PENGGUNAAN SPWANPRIM UNTUK MERANGSANG OVULASI PADA IKAN PATIN (Pangasionodon hypothalmus) MUHAMMAD AHYA RAFIUDDIN SKRIPSI

Transkripsi

1 PENGGUNAAN SPWANPRIM UNTUK MERANGSANG OVULASI PADA IKAN PATIN (Pangasionodon hypothalmus) MUHAMMAD AHYA RAFIUDDIN SKRIPSI DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2010

2 PENGGUNAAN SPWANPRIM UNTUK MERANGSANG OVULASI PADA IKAN PATIN (Pangasionodon hypothalmus) MUHAMMAD AHYA RAFIUDDIN SKRIPSI sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Perikanan pada Program Mayor Teknologi dan Manajemen Perikanan Budidaya Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR

3 SKRIPSI Judul Sripsi : PENGGUNAAN SPWANPRIM UNTUK MERANGSANG OVULASI PADA IKAN PATIN (Pangasionodon hypothalmus) Nama Mahasiswa : Muhammad Ahya Rafiuddin Nomor Pokok : C Menyetujui, Pembimbing I, Pembimbing II, Dr. Ir. Agus Oman Sudrajat, M. Sc Ir. Harton Arfah, M.Si NIP NIP Mengetahui Dekan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Prof. Dr. Ir. Indra Jaya, M.Sc NIP Tanggal lulus : 3

4 KATA PENGANTAR Puji dan syukur hanya dipanjatkan kepada Allah atas segala karunia sehingga karya ilmiah ini dapat diselesaikan dengan baik. Penelitian ini dilakukan mulai Oktober 2009 hingga April 2010 dengan judul penggunaan spawnprim untuk merangsang ovulasi pada ikan patin (Pangasionodon hypothalmus) pada Laboratorium Pengembangbiakkan dan Genetika Ikan. Penulis mengucapkan terima kasih kepada Orang tua; Drs. (Vet). Muhammad Alifuddin, M.Si (alm), semoga amal ibadah diterima Allah dan ilmu yang telah diberikan bermanfaat untuk kemajuan ilmu perikanan dan Mahipal atas segala doa, kasih sayang dan dukungan selama ini. Kepada Dr. Ir. Agus Oman Sudrajat, M.Sc dan Ir. Harton Arfah, M.Si yang telah membimbing dari awal penelitian hingga selesai. Ir. Irzal Effendie, M.Si., yang telah bersedia menjadi dosen tamu pada ujian sidang dan masukkannya sebagai perbaikkan skripsi ini. Ir. Hj. Yani Hadiroseyani, MM. Keluarga besar Agung Widodo dan Chairul Muluk, Ph.D atas segala bantuan dan masukkannya selama menjalankan kuliah. Staf pengajar, pegawai dan laboran Departemen Budidaya Perairan atas dukungan serta bantuannya. Yayasan Karya Salemba Empat atas bantuan beasiswa selama menempuh pendidikan. Dewi Ratih Novani, Giri Maruto D., S.Pi, Wawan Gunawan, Irus Rustandi, Ino Irawan, yang telah membantu dalam penyelesaian penelitian ini, terima kasih atas pinjaman induknya. Rekan satu penelitian Rezi Hidayat dan Firman Ramdhani yang telah membantu penelitian ini. Teman-teman BDP 41 (Dodi, Sahel, Firman), 42 (Galih A.), 43 (Agung, Prana, Darmawan, Dadang), 44, 45 (Rima Khasanawati S. Pogram); yang telah membantu dalam penyelesaian skripsi ini. Semoga karya tulis ilmiah ini bermanfaat. Bogor, Agustus 2010 Penulis, 4

