kegiatan yaitu identifikasi penyebab penyakit dan uji patogenisitas, uji pertumbuhan patogen pada beberapa suhu, dan evaluasi metode inokulasi. Kegiatan berlangsung dari bulan Mei 2004 sampai Juli 2005 di Laboratorium Cendawan Departemen Proteksi Tanaman IPB Bogor. Koleksi isolat Isolat penyebab antraknosa dikumpulkan dari dua lokasi kebun pepaya yaitu Kebun Percobaan Pusat Kajian Buah tropika (PKBT) Tajur-Bogor, dan Kebun Agrorekatama Gunung Geulis-Bogor. Pada masing-masing koleksi dipilih buah, daun, dan tangkai daun pepaya yang menunjukkan gejala khas antraknosa. Isolasi cendawan dilakukan di laboratorium dengan menggunakan metode penanaman jaringan pada media potato dextrose agar (PDA) dan inkubasi pada suhu 28 o C (suhu kamar). Biakan murni setelah tujuh hari dipanen konidianya. Pemanenan dilakukan dengan menambahkan air steril sampai agar dalam cawan
4 23 terendam (+18 ml). Kemudian dengan menggunakan spatula konidia dipanen untuk pembuatan biakan spora tunggal. Biakan konidia tunggal yang diperoleh diperbanyak lagi pada media PDA dan diinkubasi pada ruang dengan penyinaran 12 jam gelap dan 12 jam terang dibawah sinar ultraviolet selama tujuh hari. Kode, asal inang dan lokasi dari Tabel 1. Identifikasi Penyebab Antraknosa pada Pepaya isolat yang berhasil dikoleksi tertera pada Identifikasi patogen dilakukan menggunakan pedoman Barnet dan Hunter (1972) dan Kulshrestha et al. (1976), yaitu melalui pengamatan morfologi konidia, seta dan aservulus. Pengamatan morfologi dilakukan terhadap biakan murni maupun tanda penyakit pada buah pepaya yang terserang. Tabel 1 Isolat Colletotrichum sp., inang asal isolat dan lokasi sumber isolat No Kode Isolat Asal Isolat Lokasi Asal Isolat 1 TJR1 Buah pepaya IPB1 Kebun percobaan PKBT Tajur 2 TJR2 Daun pepaya IPB1 Kebun percoban PKBT Tajur 3 TJR3 Buah pepaya Taiwan Kebun percobaan PKBT Tajur 4 TJR4 Buah pepaya Boyolali Kebun percobaan PKBT Tajur 5 TJR5 Buah pepaya Blitar Kebun percobaan PKBT Tajur 6 TJR6 Buah pepaya Magelang Kebun percobaan PKBT Tajur 7 TJR7 Buah pepaya STR64 Kebun percobaan PKBT Tajur 8 TJR8 Buah pepaya IPB10 Kebun percobaan PKBT Tajur 9 TJR9 Daun pepaya Redking Kebun percobaan PKBT Tajur 10 TJR10 Tangkai daun pepaya SW Kebun percobaan PKBT Tajur yellow 11 GG1 Buah pepaya Taiwan Kebun Agrorekatama Gunung Geulis 12 GG2 Biji pepaya Kebun Agrorekatama Gunung Geulis 13 BGR11 (Cg) Buah cabai Bogor (koleksi laboratorium Cendawan IPB) 14 GGc Buah cabai Gunung Geulis (koleksi (Cc) Zulfadillah) Uji Patogenisitas Patogen Antraknosa pada Pepaya Biakan murni dari 12 isolat asal pepaya yang berhasil di koleksi di gunakan dalam uji patogenisitas menggunakan metode suntik pada buah pepaya
5 24 (Swart 1999). Buah pepaya yang digunakan pada uji patogenisitas adalah genotipe STR 64. Buah pepaya yang akan digunakan dalam pengujian terlebih dahulu diberi perlakuan sterilisasi. Permukaan buah direndam dalam NaOCl 2 % selama lima menit kemudian dibilas dengan air steril. Titik inokulasi pada permukaan buah pepaya dibuat sebanyak lima titik tiap buah. Kepadatan suspensi spora yang digunakan untuk inokulasi adalah 10 6 spora/ml, jumlah spora dihitung menggunakan haemocytometer. Selanjutnya buah yang telah diinokulasi diletakkan pada bak plastik dan ditutup dengan plastik transparan. Pada keempat sudut bak diletakkan kapas basah untuk menjaga kelembaban, selanjutnya bak plastik diingkubasi pada suhu kamar. Rancangan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan dua belas isolat sebagai perlakuan. Masing masing isolat diulang sebanyak tiga kali, sehingga terdapat 30 unit percobaan. Peubah yang diamati adalah : 1. Muncul tidaknya gejala: pengamatan dilakukan setiap hari setelah inokulasi dengan melihat gejala khas antraknosa. 2. Rata-rata masa inkubasi: yaitu rata-rata periode hari setelah diinokulasi sampai munculnya gejala. 3. Rata-rata diameter gejala: diameter gejala diukur pada tujuh hari setelah inokulasi. Uji Patogenisitas Colletotrichum asal Pepaya pada Buah Cabai Isolat Colletotrichum yang digunakan dalam pengujian ini terdiri dari enam isolat Colletotrichum yang telah diidentifikasi sebelumnya (TJR1, TJR2, TJR3, TJR4, GG1, GG2). Biakan Colletotrichum asal pepaya digunakan untuk menginokulasi buah cabai yang diperoleh dari tanaman cabai varietas Hot Chilli asal Gunung Geulis Bogor. Sebagai pembanding digunakan isolat C. gloesporioides dan C. capsici asal cabai (BGR 11 dan GGc) untuk menginokulasi buah pepaya STR 64. Buah cabai dan pepaya yang akan digunakan dalam pengujian tersebut terlebih dahulu disterilisasi. Permukaan buah direndam dalam NaOCl 2 % selama lima menit kemudian dibilas dengan air steril dan diberi perlakuan dengan alkohol 70% untuk sterilisasi permukaan buah.
