ANALISIS VARIASI NUKLEOTIDA DAERAH D-LOOP DNA MITOKONDRIA PADA SATU INDIVIDU SUKU BALI NORMAL

dokumen-dokumen yang mirip
BAB III. METODOLOGI PENELITIAN. Pengambilan sampel. Penyiapan templat mtdna dengan metode lisis sel

BAB III METODE PENELITIAN. amplifikasi daerah HVI mtdna sampel dengan menggunakan teknik PCR;

BAB III METODE PENELITIAN. Dalam penelitian ini dilakukan lima tahap utama yang meliputi tahap

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Pada penelitian ini terdapat lima tahapan penelitian yang dilakukan yaitu

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian akan diawali dengan preparasi alat dan bahan untuk sampling

BAB III METODE PENELITIAN. Secara garis besar langkah-langkah yang dilakukan dalam penelitian ini

K. Ratnayani, Sagung Chandra Yowani, dan Liangky Syane S. Jurusan Kimia FMIPA Universitas Udayana, Bukit Jimbaran ABSTRAK

3 Metodologi Penelitian

BAB II TINJAUAN PUSTAKA. Tubuh manusia tersusun atas sel yang membentuk jaringan, organ, hingga

BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB III METODE PENELITIAN Bagan Alir Penelitian ini secara umum dapat digambarkan pada skema berikut:

4 Hasil dan Pembahasan

BAB II TINJAUAN PUSTAKA. bagi sel tersebut. Disebut sebagai penghasil energi bagi sel karena dalam

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. telah banyak dilakukan sebelumnya menunjukkan bahwa fenomena munculnya

AMPLIFIKASI IN VITRO DAN IN VIVO FRAGMEN 0,4 KB D-LOOP mtdna SAMPEL FORENSIK

BAB I PENDAHULUAN. Indonesia merupakan negara dengan budaya dan suku yang beragam,

AMPLIFIKASI IN VITRO DAN IN VIVO FRAGMEN 0,4 KB D-LOOP mtdna SAMPEL FORENSIK

PCR Tanpa Isolasi DNA dari Sel Epitel Rongga Mulut

Bab III Metode Penelitian

MUTASI DAERAH D-LOOP mtdna SEL DARAH, EPITEL, DAN RAMBUT DARI INDIVIDU YANG BERBEDA

BAB II TINJAUAN PUSTAKA. Mitokondria merupakan organel yang terdapat di dalam sitoplasma.

MATERI DAN METODE. Lokasi dan Waktu. Materi. Tabel 1. Jumah Sampel Darah Ternak Sapi Indonesia Ternak n Asal Sapi Bali 2 4

VARIASI MUTASI GEN ATPase 6 mtdna MANUSIA PADA POPULASI DATARAN RENDAH

Penelitian akan dilaksanakan pada bulan Februari-Agustus 2010 di Laboratorium Zoologi Departemen Biologi, FMIPA, IPB.

POLYMERASE CHAIN REACTION (PCR)

BAB I PENDAHULUAN. Indonesia adalah negara kepulauan dengan populasi manusia yang

LAPORAN PRAKTIKUM REKAYASA GENETIKA

BAB 4 HASIL PERCOBAAN DAN PEMBAHASAN

3. METODE PENELITIAN

OPTIMASI KONSENTRASI MgCl2 DAN SUHU ANNEALING PADA PROSES AMPLIFIKASI MULTIFRAGMENS mtdna DENGAN METODA PCR

VARIAN NON-DELESI 9 PASANG BASA DNA MITOKONDRIA MANUSIA SAMPEL FORENSIK BALI

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental dengan 7 sampel dari 7

BAB II Tinjauan Pustaka

PRAKATA. Alhamdulillah syukur senantiasa penulis panjatkan kepada Allah swt., atas

BAB III METODE PENELITIAN

Metodologi Penelitian. Metode, bahan dan alat yang digunakan dalam penelitian ini akan dipaparkan pada bab ini.