5 RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan di Bogor pada tanggal 30 Mei 1989 sebagai anak kedua dari tiga bersaudara dari pasangan Drs. (Vet) Muhammad Alifuddin, M.Si (alm) dan Mahipal. Penulis telah menyelesaikan berbagai jenjang pendidikan, diantaranya pendidikan sekolah dasar diselesaikan di SDN I Leuwiliang, pada tahun Selanjutnya penulis meneruskan pendidikan di SLTPN I Leuwiliang pada tahun Pendidikan menengah atas diselesaikan di SMUN I Leuwiliang dan lulus pada tahun Penulis diterima di Institut Pertanian Bogor (IPB) pada tahun 2006 melalui jalur SPMB (Seleksi Penerimaan Mahasiswa Baru) dan pada tahun berikutnya memilih mayor Teknologi dan Manajemen Perikanan Budidaya, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Selama masa perkuliahan, penulis pernah aktif menjadi anggota Badan Semi Otonom FKM-C (Forum keluarga Muslim) dan HIMAKUA periode Penulis juga pernah menjadi asisten pada mata kuliah Dasar-Dasar Akuakultur pada tahun ajaran dan , asisten Dasar-Dasar Mikrobiologi Akuatik pada tahun ajaran , Dasar-Dasar Genetika Ikan pada tahun ajaran , dan asisten Pendidikan Agama Islam tahun ajaran pada program sarjana dan pada program diploma menjadi asisten pada mata kuliah Teknik Pengembangbiakkan Ikan dan Fisiologi Reproduksi Biota Air pada tahun ajaran untuk program reguler dan saat ini menjadi asisten pada mata kuliah Budidaya Ikan Hias pada program diploma. Pada tahun 2007, penulis pernah mengikuti Praktek kerja Lapang pembesaran udang di Tambak Pinang Gading, Lampung. Pada tahun 2008, Praktek Kerja Lapang dilakukan di Balai Besar Budidaya Air Tawar Sukabumi pada komoditas lele, nila, dan gurame. Pembenihan ikan bawal di Ben s Farm di Cibatok pada tahun 2009 dan untuk menyelesaikan mata kuliah Praktek Lapang Akuakultur dilakukan di Isaku Koi Farm, Blitar pada tahun Tugas akhir dalam pendidikan tinggi diselesaikan dengan menulis skripsi yang berjudul PENGGUNAAN SPWANPRIM UNTUK MERANGSANG OVULASI PADA IKAN PATIN (Pangasionodon hypothalmus) 5

6 DAFTAR ISI Halaman DAFTAR TABEL... iii I. PENDAHULUAN... 1 II. BAHAN DAN METODE Metode Penelitian Tahap Persiapan Persiapan Wadah Pemeliharaan Ikan Uji Pembuatan Larutan Premix Larutan stok Anti Dopamin (AD) Larutan stok Aromatase Inhibitor (AI) Larutan Premix (Spawnprim) Seleksi Ikan Uji Tahap Perlakuan Penyuntikan Larutan Premix Pemijahan Tahap Pengamatan Tingkat keberhasilan dan Lama Waktu Ovulasi Diameter Telur Derajat Penetasan (Hatching Rate) Tingkat Kelangsungan Hidup (Survival Rate) Analisis Data... 7 III. HASIL DAN PEMBAHASAN Hasil Pembahasan IV. KESIMPULAN DAN SARAN DAFTAR PUSTAKA

7 DAFTAR TABEL Halaman 1. Kinerja reproduksi ikan patin betina yang disuntik dengan spawnprim Perkembangan diameter telur ikan patin sebelum dan sesudah penyuntikkan Hasil penghitungan harga spawnprim dan penghematan dibandingkan dengan ovaprim

8 SURAT PENYATAAN MENGENAI SKRIPSI DAN SUMBER INFORMASI Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi yang berjudul : PENGGUNAAN SPAWNPRIM DALAM MERANGSANG OVULASI PADA IKAN PATIN (Pangasionodon hypothalmus) Adalah benar merupakan hasil karya yang belum diajukan dalam bentuk apa pun kepada perguruan tinggi mana pun. Semua sumber data dan informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam daftar pustaka di bagian akahir skripsi ini. Bogor, Agustus 2010 Muhammad Ahya Rafiuddin C