6 25 Inokulasi buah cabai dan pepaya dilakukan dengan metode penempelan biakan cemdawan. Dari masing-masing biakan cendawan dibuat potonganpotongan berukuran 0.4 cm. Potongan-potongan biakan tersebut ditempelkan pada permukaan buah cabai dan pepaya yang telah dilukai dengan jarum steril. Buah cabai dan pepaya yang telah diinokulasi diletakkan dalam bak plastik dan ditutup plastik transparan. Pada keempat sudut bak diletakkan kapas steril basah, untuk menjaga kelembaban. Selanjutnya bak plastik diinkubasi pada suhu kamar. Rancangan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan delapan isolat Colletotrichum sebagai perlakuan. Masing masing isolat di ulang sebanyak tiga kali, sehingga terdapat 24 unit percobaan. Untuk inokulasi pada buah cabai, masing-masing perlakuan terdiri dari 10 buah cabai, sedangkan untuk buah pepaya masing-masing perlakuan terdiri dari tiga buah pepaya. Peubah yang diamati adalah : 1. Rata-rata masa inkubasi: yaitu rata-rata periode hari setelah diinokulasi sampai munculnya gejala 2. Rata-rata diameter gejala: diameter gejala diukur pada tujuh hari setelah inokulasi. 3. Kejadian Penyakit (%); Peubah kejadian penyakit (KP) dihitung dengan rumus : KP = (n/n) x 100% Keterangan: N = jumlah titik inokulasi n = jumlah titik inokulasi yang menunjukkan gejala antraknosa Uji Pertumbuhan Colletotrichum pada Beberapa Suhu Isolat Colletotrichum yang digunakan dalam pengujian ini adalah isolatisolat hasil identifikasi sebelumnya, yang terdiri atas enam isolat pepaya (TJR1, TJR2, TJR3, TJR4, GG1, GG2), satu isolat C. gloesporioides asal cabai (BGR 11) serta C. capsici asal cabai (GGc). Isolat yang akan digunakan tersebut sebelumnya ditumbuhkan pada media PDA selama dua minggu pada suhu kamar. Dari masing-masing biakan selanjutnya dibuat potongan-potongan kecil berukuran diameter 0.4 cm. Potongan biakan tersebut selanjutnya dipindahkan ke media PDA yang baru pada cawan petri yang berukuran diameter 9 cm. Dalam
7 26 satu cawan petri diletakkan satu potongan biakan cendawan, yaitu di bagian tengah cawan petri. Selanjutnya cawan petri yang berisikan biakan cendawan tersebut di letakkan pada berbagai suhu, yaitu 16 o C, 20 o C, 24 o C, 28 o C, 32 o C, dan 36 o C Rancangan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan delapan isolat (TJR1, TJR2, TJR3, TJR4, GG3, GG7, BG11 dan GGc) sebagai perlakuan yang diulang sebanyak empat kali. Peubah yang diamati adalah : 1. Rata-rata kecepatan pertumbuhan cendawan. Pengamatan diameter pertumbuhan cendawan dilakukan sejak hari pertama inokulasi pada suhu tertentu selama tujuh hari berturut-turut. Rata rata kecepatan pertumbuhan cendawan per hari dihitung dengan rumus sebagai berikut: dm dm n KPC = n KPC = kecepatan pertumbuhan cendawan n = jumlah hari 2. Rata-rata diameter koloni: Pengamatan dilakukan pada hari ketujuh setelah inokulasi, dengan mengukur diameter koloni cendawan Evaluasi Keefektifan Metode Inokulasi Evaluasi dilakukan untuk menentukan metode inokulasi dengan tepat dalam kegiatan penapisan. Ketahanan genotipe pepaya terhadap antraknosa. Metode inokulasi yang dievaluasi terdiri dari : 1) Metode inokulasi penempelan biakan dan pelukaan jaringan (TP). Buah pepaya yang akan diinokulasi dilukai dengan menggunakan jarum suntik steril pada empat titik pada permukaan buah. Potongan biakan cendawan berukuran diameter 0.4 cm. Kemudian ditempelkan pada permukaan buah tersebut. 2) Metode inokulasi penempelan biakan tanpa pelukaan jaringan (TL). Buah pepaya yang akan diinokulasi tidak dilukai, penempelan potongan biakan cendawan. Inokulum berukuran diameter 0.4 cm dilakukan pada empat titik. 3) Metode inokulasi penyemprotan konidia tanpa pelukaan jaringan (SL). Buah pepaya yang akan diinokulasi tidak dilukai. Inokulum disiapkan dengan mengemulsikan biakan murni dalam air steril,
8 27 sehingga diperoleh konsentrasi 10 6 konidia/ml. Dengan menggunakan alat semprot tangan permukaan buah pepaya disemprot hingga seluruh permukaan basah (+ 10 ml/buah). Setelah diinokulasi, buah pepaya diletakkan didalam bak plastik, lalu di tutup dengan plastik transfaran. Rancangan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan delapan isolat Colletotrichum sebagai perlakuan. Masing masing isolat di ulang sebanyak tiga kali, sehingga terdapat 24 unit percobaan. Masing-masing unit percobaan terdiri atas lima buah pepaya. Peubah yang diamati adalah : 1. Rata-rata masa inkubasi: yaitu rata-rata periode hari setelah diinokulasi sampai munculnya gejala 2. Rata-rata diameter gejala: diameter gejala diukur pada tujuh hari setelah inokulasi. 3. Kejadian Penyakit (%); Peubah kejadian penyakit (KP) dihitung dengan rumus : KP = (n/n) x 100% Keterangan: N = jumlah titik inokulasi n = jumlah titik inokulasi yang menunjukkan gejala antraknosa Analisis Data Seluruh percobaan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL), dengan model linier aditif, analisis ragam dan harapan kuadrat tengah untuk tiap karakter yang diamati pada semua percobaan disusun mengikuti Steel dan Torrie (1980). Model linier aditif untuk percobaan I ini adalah sebagai berikut: Y ij Yij = µ + u + P + ε (1) i j ij = nilai pengamatan pada perlakuan ke-j µ = nilai tengah umum Ui Pj ε ij = Pengaruh ulangan ke-i = Pengaruh perlakuan ke-j = Pengaruh acak pada genotipe ke-j ulangan ke-i
9 28 Berdasarkan model linier aditif di atas, pada Tabel 2 disajikan bentuk analisis ragam disertai harapan kuadrat tengahnya, dengan berpengaruh acak. anggapan genotipe Tabel 2 Analisis ragam model acak disertai harapan kuadrat tengah untuk percobaan tahap I Sumber keragaman db KT E(KT) F hitung Ulangan Perlakuan Galat (r-1) (p-1) (r-1)(p-1) - S T - 2 σ + σ 2 E rσ G Db : derajat bebas p : jumlah perlakuan KT : kuadrat tengah r : jumlah ulangan E(KT) : harapan kuadrat tengah 2 E - S/T - Terhadap semua data karakter yang diamati pada percobaan pada tahap I, baik yang menyebar normal maupun tidak, dilakukan analisis perbedaan nilai tengah antar perlakuan menggunakan uji Duncan Multiple Range Test (DMRT) (Steel dan Torrie 1980). Hasil dan Pembahasan Identifikasi Penyebab Antraknosa pada Pepaya Berdasarkan ciri morfologi konidia yang diamati secara mikroskopis diketahui bahwa penyebab antraknosa pada buah pepaya adalah cendawan C. gloeosporioides. Selain ditemukan seta pada aservulus cendawan, bentuk konidia hialin yang dominan adalah silindris dengan ujung membulat (Gambar 4). Bentuk konidia tersebut sangat berbeda dengan bentuk konidia C. dematium yang menyerupai bulan sabit, atau C. acutatum yang silindris dengan ujung meruncing. Walaupun bentuk konidia secara umum sangat homogen antar isolat, ternyata warna koloni sangat beragam (Tabel 3). Hal tersebut merupakan sifat C. gloeosporioides seperti yang dilaporkan oleh Semangun (2000); Bailey dan Jeger (1992). Cendawan C. gloeosporioedes menyebabkan dua tipe gejala yaitu antraknosa dan bercak coklat (brown spot) seperti yang dikemukakan oleh Alvarez dan Nishijima (1987), kedua tipe ini juga ditemukan pada buah pepaya yang terserang antraknosa di penyimpanan (Prabawati et al, 1991).