ANALISA HASIL TRANSFORMASI DENGAN MENGGUNAKAN PCR KOLONI DAN RESTRIKSI

MATERI DAN METODE. Kota Padang Sumatera Barat pada bulan Oktober Amplifikasi gen Growth

BAB III METODE PENELITIAN

PRINSIP UMUM DAN PELAKSANAAN POLYMERASE CHAIN REACTION (PCR)

4.1. Alat dan Bahan Penelitian a. Alat Penelitian. No. URAIAN ALAT. A. Pengambilan sampel

BAB 4. METODE PENELITIAN

Kolokium Departemen Biologi FMIPA IPB: Ria Maria

The Origin of Madura Cattle

Bab IV Hasil dan Pembahasan

Asam Asetat Glacial = 5,7 ml EDTA 0,5 M ph 8.0 = 10 ml Aquades ditambahkan hingga volume larutan 100 ml

ANALISIS URUTAN NUKLEOTIDA DAERAH HIPERVARIABEL I (HVI) DNA MITOKONDRIA PADA SUKU SUNDA UNTUK MENENTUKAN MOTIF POPULASINYA

Profil Genetik Daerah Hipervariabel I (HVI) DNA Mitokondria pada Populasi Dataran Tinggi. Gun Gun Gumilar, Ridha Indah Lestari, Heli Siti HM.

BAB III METODE PENELITIAN

BAB 3 PERCOBAAN 3.1 Bahan 3.2 Alat

FAKULTAS BIOLOGI LABORATORIUM GENETIKA & PEMULIAAN INSTRUKSI KERJA UJI

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

2015 IDENTIFIKASI KANDIDAT MARKER GENETIK DAERAH HIPERVARIABEL II DNA MITOKONDRIA PADA EMPAT GENERASI DENGAN RIWAYAT DIABETES MELITUS TIPE

Pembuatan Media Kultur Bakteri Pemanenan sel bakteri. Isolasi DNA kromosom bakteri. Kloning DNA

BAB III METODE PENELITIAN

IDENTIFIKASI FRAGMEN HV1 DNA MITOKONDRIA INDIVIDU DATARAN RENDAH DAN DATARAN TINGGI ABSTRACT

PENGANTAR. Latar Belakang. Itik yang dikenal saat ini adalah hasil penjinakan itik liar (Anas Boscha atau

Studi Keanekaragaman Nukleotida Gen Car A beberapa Species Salmonella dengan Teknologi PCR

BAB II. TINJAUAN PUSTAKA

BAB 4 HASIL PERCOBAAN DAN BAHASAN. Oligonukleotida sintetis daerah pengkode IFNα2b sintetis dirancang menggunakan

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Jenis penelitian yang digunakan adalah penelitian dasar dengan metode

ISOLASI DNA DAN AMPLIFIKASI FRAGMEN D-LOOP MITOKONDRIAL PADA IKAN Ompok hypophthalmus (Bleeker, 1846) DARI SUNGAI KAMPAR PROVINSI RIAU

KATAPENGANTAR. Pekanbaru, Desember2008. Penulis

BIO306. Prinsip Bioteknologi

LAPORAN PRAKTIKUM BIOTEKNOLOGI PERTANIAN ISOLASI DNA

III. BAHAN DAN METODE

LAPORAN PRAKTIKUM REKAYASA GENETIKA

Laporan Praktikum Isolasi DNA, Teknik PCR dan Elektroforesis Agarose

MATERI DAN METODE. Materi

II. BAHAN DAN METODE

Teknik-teknik Dasar Bioteknologi

Indonesian Journal of Legal and Forensic Sciences 2012; 2(3):

HASIL DAN PEMBAHASAN. Uji Kualitatif dan Kuantitatif Hasil Isolasi RNA

MATERI DAN METODE. Materi. Tabel 1. Sampel Darah Sapi Perah dan Sapi Pedaging yang Digunakan No. Bangsa Sapi Jenis Kelamin

FAKULTAS BIOLOGI LABORATORIUM GENETIKA & PEMULIAAN INSTRUKSI KERJA UJI

BAB II KAJIAN PUSTAKA. sel pada tubuh memiliki DNA yang sama dan sebagian besar terdapat pada

LAMPIRAN. Lampiran 1. Deskripsi Pembuatan Larutan Stok dan Buffer

Laporan Praktikum Isolasi DNA, Teknik PCR dan Elektroforesis Agarose

Gambar 2.1 udang mantis (hak cipta Erwin Kodiat)

HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB 3 PERCOBAAN. Alat elektroforesis agarosa (Biorad), autoklaf, cawan Petri, GeneAid High Speed Plasmid

Lampiran 1 Ekstraksi dan isolasi DNA dengan metode GeneAid

1. Kualitas DNA total Udang Jari (Metapenaeus elegans De Man, 1907) Hasil. Tangkapan dari Laguna Segara Anakan, Cilacap, Jawa Tengah dengan

Hasil dan Pembahasan

MATERI DAN METODE. Lokasi dan Waktu. Materi

TUGAS TERSTRUKTUR BIOTEKNOLOGI PERTANIAN VEKTOR DNA

II. BAHAN DAN METODE. Betina BEST BB NB RB. Nirwana BN NN RN. Red NIFI BR NR RR

HASIL DAN PEMBAHASAN. divisualisasikan padaa gel agarose seperti terlihat pada Gambar 4.1. Ukuran pita

BAB III METODE PENELITIAN. Jenis penelitian yang dilakukan termasuk dalam penelitian dasar yang. dilakukan dengan metode deskriptif (Nazir, 1998).

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

DASAR BIOTEKNOLOGI TANAMAN

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN. Berdasarkan hasil penelitian yang telah dilakukan dari empat primer yang

BAB III BAHAN DAN CARA KERJA. Penelitian dilakukan di Laboratorium Institute of Human Virology and

BAB 4 HASIL PERCOBAAN DAN BAHASAN

LAMPIRAN. Lampiran 1. Pembuatan Larutan Stok dan Buffer

HASIL DAN PEMBAHASAN. Amplifikasi Daerah D-loop M B1 B2 B3 M1 M2 P1 P2 (-)

METODE. Materi. Tabel 1. Jumlah Sampel DNA yang Digunakan dan Asal Pengambilan Sampel Darah.

ABSTRAK. OPTIMASI AMPLIFIKASI GEN flic DENGAN METODE PCR UNTUK DETEKSI Salmonella typhi GALUR INDONESIA

MATERI DAN METODE. Materi

BAB 3 METODOLOGI PENELITIAN

Transkripsi:

ISSN 1907-9850 ANALISIS VARIASI NUKLEOTIDA DAERAH D-LOOP DNA MITOKONDRIA PADA SATU INDIVIDU SUKU BALI NORMAL Ketut Ratnayani, I Nengah Wirajana, dan A. A. I. A. M. Laksmiwati Jurusan Kimia FMIPA Universitas Udayana, Bukit Jimbaran ABSTRAK DNA mitokondria (mtdna) manusia memiliki tingkat polimorfisme yang lebih tinggi dibandingkan DNA inti, terutama pada daerah D-Loop yang merupakan daerah non coding dan memiliki polimorfisme tertinggi dalam genom mitokondria. Analisis variasi urutan nukleotida daerah D-Loop dapat digunakan untuk menentukan identitas individu atau etnis tertentu serta hubungan kekerabatan maternal. Penelitian ini bertujuan untuk menentukan varian nukleotida pada individu suku Bali yang nantinya dapat digunakan sebagai pijakan dalam menentukan pola genetik mtdna suku Bali dalam skala yang lebih besar. Untuk tujuan tersebut maka telah dilakukan penentuan urutan nukleotida daerah D-Loop mtdna satu individu suku Bali normal menggunakan sampel sel epitel rongga mulut. Dalam rangka penentuan urutan nukleotida tersebut, maka telah dilakukan serangkaian kegiatan sebagai berikut : 1). Isolasi DNA mitokondria sampel, 2). Amplifikasi daerah D-Loop mtdna dengan teknik PCR, 3). Sekuensing dan analisis urutan nukleotida hasil sekuensing. Penelitian ini telah berhasil melakukan amplifikasi PCR terhadap fragmen berukuran 443 pb daerah D-Loop mtdna dan menentukan urutan nukleotida sebanyak 402 pb dari satu individu suku Bali normal tersebut. Penelitian ini juga berhasil menemukan varian atau morf yang berbeda dengan urutan Cambridge atau Anderson yaitu ditemukan 6 jenis varian normal pada posisi yang berbeda yaitu varian 16223C T, 16249T C, 16259C T, 16278C T, 16316A G, 16375C A, serta ditemukan delesi nukleotida T pada posisi 16362. Kata Kunci : DNA, mitokondria, D-Loop, Varian, Normal ABSTRACT Human mitochondrial DNA (mtdna) has higher polimorfism level than nucleous genom, especially in the D-Loop region, which is a non coding region and the most polymorfic region in the mitochondrial genom. The analysis of variation of nucleotide sequence of D-Loop region can be used to determine the individual or ethnic identity and also maternal familiar relationship. The research aims to determine nucleotide variant on Balinese individue, which can be used as data base in determination of mtdna genetical profile of Balinese ethnic in a bigger scale. To achieve the aims of the research, way the nucleotide sequence of one normal Balinese individue using the epithelia cells in the saliva. The methods were :1) the isolation of sample mtdna, 2) the amplification of the D- Loop region of mtdna by PCR, 3) sequencing and analysis of nucleotides sequence. The 0,4 kb fragment of the D-loop region mtdna of the sample were successfully amplified, and sequenced of 402 pb. The research found 6 new variants or morfe different from Cambridge or Anderson sequence : variant 16223C T, 16249T C, 16259C T, 16278C T, 16316A G, 16375C A. The research also found the deletion of T nucleotide on position 16362. Keywords: mitochondrial DNA, D-Loop,Varian, Norma 7