10 29 Uji Patogenisitas Penyebab Antraknosa Isolat cendawan yang diperoleh dari dua lokasi pertanaman pepaya tidak seluruhnya dapat menginfeksi buah pepaya melalui inokulasi buatan di laboratorium (Tabel 3). Enam isolat dari Tajur Bogor (TJR1, TJR2, TJR3, TJR4, GG1, GG2) dan isolat dari Gunung Geulis Bogor (GG1, GG2) menyebabkan gejala berupa bercak pada permukaan buah yang diinokulasi (Gambar 4A). Tabel 3 Uji patogenisitas beberapa isolat penyebab antraknosa pada buah pepaya Isolat Hasil uji Masa inkubasi (hari) Diameter bercak (cm) Bentuk konidia TJR cde 2.70 a silindris dan TJR abc 1.77 bc silindris dan TJR bcd 1.27 c silindris dan TJR f 2.67 ab silindris dan TJR ab 1.67 c silindris dan TJR a 1.1 c silindris dan TJR silindris dan TJR silindris dan TJR silindris dan TJR silindris dan GG ef 2.43 ab silindris dan GG def 2.23 ab silindris dan Warna koloni merah muda merah muda jingga abu-abu abu-abu abu-abu abu-abu abu-abu jingga Jingga merah muda merah muda Angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (DMRT) Hasil uji : + = buah menampakkan gejala, - = buah tidak menunjukkan gejala sampai akhir pengamatan Rata-rata diameter bercak berkisar 1.1 cm sampai 2.70 cm dengan masa inkubasi berkisar 4.33 hari sampai 6.67 hari. Gejala tersebut sesuai dengan deskripsi yang dilaporkan pepaya oleh Joseli et al (2002) gejala awal yang terlihat pada permukaan buah yang terserang antraknosa maupun becak coklat,
11 30 keluarnya lateks pada titik kecil yang kemudian meluas menjadi bercak-bercak coklat. Cendawan C. gloeosporioides merupakan salah satu patogen penyebab antraknosa pada sebagian besar buah-buahan dan merupakan patogen utama penyebab antraknosa pada buah. A D H B E c C G F I J Gambar 4 Gejala infeksi, bentuk konidia dan aservulus patogen antraknosa pada pepaya. Gejala antraknosa pada buah yang diinokulasi buatan (A), gejala antraknosa pada buah di lapang (B), gejala becak coklat (C), konidia dibawah mikroskop pembesaran 10x40 (E), konidia tunggal (F), Aservulus beserta konidia dan seta (G), H, I, J, berturut-turut konidia C. dematium, C. acutatum, C. gloeosporioides (sumber: Kulshrestha et al dan Adaskaveg & Hartin 1997). Uji Patogenisitas Colletotrichum asal Pepaya pada Buah Cabai Isolat yang menginfeksi pepaya ternyata dapat juga menginfeksi buah cabai dan menunjukkan gejala antraknosa. Demikian pula isolat Colletotrichum
12 31 asal cabai (BGR11 dan GGc) dapat menginfeksi buah pepaya. Hal tersebut sesuai dengan penelitian yang dilakukan sebelumnya. Mahfud (1986) C. gloeosporioides penyebab antraknosa pada cabai dapat menyebabkan antraknosa pada pepaya sedangkan cendawan antraknosa dari pepaya dapat menginfeksi cabai, mangga, pisang dan ubi kayu. Tabel 4 Masa inkubasi, diameter gejala dan persentase gejala antraknosa dari delapan isolat Colletotrichum pada buah cabai dan pepaya Isolat Masa inkubasi (hari) Diameter gejala (cm) Persentase sporulasi (%) Cabai Pepaya Cabai Pepaya Cabai Pepaya TJR a 5.56 ab 0.81 b b 100 TJR a 5.89 ab 0.67 b ab 100 TJR cd 5.11 ab 1.2 b ab 100 TJR bc 4.11 b 1.12 b ab 100 GG d 5.56 ab 2.82 a a 100 GG cd 6.00 ab 1.29 b ab 100 BGr ab 5.22 ab 0.59 b b 100 GGc 5.75 a 6.22 a 0.76 b b 100 Angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (DMRT) Keterangan: TJR1-TJR4 = isolat C. gloeosporioides dari pepaya di Kebun Percobaan PKBT Tajur; GG1&GG2 = isolat C. gloeosporioides pepaya di Kebun PT. Agrorekatama Gunung Geulis; BGR11 = isolat C. gloeosporioides dari buah cabai koleksi Laboratorium Cendawan Departemen Proteksi Tanaman IPB; GGc = isolat C. capsici dari buah cabai di Gunung Geulis (koleksi Zulfadillah). Uji patogenisitas delapan isolat Colletotrichum pada cabai menunjukkan bahwa isolat GG1 memiliki masa inkubasi tercepat (4 hari), diameter gejala terpanjang (2.82 cm) dan kejadian penyakit (85%) (Tabel 4). Sedangkan uji patogenisitas pada buah pepaya menunjukkan respon yang hampir sama untuk semua isolat. Swart (1999) menyatakan bahwa isolat yang memiliki masa inkubasi singkat dan serangan yang luas, lebih virulen dibandingkan dengan isolat yang masa inkubasinya lama dengan serangan yang kecil Uji Pertumbuhan Colletotrichum pada Beberapa Suhu Pada suhu 16 o C, 20 o C dan 24 o C isolat C. gloeosporioides dari buah pepaya (TJR1, TJR2, TJR3, TJR4, GG1,GG2) menunjukkan pertumbuhan yang sama dan tidak berbeda dengan isolat dari buah cabai (BGR11) namun berbeda nyata dengan pertumbuhan isolat C. capsici (GGc) (Tabel 5). Pertumbuhan C. capsici cendrung lebih lambat dibandingkan isolat lainnya.
13 32 Pada suhu 28 o C, 32 o C dan 36 o C pertumbuhan koloni masing-masing isolat menunjjukkan perbedaan yang nyata. Selain isolat C. capsici, semua C. gloeosporioides asal pepaya (TJR1, TJR2, TJR3, TJR4, GG1, GG2) dan asal cabai (BGR11) menunjukkan pertumbuhan optimum pada suhu 28 o C, dan pertumbuhan mulai menurun pada suhu 32 o C dan 36 o C. Isolat C. capsici mencapai pertumbuhan optimum pada suhu 32 o C. Lebih lanjut dapat diamati bahwa C.capsici menunjukkan pertumbuahan lebih lambat dibandingkan pertumbuhan C. gloeosporioides asal pepaya dan cabai pada semua kondisi suhu. Hasil tersebut sejalan dengan laporan penelitian AVRDC (1988) menunjukkan bahwa pertumbuahan C. gloeosporioides asal cabai mencapai optimum pada suhu 28 o C dan C. capsici tumbuh optimum pada suhu o C. Tabel 5 Rata-rata diameter koloni delapan isolat antraknosa pada beberapa suhu Isolat Diameter koloni Suhu ( o C) cm TJR a 5.66 a 5.60 a 6.05 a 4.48 d 3.55 bcd TJR a 5.43 a 5.28 a 5.45 cd 6.05 ab 3.85 bc TJR a 5.78 a 5.75 a 5.70 bc 4.50 d 4.33 ab TJR a 5.45 a 5.30 a 5.38 d 5.05 bcd 3.08 cde GG a 5.78 a 5.75 a 5.93 ab 6.13 a 2.43 e GG a 5.95 a 5.73 a 5.63 cd 6.33 a 4.98 a BGR a 5.68 a 5.53 a 5.58 cd 5.60 abc 3.40 bcde GGc 3.32 b 4.93 b 4.18 b 4.96 e 4.60 cd 2.80 de Angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (DMRT) Keterangan: TJR1-TJR4 = isolat C. gloeosporioides dari pepaya di Kebun Percobaan