JURNAL KIMIA 1(1), JANUARI 2007 : 7-14 PENDAHULUAN DNA mitokondria (mtdna) manusia memiliki sejumlah sifat genetik khas yang membedakannya dari genom inti. Pada mamalia DNA mitokondria hanya diturunkan lewat jalur ibu tanpa rekombinasi. MtDNA pada sel anak seluruhnya disumbangkan oleh ibu dan sperma sama sekali tidak berkontribusi (Campbell, 1996). Keunikan sistem penurunan yang menarik ini telah dimanfaatkan dalam berbagai bidang yaitu penentuan hubungan kekerabatan, studi evolusi dan migrasi global manusia modern, bidang forensik dan identifikasi penyakit genetik (Wallace, 1997). Keunikan lain dari mtdna yaitu memiliki laju mutasi yang lebih tinggi dibandingkan dengan DNA inti yaitu laju mutasi menetap gen-gen mtdna 10-17 kali lebih cepat daripada yang terlibat dalam fosforilasi oksidatif yang dikode oleh DNA inti (Wallace, 1997). MtDNA berbeda dengan DNA inti pada lokasi, urutan, kuantitas dalam sel, dan cara pewarisannya (dari orang tua ke anak). Sel hanya memiliki satu inti sel yang mengandung 2 set kromosom, yaitu satu set paternal dan satu set maternal, yang mana masing-masing set terdiri dari 23 kromosom. Akan tetapi sel dapat mengandung ratusan hingga ribuan mitokondria dan masing-masing mitokondria dapat mengandung beberapa kopi mtdna. DNA inti memiliki jumlah basa yang lebih banyak dibandingkan mtdna, tetapi molekul mtdna terdapat dalam jumlah kopi yang jauh lebih banyak daripada molekul DNA inti. Karakteristik mtdna ini sangat berguna pada situasi di mana jumlah DNA dalam sampel ini sangat terbatas, seperti sampel-sampel yang diambil dari kasus kriminal yaitu rambut, tulang, gigi, cairan tubuh (air liur, air mani, darah) (Moore, 1999). Publikasi urutan lengkap genom DNA mitokondria manusia yang berukuran 16.569 pb yang dikenal sebagai urutan Cambridge (Anderson, et al., 1981) sampai saat ini telah menjadi urutan acuan dalam berbagai studi mtdna manusia (Marzuki, et al., 1991). Genom mitokondria yang terdiri atas gen-gen penyandi rrna 12S dan 16S, 22 trna, dan 13 protein sub unit kompleks enzim rantai respirasi, juga memilki urutan nukleotida non penyandi yang disebut dengan daerah D-Loop. Keunikan dari daerah D-Loop adalah memiliki tingkat polimorfisme yang tertinggi dalam mtdna. Daerah D-Loop bersifat sangat variabel dan mempunyai laju evolusi lima kali lebih cepat dibandingkan daerah lain dalam genom mitokondria. Noer dkk pada tahun 1994 menemukan adanya polimorfisme pada daerah D-Loop mtdna penduduk Indonesia, yaitu ditemukan tiga morf dari tiga famili yang berasal dari tiga daerah yang berbeda (Noer, et al., 1994). Gaffar pada tahun 1998 telah menemukan 24 varian normal mtdna daerah D-Loop dari 10 individu Indonesia. Berdasarkan hal tersebut, sangat menarik melakukan penelitian guna menentukan adanya morf atau varian baru pada individu suku Bali normal (yang berbeda dengan urutan referensi yaitu urutan Cambridge atau Urutan Anderson) yang nantinya dapat digunakan sebagai pijakan dalam menentukan pola genetik mtdna suku Bali dalam skala yang lebih besar. Untuk tujuan tersebut maka telah dilakukan penentuan urutan nukleotida daerah D-Loop mtdna satu individu suku Bali normal menggunakan sampel sel epitel rongga mulut. Dalam rangka penentuan urutan nukleotida tersebut, maka akan dilakukan serangkaian kegiatan sebagai berikut : 1). Isolasi DNA mitokondria sampel, 2). Amplifikasi daerah D-Loop mtdna dengan teknik PCR, 3). Sekuensing dan analisis urutan nukleotida hasil sekuensing. 8