PKBT Tajur; GG1&GG2 = isolat C. gloeosporioides pepaya di Kebun PT. Agrorekatama Gunung Geulis; BGR11 = isolat C. gloeosporioides dari buah cabai koleksi Laboratorium Cendawan Departemen Proteksi Tanaman IPB; GGc = isolat C. capsici dari buah cabai di Gunung Geulis (koleksi Zulfadillah) Isolat yang memiliki pertumbuhan optimal tertinggi pada suhu 28 o C yaitu TJR1 dan GG1. Oleh karena itu Isolat TJR 1 dipilih untuk sumber isolat pada pengujian percobaan selanjutnya, mengingat pengujian dilakukan dilaboratorium pada suhu kamar yaitu antara o C. Perbedaan pertumbuhan C. gloeosporioides dan C. capsici juga tampak pada kecepatan pertumbuhan koloni yang diamati setiap hari selama delapan hari berturut-turut. Tujuh isolat C. gloeosporioides mencapai kecepatan pertumbuhan maksimal pada suhu 24 o C, sementara satu isolat C. capsici mencapai pertumbuhan maksimum pada suhu 32 o C (Gambar 5 dan Lampiran 1)
14 33 Kecepatan pertumbuhan (cm/hari) TJR1 TJR2 TJR3 TJR4 GG1 GG2 BGR11 GGc Suhu ( o C) Gambar 5 Suhu optimum pertumbuhan C. gleosporioides (TJR1, TJR2, TJR3, TJR4, GG1, GG2 dan BGr11) dan C. capsici (GGc). Evaluasi Kefektifan Metode Inokulasi Metode inokulasi dengan cara menempelkan biakan cendawan telah dilakukan untuk uji inokulasi antraknosa di laboratorium pada buah alpokat, mangga dan pepaya oleh Swart (1999). Sedangkan metode inokulasi dengan cara menyemprotkan konidia telah dilakukan oleh Dickman et al. (1983) dalam pengujian infeksi laten C. gloeosporioides pada buah pepaya di lapang dan oleh Sulusi et al. (1991) uji patogenisitas C. gloeosporioides pada buah pepaya di laboratorium. Peneliti-peneliti tersebut menyimpulkan bahwa metode-metode inokulasi tersebut dapat Colletotrichum pada buah. disarankan sebagai metode baku untuk inokulasi Tabel 6 Masa inkubasi, diameter gejala dan persentase gejala pada perlakuan tiga metode inokulasi C. gloeosporioides Perlakuan Masa inkubasi (hari) Diameter gejala (cm) Kejadian Penyakit (%) TP a TL b SL a Angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (DMRT) Keterangan : TP = Metode inokulasi penempelan biakan dan pelukaan jaringan, TL= Metode inokulasi penempelan biakan tanpa pelukaan jaringan, SL= Metode inokulasi penemprotan koloni tanpa pelukaan jaringan
15 34 Hasil percobaan yang penulis lakukan ternyata sesuai dengan hasil percobaan sebelumnya. Ketiga metode inokulasi yang dievaluasi tidak berbeda nyata untuk peubah masa inkubasi dan diameter bercak, tetapi berbeda nyata untuk peubah kejadian penyakit. Kejadian penyakit tertinggi diperoleh melalui metode inokulasi penempelan biakan dan pelukaan jaringan (TP) (86.67%) dan metode inokulasi penyemprotan konidia tanpa pelukaan jaringan (SL). Kedua metode inokulasi tersebut dapat disarankan untuk digunakan dalam kegiatan penapisan genotipe pepaya. Kelebihan metode inokulasi penempelan biakan dan pelukaan jaringan (TP) dalam mengamati diameter bercak, sementara kelebihan metode inokulasi penyemprotan konidia tanpa pelukaan jaringan (SL) akan dirasakan bila kegiatan penapisan genotipe melibatkan jumlah aksesi yang besar. Simpulan Berdasarkan pengamatan morfologi konidia, tubuh buah, dan koloni dapat disimpulkan bahwa penyebab antraknosa pada pepaya yang dikoleksi dari Tajur dan Gunung Geulis adalah C. gloeosporioides. Secara umum semua isolat C. gloeosporioides mengalami pertumbuhan optimum pada suhu 28 o C. Hal tersebut sangat berbeda bila di bandingkan dengan C. capsici yang mencapai pertumbuhan optimum pada suhu 32 o C. Lebih lanjut diketahui bahwa isolat C. gloeosporioides asal pepaya mampu menginfeksi buah cabai, demikian pula sebaliknya isolat C. gloeosporioides dan C. capsici asal cabai mampu menginfeksi buah pepaya. Metode inokulai yang dapat dianjurkan untuk kegiatan penapisan genotip pepaya tahan antraknosa adalah metode inokulasi penempelan biakan dan pelukaan jaringan (TP) dan metode inokulasi penyemprotan konidia tanpa pelukaan jaringan (SL). Ucapan Terima Kasih Ucapan terimakasih disampaikan kepada: (1) BPPS Dikti Depdiknas RI, (2) Pusat Kajian Buah Tropika (PKBT) melalui Tim Program Penelitian Riset Unggulan Strategis Nasional (RUSNAS); (3) Maneger PT. Agrorekatama Gunung Geulis Bogor; (4) Kepala Kebun Percobaan PKBT Tajur Bogor dan ; (5) Kepala Laboratorium Mikologi HPT IPB Bogor.
16 35 Daftar Pustaka Adaskaveg JE, hartin RJ Characterization of Colletotrichum acutatum isolate causing anthracnose of almond and peach in California. Phytopathology 87(9): Alvarez AM, Nishijima WT Post harvest disease of papaya. Plant Disease 71: [AVRDC] Effect of fruit maturity on anthracnose development. Di dalam: AVRDC, editor. Progress report in tomato and pepper production in the tropics; Shanhua, Taiwan. Hlm Bailey JA, Jeger MJ Colletotrichum: biology, pathology and control. CAB Intl. Wallingford, UK. Barnet HL, Hunter BB Illustrated Genera of Imperfect Fungi. Ed ke-4. New York. Dickman MB, & Alvarez AM Laten infection of papaya caused by Colletotrichum gloeosporioides. Plant Diseases 67(7): Freeman S Genetic diversity and host specifitcity of Collethotrichum species on various fruits. Di dalam Collethotrichum: Host specificity, pathology and host pathogen interaction. Am Phytopathol Soc Pr, St Paul, MN, USA. Joseli ST, Liberato JR, Zamolim L, Happines J, Coast H Control and climatic conditions favorable to the antracnose of the mamoeiro (papaya). Fitopatol Bras 27(2): Lim TK, Tang SC Anthracnose and some local fruit trees. Seminar Nasional buah-buahan Malaysia. UPM. Malaysia. Mahfud MC Uji tanaman inang penyakit antraknosa pada pepaya. Penel. Hort. 1(1): Prabawati S, Sjaifullah, Amiarsi D Cendawan penyebab kerusakan buah pepaya selama penyimpanan dan pemasaran serta pengendaliannya. J Hort 1(3): Semangun H Penyakit-penyakit Tanaman Hortikultura di Indonesia. Gajah Mada Univ Pr. Sepiah MA, Subki, Lam PF Fungicides for postharvest control of colletotrichum sp. in Eksotika papaya. ASEAN Food J. 6:14-18.