ISSN 1907-9850 MATERI DAN METODE Strategi penelitian menerapkan amplifikasi PCR dan sekuensing terhadap fragmen berukuran 0,4 kb (443 pb) daerah D-Loop DNA mitokondria menggunakan sampel sel epitel rongga mulut dari satu individu suku Bali normal. Karakteristik sampel Untuk mencapai tujuan penelitian maka digunakan sampel sel epitel rongga mulut dari satu individu suku Bali dengan karakteristik seperti tampak pada Tabel 1. Tabel 1. Data karakteristik sampel Kode Sampel A1 Daerah Asal Buleleng, Bali Jenis Kelamin Laki-laki Usia 44 Tahun Penanganan Sampel Tahap awal penelitian adalah penyiapan templat DNA untuk proses PCR. Templat DNA yang akan diamplifikasi berasal dari hasil lisis sel epitel rongga mulut manusia. Sel epitel rongga mulut diperoleh dengan cara berkumur selama 1 menit dengan 15 ml aquades steril dan diperoleh suspensi hasil kumur yang disimpan dalam botol steril. Suspensi tersebut dipekatkan dengan cara sentrifugasi dan disimpan dalam tabung eppendorf 1,5 ml pada suhu 20 o C. Templat DNA dibuat dengan melisis 20 µl sampel hasil pemekatan dengan 20 µl buffer lisis 10x (50 mm Tris-Cl ph 8,5; 1 mm EDTA ph 8,5 dan 0,5%(v/v) Tween 20), 2 µl proteinase K (20 mg/ml), ditambah ddh 2 O sampai total volume 200 µl. Selanjutnya campuran tersebut diinkubasi pada suhu 50 o C selama 1 jam dan diinaktivasi pada 95 o C selama 3 menit. Hasil lisis kemudian disentrifugasi dengan kecepatan maksimal selama 30 detik, dan supernatannya digunakan sebagai templat PCR. Amplifikasi PCR Reaksi PCR menggunakan 10 µl templat, 1,25 unit enzim Taq DNA polymerase, 200 µmol campuran dntp, primer M1 dan M2 (Noer, et al., 1991) masing-masing 20 pmol, buffer amplifikasi 10x dan ddh 2 O sampai volume total 50 µl. Proses PCR dilakukan dalam 30 siklus, setiap siklus terdiri atas tahap denaturasi suhu 95 o C selama 1 menit, tahap annealing suhu 55 o C selama 1 menit dan tahap polimerisasi suhu 72 o C selama 3 menit. Proses PCR menggunakan alat DNA Thermal Cycler buatan Perkin Elmer. Hasil PCR dianalisis dengan elektroforesis gel agarose 1%(b/v) menggunakan penanda DNA λ/hindiii dan plasmid puc 19 yang dipotong dengan enzim restriksi HinfI (puc/hinfi). Sekuensing Dengan Metode Dideoksi Sanger Proses sekuensing dilakukan menurut prosedur ABI PRISM DNA Sequensing (Perkin Elmer, 1995). Reaksi metoda dye terminator ini meliputi beberapa tahap, yaitu penyiapan templat DNA, proses PCR, pemurnian DNA menggunakan kolom sephadex G-50, elektroforesis gel akrilamid, pembacaan electroforegram dan analisis hasil sekuensing. Pembacaan hasil elektroforesis dilakukan secara otomatis oleh alat ABI PRISM DNA Sequencer. Analisis Hasil Urutan Nukleotida Hasil pembacaan sekuensing berupa elektroforegram hasil scanner terhadap fragmen-fragmen yang ada dalam gel poliakrilamid. Tiap nukleotida menghasilkan puncak dengan warna yang berbeda pada elektroforegram yaitu nukleotida A berwarna hijau, nukleotida G berwarna 9

JURNAL KIMIA 1(1), JANUARI 2007 : 7-14 hitam, nukleotida C berwarna hijau, dan nukleotida T berwarna merah. Analisis hasil urutan nukleotida untuk penentuan adanya varian atau morf baru dibandingkan dengan urutan Anderson atau urutan Cambridge dilakukan dengan menggunakan program DNA-STAR. dihasilkan terletak pada posisi di bawah pita 1 kb standar λ/hindiii. 1 2 3 4 5 HASIL DAN PEMBAHASAN Hasil PCR Tahap pertama dalam proses PCR adalah penyiapan templat PCR melalui proses lisis sel epitel rongga mulut menggunakan bufer lisis yang dimodifikasi. Proses lisis sederhana yang diterapkan ternyata mampu menghasilkan lisat sel yang siap untuk digunakan sebagai templat PCR tanpa melalui proses pemurnian dan dapat diperoleh hasil PCR yang reprodusibel. Untuk mengamplifikasi daerah D-Loop DNA mitokondria yang diharapkan maka dalam penelitian ini digunakan primer M 1 dan M 2 (Marzuki et al., 1991) yang bersesuaian dengan nukleotida 15978 sampai dengan 16420 pada urutan Cambridge sehingga menghasilkan fragmen berukuran 443 pb. Proses PCR menggunakan kedua primer tersebut berhasil memperoleh satu pita terang berukuran 443 pb seperti tampak pada Gambar 1. Munculnya satu pita ini menunjukkan bahwa pasangan primer yang digunakan bersifat spesifik hanya menempel pada posisi yang diharapkan (pada kondisi annealing yang digunakan). Pada Gambar 1 terbukti bahwa pita 443 pb atau 0,4 kb produk PCR yang Gambar 1. Elektroforegram hasil PCR pada kondisi annealing 48 o C : (1) marker, (2) Kontrol Positif, dan (5) Kontrol Negatif. Tidak munculnya pita pada kontrol negatif yang tidak mengandung templat mtdna menunjukkan bahwa hasil PCR yang diperoleh bukan berasal dari kontaminan. Sekuensing Untuk penentuan urutan nukleotida produk PCR yang berukuran 443 pb maka dalam reaksi sekuensing digunakan primer M1, penelitian ini telah berhasil menentukan urutan nukleotida daerah D-Loop mtdna dari individu tersebut sebanyak 402 pb seperti terlihat pada Tabel 2., sedangkan elektroforegram hasil sekuensing terlihat pada Gambar 2. 10