17 36 Sepiah MA Penyakit lepas tuai betik dan ciku (Postharvest diseases of papaya and sapota). Bengkel Penyelidikan Sistem Pengendalian Lepastuai Betik dan Ciku, Melaka, Malaysia. Hlm Sinaga MS Dasar-dasar Ilmu Penyakit tumbuhan. Jakarta: Penebar Swadaya. Skipp RA, Beever RE, Sharrock KR, Rikkerink EHA, Templeton MD Colletotrichum. Di dalam Kahmoto K, Singh U, Singh RP, editor. Pathogenesis and host-specificity in plant disease. Histopathological, biochemical, genetic and molecular bases. Oxford: Pergamon. Hlm Snowdown AL A colour atlas of postharvest diseases and disorders of fruit and vegetables. Vol.1. Wolfe Scientific. Steel RGD, Torrie JH Principles and Procedure Statistic. A biomatrical approach. Ed ke 2. Book co. London. Sutton BC The genus Glomerella and its anamorph Colletotrichum. Editor Colletotrichum: biology, pathology and control. CAB Intl. Wallingford, UK. Swart GM Comparative study of Colletotrichum gloeosporioides from Avocado and Mango [Disertasi] Departement of Microbiology and Plant Pathology University of Pretoria
STUDI PATOGEN PENYEBAB ANTRAKNOSA PADA PEPAYA. Siti Hafsoh Mahasiswa Program Studi Agronomi Sekolah Pascasarjana IPB
STUDI PATOGEN PENYEBAB ANTRAKNOSA PADA PEPAYA Siti Hafsoh Mahasiswa Program Studi Agronomi Sekolah Pascasarjana IPB Abstract Identification of Colletotrichum species that responsible to the disease epidemic
Lebih terperincimelakukan inokulasi langsung pada buah pepaya selanjutnya mengamati karakter yang berhubungan dengan ketahanan, diantaranya masa inkubasi, diameter
PEMBAHASAN UMUM Pengembangan konsep pemuliaan pepaya tahan antraknosa adalah suatu kegiatam dalam upaya mendapatkan genotipe tahan. Salah satu metode pengendalian yang aman, murah dan ramah lingkungan
Lebih terperinciIII. METODE PENELITIAN. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan
14 III. METODE PENELITIAN 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Agroteknologi Fakultas Pertanian Universitas Lampung. Pelaksanaan penelitian
Lebih terperinciKomisi Pembimbing. Manfaat Pepaya
Komisi Pembimbing Ketua : Prof. Dr. Ir. Sarsidi Sastrosumarjo, M.Sc Anggota : Dr. Ir. Sriani Sujiprihati, MS Dr. Ir. Sri Hendrastuti Hidayat, M.Sc Dr. Ir. Sobir, M.S Ujian Terbuka Sekolah Pascasarjana
Lebih terperinciIII. METODE PENELITIAN. Penelitian dilaksanakan pada Oktober 2011 sampai Maret 2012 di Rumah Kaca
III. METODE PENELITIAN 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian dilaksanakan pada Oktober 2011 sampai Maret 2012 di Rumah Kaca dan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Proteksi Tanaman Fakultas Pertanian Universitas
Lebih terperinciPENAPISAN GENOTIPE DAN ANALISIS GENETIK KETAHANAN PEPAYA TERHADAP PENYAKIT ANTRAKNOSA DI TAJUR DAN GUNUNG GEULIS BOGOR SITI HAFSAH
PENAPISAN GENOTIPE DAN ANALISIS GENETIK KETAHANAN PEPAYA TERHADAP PENYAKIT ANTRAKNOSA DI TAJUR DAN GUNUNG GEULIS BOGOR SITI HAFSAH SEKOLAH PASCASARJANA INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2007 PERNYATAAN MENGENAI
Lebih terperinciPENDAHULUAN Latar Belakang
PENDAHULUAN Latar Belakang Pepaya (Carica papaya) merupakan salah satu tanaman buah yang sangat penting dalam pemenuhan kalsium dan sumber vitamin A dan C (Nakasome dan Paull 1998). Selain dikonsumsi sebagai
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Proteksi
11 III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat Penelitian dan Waktu Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Proteksi Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Lampung. Pelaksanaan penelitian
Lebih terperinciEFFEK LAMA PERENDAMAN DAN KONSENTRASI PELARUT DAUN SIRIH TERHADAP PERKEMBANGAN PENYAKIT ANTRAKNOSA PADA BUAH PISANG. ABSTRAK
EFFEK LAMA PERENDAMAN DAN KONSENTRASI PELARUT DAUN SIRIH TERHADAP PERKEMBANGAN PENYAKIT ANTRAKNOSA PADA BUAH PISANG. Nurhayati, Abu Umayah dan Heynce Berdnand * * Dosen Fakultas Pertanian Universitas Sriwijaya
Lebih terperinciKetahanan Penyakit Antraknosa terhadap Cabai Lokal dan Cabai Introduksi. Resistance to Anthracnose on Local and Introduction Chilies
Ketahanan Penyakit Antraknosa terhadap Cabai Lokal dan Cabai Introduksi Resistance to Anthracnose on Local and Introduction Chilies Abdul Hakim 1, Muhamad Syukur 1*, Widodo 2 1 Departemen Agronomi dan
Lebih terperinciIII. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Botani, Jurusan Biologi, Fakultas
17 III. METODE PENELITIAN A. Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Botani, Jurusan Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Universitas Lampung, pada bulan
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE
III. BAHAN DAN METODE 3.1. Tempat dan waktu Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Riau kampus Bina Widya Jl. H.R Soebrantas Km 12,5 Simpang Baru Panam
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tanaman dan Laboratorium
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tanaman dan Laboratorium Lapangan Terpadu Fakultas Pertanian Universitas Lampung pada bulan November
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Bahan dan Alat Metode Penelitian Penyediaan Isolat Fusarium sp. dan Bakteri Aktivator
BAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Mikologi, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor, dan Laboratorium Mikrobiologi dan Kesehatan
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Penelitian Bahan Penelitian Metode Penelitian Isolasi dan Identifikasi Cendawan Patogen
14 BAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Penelitian Percobaan dilaksanakan dari bulan Maret sampai bulan Juli 2012 di Laboratorium Mikologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Jurusan Agroteknologi, Universitas Lampung. Penelitian ini dilaksanakan mulai
14 III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan waktu penelitian Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan, Fakultas Pertanian, Jurusan Agroteknologi, Universitas Lampung. Penelitian ini dilaksanakan
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Lampung (UNILA) sebagai tempat ekstraksi fungisida nabati,
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian dilakukan di Laboratorium Penyakit Tanaman, Fakultas Pertanian,
16 III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilakukan di Laboratorium Penyakit Tanaman, Fakultas Pertanian, Universitas Lampung dan penelitian ini dilaksanakan pada bulan Juni 2014
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Bahan dan Alat Metode Penelitian Pra-pengamatan atau survei
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Kebun Percobaan Pusat Kajian Buah-Buahan Tropika IPB (PKBT-IPB) Pasir Kuda, Desa Ciomas, Bogor, dan Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan,
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Kasa Fakultas Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan dengan ketinggian tempat
BAHAN DAN METODE Tempat dan waktu penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan dan di Rumah Kasa Fakultas Pertanian, Medan dengan ketinggian tempat + 25 m dpl pada Bulan Mei
Lebih terperinciDaya Gabung dan Heterosis Ketahanan Pepaya (Carica papaya L) terhadap Penyakit Antraknosa *)
Bul. Agron. (35) (3) 197 204 (2007) Daya Gabung dan Heterosis Ketahanan Pepaya (Carica papaya L) terhadap Penyakit Antraknosa *) Combining Ability and Heterosis of Resistance to Anthracnose Disease of
Lebih terperinciBAB III METODE PENELITIAN. Nazir (1999: 74), penelitian eksperimental adalah penelitian yang dilakukan
BAB III METODE PENELITIAN A. Jenis Penelitian Jenis penelitian yang telah dilakukan ini bersifat eksperimen. Menurut Nazir (1999: 74), penelitian eksperimental adalah penelitian yang dilakukan dengan memanipulasi
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Ilmu Penyakit Tanaman Fakultas
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Ilmu Penyakit Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Lampung. Pelaksanaan penelitian dimulai dari September
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan dan di halaman
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan dan di halaman Jurusan Proteksi Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Lampung dari bulan
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Metode Penelitian
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilakukan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan dan Rumah Kaca University Farm, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian
Lebih terperinciEFETIVITAS EKSTRAK DAUN SIRIH TERHADAP INFEKSI Colletotrichum capsici PADA BUAH CABAI. Nurhayati