ISSN 1907-9850 Tabel 2. Urutan Nukleotida Daerah D-Loop mtdna Sampel A1. 15998 16008 16018 16028 16038 A A G A T T C T A A T T T A A A C T A T T C T C T G T T C T T T C A T G G G G A A G C A G A T T T G 16048 16058 16068 16078 16088 G G T A C C A C C C A A G T A T T G A C T C A C C C A T C A A C A A C C G C T A T G T A T T T C G T 16098 16108 16118 16128 16138 A C A T T A C T G C C A G C C A C C A T G A A T A T T G T A C G G T A C C A T A A A T A C T T G A C 16148 16158 16168 16178 16188 C A C C T G T A G T A C A T A A A A A C C C A A T C C A C A T C A A A A C C C C C T C C C C A T G C 16198 16208 16218 16228 16238 T T A C A A G C A A G T A C A G C A A T C A A C C T T C A A C T A T C A C A C A T C A A C T G C A A 16248 16258 16268 16278 16288 C C C C A A A G C C A T C C C T C A C C C A C T A G G A T A T C A A C A A A C C T A C T C A C C C T 16298 16308 16318 16328 16338 T A A C A G T A C A T A G T A C A T G A A G C C A T T T A C C G T A C A T A G C A C A T T A C A G T 16348 16358 16368 16378 16388 C A A A T C C C T T C T C G - C C C C A T G G A T G A A C C C C C T C A G A T A G G G G T C C C T T 16398 G A C Gambar 2. Elektroforegram hasil sekuensing sampel A1 dengan primer M1 11

JURNAL KIMIA 1(1), JANUARI 2007 : 7-14 Hasil analisis homologi Hasil analisis homologi urutan nukleotida kedua individu terhadap urutan Anderson atau Cambridge sebagai urutan referensi (Tabel 3.), menunjukkan bahwa ditemukan 6 jenis varian atau morf yang berbeda dengan urutan Anderson yaitu varian 16223C T, 16249T C, 16259C T, 16278C T, 16375C A, serta ditemukan delesi nukleotida T pada posisi 16362.(Tabel 4.) Tabel 3. Analisis Homologi Urutan Nukleotida Sampel A1 Terhadap Urutan Anderson Posisi 15998 16008 16018 16028 16038 Anderson A A G A T T C T A A T T T A A A C T A T T C T C T G T T C T T T C A T G G G G A A G C A G A T T T G A1 A A G A T T C T A A T T T A A A C T A T T C T C T G T T C T T T C A T G G G G A A G C A G A T T T G 16048 16058 16068 16078 16088 Anderson G G T A C C A C C C A A G T A T T G A C T C A C C C A T C A A C A A C C G C T A T G T A T T T C G T A1 G G T A C C A C C C A A G T A T T G A C T C A C C C A T C A A C A A C C G C T A T G T A T T T C G T 16098 16108 16118 16128 16138 Anderson A C A T T A C T G C C A G C C A C C A T G A A T A T T G T A C G G T A C C A T A A A T A C T T G A C A1 A C A T T A C T G C C A G C C A C C A T G A A T A T T G T A C G G T A C C A T A A A T A C T T G A C 16148 16158 16168 16178 16188 Anderson C A C C T G T A G T A C A T A A A A A C C C A A T C C A C A T C A A A A C C C C C T C C C C A T G C A1 C A C C T G T A G T A C A T A A A A A C C C A A T C C A C A T C A A A A C C C C C T C C C C A T G C 16198 16208 16218 16228 16238 Anderson T T A C A A G C A A G T A C A G C A A T C A A C C C T C A A C T A T C A C A C A T C A A C T G C A A A1 T T A C A A G C A A G T A C A G C A A T C A A C C T T C A A C T A T C A C A C A T C A A C T G C A A 16248 16258 16268 16278 16288 Anderson C T C C A A A G C C A C C C C T C A C C C A C T A G G A T A C C A A C A A A C C T A C C C A C C C T A1 C C C C A A A G C C A T C C C T C A C C C A C T A G G A T A T C A A C A A A C C T A C T C A C C C T 16298 16308 16318 16328 16338 Anderson T A A C A G T A C A T A G T A C A T A A A G C C A T T T A C C G T A C A T A G C A C A T T A C A G T A1 T A A C A G T A C A T A G T A C A T G A A G C C A T T T A C C G T A C A T A G C A C A T T A C A G T 16348 16358 16368 16378 16388 Anderson C A A A T C C C T T C T C G T C C C C A T G G A T G A C C C C C C T C A G A T A G G G G T C C C T T A1 C A A A T C C C T T C T C G - C C C C A T G G A T G A A C C C C C T C A G A T A G G G G T C C C T T Anderson 16398 A1 G A C Keterangan : Huruf dicetak tebal menunjukkan adanya varian nukleotida. 12