EFETIVITAS EKSTRAK DAUN SIRIH TERHADAP INFEKSI Colletotrichum capsici PADA BUAH CABAI Nurhayati Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan, Fakultas Pertanian Universitas Sriwijaya Kampus unsri Indralaya Jl. Raya
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan
11 III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Agroteknologi Bidang Proteksi Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Lampung
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Bahan
9 BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Patologi Serangga, dan Laboratorium Fisiologi dan Toksikologi Serangga, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian,
Lebih terperinciIII. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Botani, Fakultas Matematika dan Ilmu
III. METODE PENELITIAN A. Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Botani, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Lampung pada bulan Agustus 2012 sampai
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Tanaman, serta Laboratorium Lapang Terpadu, Fakultas Pertanian, Universitas
13 III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Hama dan Penyakit Bidang Proteksi Tanaman, serta Laboratorium Lapang Terpadu, Fakultas Pertanian, Universitas
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Bahan dan Alat
BAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Perbanyakan P. citrophthora dan B. theobromae dilaksanakan di Laboratorium Mikologi Tumbuhan Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor,
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penyiapan Tanaman Uji Pemeliharaan dan Penyiapan Suspensi Bakteri Endofit dan PGPR
17 BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian dilakukan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor dan di Rumah Kaca, University Farm,
Lebih terperinciIII. METODE PENELITIAN
III. METODE PENELITIAN A. Materi, Lokasi dan Waktu Penelitian 1. Materi Penelitian a. Bahan Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah jamur yang memiliki tubuh buah, serasah daun, ranting, kayu
Lebih terperinciHASIL DAN PEMBAHASAN Kondisi Umum
16 HASIL DAN PEMBAHASAN Kondisi Umum Keadaan tanaman cabai selama di persemaian secara umum tergolong cukup baik. Serangan hama dan penyakit pada tanaman di semaian tidak terlalu banyak. Hanya ada beberapa
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Proteksi
20 III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Proteksi Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Lampung dari bulan Januari sampai dengan
Lebih terperinciDaya Hasil 15 Galur Cabai IPB dan Ketahanannya terhadap Penyakit Antraknosa yang Disebabkan oleh Colletotrichum acutatum
Daya Hasil 15 Galur Cabai IPB dan Ketahanannya terhadap Penyakit Antraknosa yang Disebabkan oleh Colletotrichum acutatum Yield and Resistance to Anthracnose Disease Caused by Colletotrichum acutatum of
Lebih terperinciGambar 1 Tanaman uji hasil meriklon (A) anggrek Phalaenopsis, (B) bunga Phalaenopsis yang berwarna putih
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Isolasi dan perbanyakan sumber inokulum E. carotovora dilakukan di Laboratorium Bakteriologi Departemen Proteksi Tanaman Fakultas Pertanian, Institut Pertanian
Lebih terperinciTINJAUAN PUSTAKA Botani dan Morfologi Cabai
3 TINJAUAN PUSTAKA Botani dan Morfologi Cabai Cabai (Capsicum annuum L.) termasuk dalam genus Capsicum yang spesiesnya telah dibudidayakan, keempat spesies lainnya yaitu Capsicum baccatum, Capsicum pubescens,
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Ilmu Penyakit Tumbuhan, Bidang
8 III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Ilmu Penyakit Tumbuhan, Bidang Proteksi Tanaman, Jurusan Agroteknologi, Fakultas Pertanian Universitas Lampung
Lebih terperinciINTENSITAS SERANGAN PENYAKIT ANTRAKNOSA (Colletotrichum sp) PADA VARIETAS/GALUR DAN HASIL SORGUM
INTENSITAS SERANGAN PENYAKIT ANTRAKNOSA (Colletotrichum sp) PADA VIETAS/GALUR DAN HASIL SORGUM Soenartiningsih dan A. Haris Talanca Balai Penelitian Tanaman Serealia Maros ABSTRAK Penyakit antraknosa yang
Lebih terperinciBAB III BAHAN DAN METODE. Penelitian dilakukan dari 2 Juni dan 20 Juni 2014, di Balai Laboraturium
BAB III BAHAN DAN METODE 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian dilakukan dari 2 Juni dan 20 Juni 2014, di Balai Laboraturium Kesehatan Medan. 3.2 Alat dan Bahan Alat alat yang digunakan dalam penelitian
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Tempat dan waktu penelitian Bahan dan Alat Isolasi dan Uji Reaksi Hipersensitif Bakteri Penghasil Siderofor
BAHAN DAN METODE Tempat dan waktu penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor, dari Oktober 2010
Lebih terperinciPENDUGAAN NILAI DAYA GABUNG DAN HETEROSIS KETAHANAN TANAMAN CABAI (Capsicum annuum) TERHADAP ANTRAKNOSA
PENDUGAAN NILAI DAYA GABUNG DAN HETEROSIS KETAHANAN TANAMAN CABAI (Capsicum annuum) TERHADAP ANTRAKNOSA COMBINING ABILITY AND HETEROSIS OF CHILLI (Capsicum annuum) RESISTANCE TO ANTHRACNOSE Yulia Irawati
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian telah dilakukan di Laboratorium Penyakit Tanaman Fakultas Pertanian
1 III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian telah dilakukan di Laboratorium Penyakit Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Lampung, dimulai dari bulan Juni 2014 sampai dengan September
Lebih terperinciIII. METODE PENELITIAN. Persiapan alat dan bahan yang akan digunakan. Pembuatan media PDA (Potato Dextrose Agar)
III. METODE PENELITIAN A. Bagan Alir Penelitian Persiapan alat dan bahan yang akan digunakan Pembuatan media PDA (Potato Dextrose Agar) Pengambilan sampel tanah dekat perakaran tanaman Cabai merah (C.
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Pengambilan sampel tanaman nanas dilakukan di lahan perkebunan PT. Great
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Pengambilan sampel tanaman nanas dilakukan di lahan perkebunan PT. Great Giant Pineapple (GGP) di Lampung Timur dan PT. Nusantara Tropical Farm, Lampung
Lebih terperinciMETODE PENELITIAN. Kehutanan dan di Laboratorium Hama dan Penyakit Tanaman Program Studi
23 METODE PENELITIAN Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilakukan di Laboratorium Bioteknologi Program Studi Kehutanan dan di Laboratorium Hama dan Penyakit Tanaman Program Studi Agroekoteknologi,
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Tabel 1 Kombinasi perlakuan yang dilakukan di lapangan
13 BAHAN DAN METODE Tempat dan waktu Penelitian ini dilaksanakan di Desa Ciburuy, Kecamatan Cigombong, Kabupaten Bogor serta di Laboratorium Bakteriologi, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian,
Lebih terperinciBAHAN. bulan Juli diremajakan. pertumbuhan. Gambar 4
14 BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilakukan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian serta di Rumah Kaca University Farm, Institut
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini akan dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan,
III. BAHAN DAN METODE 3.LTcinpat dan waktu Penelitian ini akan dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan, Rumah Kasa Fakultas Pertanian, Laboratorium Kimia Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan
Lebih terperinciII. TINJAUAN PUSTAKA. Penyakit antraknosa pada tanaman cabai disebabkan oleh tiga spesies cendawan
5 II. TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Penyakit Antraknosa Cabai Penyakit antraknosa pada tanaman cabai disebabkan oleh tiga spesies cendawan Colletotrichum yaitu C. acutatum, C. gloeosporioides, dan C. capsici (Direktorat
Lebih terperinciBAHA DA METODE Tempat dan Waktu Bahan dan Alat Metode Penelitian
BAHA DA METODE Tempat dan Waktu Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Bioteknologi Tanaman Departemen Agronomi dan Hortikultura Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor. Penelitian ini dimulai
Lebih terperinciII. MATERI DAN METODE PENELITIAN
8 II. MATERI DAN METODE PENELITIAN 1. Materi, Lokasi, dan Waktu Penelitian 1.1 Materi Penelitian 1.1.1 Bahan Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah jamur yang bertubuh buah, serasah daun, batang/ranting
Lebih terperinciKEPARAHAN PENYAKIT ANTRAKNOSA PADA CABAI (Capsicum annuum L) DAN BERBAGAI JENIS GULMA
J Agrotek Tropika ISSN 2337-4993 102 Jurnal Agrotek Tropika 1(1):102-106, 2013 Vol 1, No 1: 102 106, Januari 2013 KEPARAHAN PENYAKIT ANTRAKNOSA PADA CABAI (Capsicum annuum L) DAN BERBAGAI JENIS GULMA Kristina
Lebih terperinciTINJAUAN PUSTAKA. Adapun klasifikasi Colletotrichum gloeosporioides Penz. Sacc. menurut. : Colletotrichum gloeosporioides Penz. Sacc.
TINJAUAN PUSTAKA Biologi Penyakit Adapun klasifikasi Colletotrichum gloeosporioides Penz. Sacc. menurut Dwidjoseputro (1978) sebagai berikut : Divisio Subdivisio Kelas Ordo Family Genus Spesies : Mycota
Lebih terperinciIV. HASIL DAN PEMBAHASAN A. Kondisi Umum Tempat Pengambilan Sampel Pengambilan sampel Colletotrichum dilakukan di lahan cabai merah Kecamatan Selo
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN A. Kondisi Umum Tempat Pengambilan Sampel Pengambilan sampel Colletotrichum dilakukan di lahan cabai merah Kecamatan Selo Kabupaten Boyolali dan Kecamatan Tawangmangu Kabupaten
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE PENELITIAN. Penelitian Laboratorium dilaksanakan di Laboratorium Agroteknologi,
III. BAHAN DAN METODE PENELITIAN 3.1. Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian Laboratorium dilaksanakan di Laboratorium Agroteknologi, Universitas Medan Area. Penelitian Lapangan dilaksanakan di desa Durin
Lebih terperinciFusarium sp. ENDOFIT NON PATOGENIK
INDUKSI KETAHANAN KULTUR JARINGAN PISANG TERHADAP LAYU FUSARIUM MENGGUNAKAN Fusarium sp. ENDOFIT NON PATOGENIK Arif Wibowo, Aisyah Irmiyatiningsih, Suryanti, dan J. Widada Fakultas Pertanian, Universitas
Lebih terperinciHASIL DAN PEMBAHASAN
14 HASIL DAN PEMBAHASAN Gejala Penyakit oleh B. theobromae Penyakit yang disebabkan oleh B. theobromae pada lima tanaman inang menunjukkan gejala yang beragam dan bagian yang terinfeksi berbeda-beda (Gambar
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Lampung. Perbanyakan isolat jamur B. bassiana dilaksanakan
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE
III. BAHAN DAN METODE Penelitian I. Populasi dan Keanekaragaman Cendawan Mikoriza Arbuskular pada Lahan Sayuran dan Semak 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Sampel tanah untuk penelitian ini diambil dari
Lebih terperinciPENDAHULUAN Latar Belakang
PENDAHULUAN Latar Belakang Ditinjau dari aspek pertanaman maupun nilai produksi, cabai (Capsicum annuum L. ) merupakan salah satu komoditas hortikultura andalan di Indonesia. Tanaman cabai mempunyai luas
Lebih terperinciUJI KETAHANAN BEBERAPA GENOTIPE TANAMAN KARET TERHADAP PENYAKIT Corynespora cassiicola DAN Colletotrichum gloeosporioides DI KEBUN ENTRES SEI PUTIH
UJI KETAHANAN BEBERAPA GENOTIPE TANAMAN KARET TERHADAP PENYAKIT Corynespora cassiicola DAN Colletotrichum gloeosporioides DI KEBUN ENTRES SEI PUTIH Resistence Test of Rubber Plant Genotype by Corynespora
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Bahan dan Alat Metode Penelitian Penyiapan tanaman uji
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilakukan pada bulan Juli 2010 Maret 2011. Penelitian dilakukan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian,
Lebih terperincibio.unsoed.ac.id III. METODE PENELITIAN
III. METODE PENELITIAN A. Materi, Lokasi dan Waktu Penelitian 1. Materi Penelitian 1.1. Bahan Materi yang digunakan dalam penelitian ini adalah sampel tanah dari rizosfer tanaman Cabai merah (Capsicum
Lebih terperinciBAB III METODE PENELITIAN. eksplorasi dengan cara menggunakan isolasi jamur endofit dari akar kentang
BAB III METODE PENELITIAN 3.1 Rancangan Penelitian Jenis penelitian ini adalah penelitian eksplorasi dan eksperimen. Penelitian eksplorasi dengan cara menggunakan isolasi jamur endofit dari akar kentang
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penclitian ini telah diiaksanakan di Laboratoriuin Pcnyaki! i'umbuhan
III. BAHAN DAN METODE 3.1. Tempat dan waktu Penclitian ini telah diiaksanakan di Laboratoriuin Pcnyaki! i'umbuhan Fakultas Pertanian dan di Laboralorium Organik Fakuitas Matemalika dan llmu Pengetahuan
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Bahan Peremajaan Aktinomiset dari Kultur Penyimpanan Perbanyakan Sclerotium rolfsii dari Kultur Penyimpanan
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor (IPB) mulai Maret 2011 sampai
Lebih terperinciPENGUJIAN KONSORSIUM MIKROBA ANTAGONIS UNTUK MENGENDALIKAN PENYAKIT ANTRAKNOSA PADA CABAI MERAH BESAR (Capsicum annuum L.)
Jurnal HPT Volume 2 Nomor 4 Desember 2014 ISSN : 2338-4336 PENGUJIAN KONSORSIUM MIKROBA ANTAGONIS UNTUK MENGENDALIKAN PENYAKIT ANTRAKNOSA PADA CABAI MERAH BESAR (Capsicum annuum L.) Nugroho Sulistyo Putro,
Lebih terperinciTeknologi Pengendalian Penyakit Antraknos Pada Tanaman Cabai
Teknologi Pengendalian Penyakit Antraknos Pada Tanaman Cabai Tidak ada yang dapat memungkiri bahwa antraknos atau yang lebih dikenal dengan istilah patek adalah penyakit yang hingga saat ini masih menjadi
Lebih terperinciBAB III MATERI DAN METODE. melalui penerapan solarisasi tanah dan aplikasi agen hayati Trichoderma
19 BAB III MATERI DAN METODE 3.1. Materi Penelitian Penelitian mengenai pengendalian penyakit hawar daun pada kentang melalui penerapan solarisasi tanah dan aplikasi agen hayati Trichoderma harzianum telah
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan dan Kebun
17 III. BAHAN DAN MEODE 3.1 empat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit umbuhan dan ebun Percobaan di dalam kampus di Program Studi Agroteknologi Fakultas Pertanian,
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Tempat dan Waktu Penelitian
13 BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Ilmu dan Teknologi Benih, Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian IPB, Dramaga, Bogor untuk pengujian
Lebih terperinciBAB III METODE PENELITIAN
BAB III METODE PENELITIAN A. Metode Penelitian Penelitian ini dilakukan dengan menggunakan metode eksperimen kuantitatif. Penelitian eksperimen adalah penelitian yang dilakukan untuk mengetahui akibat
Lebih terperincibio.unsoed.ac.id MATERI DAN METODE PENELITIAN A. Materi, Lokasi dan Waktu Penelitian 1. Materi Penelitian 1.1. Bahan Penelitian
III. MATERI DAN METODE PENELITIAN A. Materi, Lokasi dan Waktu Penelitian 1. Materi Penelitian 1.1. Bahan Penelitian Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah biakan murni Hypoxylon sp. koleksi CV.