ISSN 1907-9850 Tabel 4. Data varian normal daerah D-Loop mtdna terhadap urutan Anderson yang ditemukan pada sampel A1 Posisi Nukleotida 1 1 1 1 1 1 1 6 6 6 6 6 6 6 2 2 2 2 3 3 3 2 4 5 7 1 6 7 3 9 9 8 6 2 5 d Varian Nukleotida C T C C A e C l T C T T G e A s i T Urutan Cambridge C T C C A T C Total varian per sampel Sampel A1 T C T T G - A = 6 Dari keenam jenis varian yang ditemukan pada sampel, dua jenis varian yaitu varian 16223C T dan 16278C T sudah pernah ditemukan oleh peneliti lain pada manusia Indonesia dari suku atau daerah yang berbeda. Varian 16223 C T ditemukan pada individu suku Sunda, Kalimantan selatan (Banjarmasin), Sulawesi Utara (Gorontalo) dan Maluku (Ternate) oleh Gaffar pada tahun 1998 dan Rachmayanti pada tahun 2000. Sedangkan varian 16278 C T ditemukan pada suku Sunda oleh Rachmayanti pada tahun 2000. Simpulan SIMPULAN DAN SARAN 1. Fragmen DNA berukuran 443 pb daerah D-Loop DNA mitokondria yang terletak pada daerah 15978-16420 mtdna dari satu individu suku Bali telah berhasil diamplifikasi dengan teknik PCR menggunakan primer M 1 dan M 2. 2. Proses sekuensing dengan metoda dideoksi Sanger menggunakan primer M1 terhadap hasil PCR berhasil membaca urutan nukleotida sebanyak 402 pb. 13

JURNAL KIMIA 1(1), JANUARI 2007 : 7-14 3. Hasil studi homologi urutan nukleotida kedua individu dari satu individu suku Bali terhadap urutan Cambridge atau Anderson, menemukan 6 jenis varian nukleotida pada posisi yang berbeda yaitu varian 16223C T, 16249T C, 16259C T, 16278C T, 16375C A, serta ditemukan delesi nukleotida T pada posisi 16362. Saran Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut untuk menentukan apakah diantara keenam varian yang ditemukan ada yang merupakan varian spesifik untuk Suku Bali UCAPAN TERIMA KASIH Melalui kesempatan ini, penulis menyampaikan terima kasih kepada semua pihak yang mendukung sehingga penelitian ini dapat berjalan sebagaimana mestinya, khususnya kepada Ibu Ati dan Bapak George dari Pusat Bioteknologi ITB atas bantuan dan kerjasamanya. DAFTAR PUSTAKA mitochondrial genome, Nature, 290, 457-465. Gaffar, S., 1998, Varian Normal Daerah D- Loop DNA mitokondria 10 Individu Indonesia, Tesis Magister, Program Magister Kimia ITB. Marzuki, S., et al, 1991, Normal variant of human mithocondrial DNA and translations product : The building of a reference data base, Human Genetics, 88, 139-145. Moore, J.M., Isenberg, A.R., 1999, Mitochondrial DNA Analysis at the FBI Laboratory, Forensic Science Communication, Vol. I, Number 2. Noer, A.S., dan Gustiananda, M., 1997, PCR tanpa isolasi DNA dari sel epitel rongga mulut, JMS, 2, No. 1., 35 45. Noer, A.S., et al, 1994, Analisis variasi urutan nukleotida D-loopmtDNA manusia dari beberapa daerah Indonesia, Proc. 1 st joint seminar on chemistry UKM-ITB, Malaysia,. Rachmyanti, Y., 2000, Urutan Nukleotida 443 pb daerah D-Loop DNA mitokondria individu-individu segaris keturunan ibu, Tesis Magister, Program Magister Kimia, ITB. Anderson, S., et al, 1981, Sequence and organization of the human 8