Lebih terperinciIII. METODOLOGI Waktu dan Tempat Penelitian
III. METODOLOGI 3.1. Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian ini dilakukan dari bulan Oktober 2009 - Maret 2010. Penelitian dilakukan di rumah kaca Departemen Silvikultur dan Laboratorium Penyakit Hutan
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Bahan dan Alat
11 BAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Mei sampai Desember 2011 di Laboratorium Agromikrobiologi, Balai Pengkajian Bioteknologi, BPPT PUSPIPTEK Serpong, Tangerang Selatan;
Lebih terperinciHASIL. Pengaruh Seduhan Kompos terhadap Pertumbuhan Koloni S. rolfsii secara In Vitro A B C
HASIL Pengaruh Seduhan Kompos terhadap Pertumbuhan Koloni S. rolfsii secara In Vitro Pertumbuhan Koloni S. rolfsii dengan Inokulum Sklerotia Pada 5 HSI diameter koloni cendawan pada semua perlakuan seduhan
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Metode Penelitian
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Mikologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor, dari bulan Februari sampai
Lebih terperinciMETODOLOGI. Kerapatan jenis (K)
METODOLOGI Tempat dan waktu penelitian Penelitian dilakukan di lahan bekas penambangan timah PT. Koba Tin, Koba-Bangka, dan Pusat Penelitian Sumber Daya Hayati dan Bioteknologi IPB (PPSHB IPB). Penelitian
Lebih terperinciHASIL DAN PEMBAHASAN
HASIL DAN PEMBAHASAN Kondisi Umum Benih Indigofera yang digunakan dalam penelitian ini cenderung berjamur ketika dikecambahkan. Hal ini disebabkan karena tanaman indukan sudah diserang cendawan sehingga
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan dengan ketinggian tempat + 25
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian, Medan dengan ketinggian tempat + 25 meter di atas permukaan laut pada bulan
Lebih terperinciPENGENDALIAN KIMIA DAN KETAHANAN Colletotrichum spp. TERHADAP FUNGISIDA SIMOKSANIL PADA CABAI MERAH
Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia, Vol. 18, No. 1, 2014: 41 46 PENGENDALIAN KIMIA DAN KETAHANAN Colletotrichum spp. TERHADAP FUNGISIDA SIMOKSANIL PADA CABAI MERAH CHEMICAL CONTROL AND RESISTANCE OF
Lebih terperinciHASIL DAN PEMBAHASAN
HASIL DAN PEMBAHASAN Isolasi Bakteri Endofit Asal Bogor, Cipanas, dan Lembang Bakteri endofit yang digunakan dalam penelitian ini berasal dari tiga tempat yang berbeda dalam satu propinsi Jawa Barat. Bogor,
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Pembiakan P. fluorescens dari Kultur Penyimpanan
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Bakteriologi Tumbuhan, Departemen Proteksi Tanaman, Fakultas Pertanian, Institut Pertanian Bogor mulai bulan Februari
Lebih terperinciII. TINJAUAN PUSTAKA. A. Klasifikasi dan Deskripsi Tanaman Cabai Merah (Capsicum annuum L.)
II. TINJAUAN PUSTAKA A. Klasifikasi dan Deskripsi Tanaman Cabai Merah (Capsicum annuum L.) Tanaman cabai merah (Capsicum annuum L.) merupakan tanaman sayuran yang tergolong tanaman tahunan berbentuk perdu.
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Lapang Terpadu dan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan, Fakultas Pertanian, Universtitas Lampung dari Desember
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Bahan dan Alat
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Buah mangga yang digunakan untuk bahan penelitian langsung diambil dari salah satu sentra produksi mangga, yaitu di daerah Indramayu, Kecamatan Jatibarang.
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Tempat dan Waktu
15 BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian dilaksanakan di laboratorium dan rumah kaca Hama dan Penyakit dan rumah kaca Balai penelitian Tanaman Obat dan Aromatik (BALITTRO), Bogor; pada bulan Oktober
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Bahan dan Alat Metode Penelitian
BAHAN DAN METODE 10 Waktu dan Tempat Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Ilmu dan Teknologi Benih, Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian Institut Pertanian Bogor dan Rumah Kaca Instalasi
Lebih terperinciLAMPIRAN. Biakan Jamur Colletotrichum sp
LAMPIRAN 1. Alur Kerja Antagonisme In Vitro Biakan Jamur Colletotrichum sp Diinokulasikan pada media MGMC Pada jarak 3,5 cm dari tempat Inokulum bakteri. Sebanyak 10 µl suspensi bakteri kitinolitik diteteskan
Lebih terperinciBAB III METODE PENELITIAN. kentang varietas Granola Kembang yang diambil dari Desa Sumberbrantas,
33 BAB III METODE PENELITIAN 3.1 Rancangan Percobaan Penelitian ini merupakan penelitian eksplorasi dan eksperimen yaitu dengan cara mengisolasi dan mengidentifikasi bakteri endofit dari akar tanaman kentang
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE. Waktu dan Tempat
12 BAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Percobaan dalam penelitian ini dilaksanakan pada bulan November sampai dengan Desember 2010 di Laboratorium Pasca Panen, Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas
Lebih terperinciKeterangan : Yijk = H + tti + Pj + (ap)ij + Sijk. Sijk
m. BAHAN DAN METODE 3.1. Tempat dan Waktu Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Hama Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Riau Kampus Bina Widya Jin. Bina Widya Km 12,5 Kelurahan Simpang Baru,
Lebih terperinciBab III METODE PENELITIAN. eksperimen. Penelitian eksperimen adalah penelitian yang dilakukan dengan
26 Bab III METODE PENELITIAN A. Jenis Penelitian Jenis penelitian yang dilakukan dalam penelitian ini adalah penelitian eksperimen. Penelitian eksperimen adalah penelitian yang dilakukan dengan memberikan
Lebih terperinciIII. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Juli sampai dengan Desember 2014.
III. BAHAN DAN METODE 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Juli sampai dengan Desember 2014. Isolasi dan karakterisasi penyebab penyakit dilakukan di Laboratorium Penyakit
Lebih terperinciPengaruh Waktu Inokulasi dan Jumlah Inokulum Terhadap Patogenisitas Phytophthora nicotianae pada Bibit Tembakau
Buletin N. Tanaman Hidayah Tembakau, dan T. Yulianti: Serat Waktu & Minyak inokulasi, Industri jumlah 2(2), Oktober inokulum, 2010:75 80 patogenisitas Phytophthora nicotianae, bibit tembakau ISSN: 2085-6717
Lebih terperinciII. MATERI DAN METODE
II. MATERI DAN METODE 2.1 Materi, Lokasi, dan Waktu Penelitian 2.1.1 Materi Alat yang digunakan dalam penelitian adalah cawan petri, tabung reaksi, gelas ukur, pembakar spiritus, pipet, jarum ose, erlenmeyer,
Lebih terperinciBAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Wawancara Pengamatan dan Pengambilan Contoh
21 BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilakukan di enam perkebunan buah naga di Provinsi Daerah Istimewa Yogyakarta yang terdiri dari tiga kabupaten. Kebun pengamatan di Kabupaten
Lebih terperinciI. METODE PENELITIAN. Fakultas Pertanian Universitas Lampung dari Juni 2011 sampai Januari 2012.
I. METODE PENELITIAN 1.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Lahan sekitar laboratorium Jurusan Proteksi Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Lampung dari Juni 2011 sampai Januari
Lebih terperinci