9 ABSTRAK MUHAMMAD AHYA RAFIUDDIN. Penggunaan spawnprim dalam merangsang OVULASI pada ikan patin (Pangasionodon hypothalmus). Dibimbing oleh Agus Oman Sudrajat dan Harton Arfah. Akuakultur merupakan kegiatan budidaya ikan yang memiliki prospek. Diantara ikan yang dibudidayakan, ikan patin (Pangasionodon hypothalmus) merupakan ikan yang memiliki prospek budidaya yang cerah pada kegiatan pembenihan. Namun demikian, pemijahan ikan patin hanya dapat dilakukan dengan cara pemijahan buatan dengan rangsangan hormon. Aromatase inhibitor (AI) telah diketahui dapat mempercepat proses pematangan gonad pada ikan. Kombinasi aromatase inhibitor (AI), antidopamin (AD), dan LHRHa telah digunakan untuk mempercepat proses pematangan gonad akhir. Penggunaan AI dimaksudkan untuk lebih cepat pematangan akhir dan juga sebagai pengganti komponen LHRHa. Dalam penelitian ini, berbagai dosis LHRH 0, 5, 10, 15 µg/ml dikombinasikan dengan AI dan AD, yang kemudian disebut Spawnprim A, B, C, dan D, kemudian disuntikkan ke ikan dengan dosis 0,7 ml/kg ikan. Ovaprim telah digunakan sebagai kontrol positif dan larutan fisiologis sebagai kontrol negatif. Ikan disuntik dengan Human Chorionic Gonadotropin (HCG) dengan dosis 0,3 ml/kg ikan, 24 jam sebelum disuntik dengan spawnprim atau ovaprim. Ovulasi telah diamati dengan cara pemijahan secara buatan dengan cara distripping. Hasil menunjukkan bahwa ikanikan yang disuntik dengan spawnprim telah dapat ovulasi dengan kualitas telur yang baik pada waktu 14 jam setelah penyuntikkan atau 2 jam terlambat dibandingkan dengan ovaprim. Spawnprim dapat digunakan sebagai alternatif dalam pemijahan buatan dengan rangsangan hormonal dengan harga yang lebih ekonomis. Kata kunci : Pemijahan buatan, ovulasi, hormon, Ikan patin Pangasionodon hypothalmus, ovaprim, spawnprim 9

10 ABSTRACT MUHAMMAD AHYA RAFIUDDIN. Using spawnprime for stimulating ovulation for Patin (pangasionodon hypothalamus). Supervised by Agus Oman Sudrajat and Harton Arfah. Aquaculture is an activity culture for fish that have a good prospect. In all many kind of fishes that be cultured, Pangasionodon hypothalamus is a one of the fish which have good prospect in hatchery industry. However, the breeding of catfish (Pangasionodon hypothalmus) can only be done by artificial spawning with hormonal stimulation. Aromatase inhibitor (AI) have been known to accelarate the process of gonadal maturation in fish. The combination of aromatase inhibitor (AI), antidopamine (AD) and LHRHa has been used to accelerate the final maturation and also as a substitute LHRHa. In this study, various doses of LHRHa 0, 5,10, 15 µg/ml combined with AI and AD, which later named Spawnprim A, B, C, and D, then injected the fish with a dose of 0,7 ml/kg fish. Ovaprim has been used as a positive control and physilogical solution as a negative control. Fish injected with HCG at a dose of 0,3 ml/kg fish 24 hours before injection with spawnprim or ovaprim. Ovulation has been observed by artificially spawning by stripping. The result showed that fish injected with spawnprim been able to ovulate with good quality eggs at 14 hours after the time of injection or 2 hours late compared with ovaprim. Spawnprim can be used as an alternative in the artificial spawning with hormonal stimulating with hormonal stimulation with a more economical price. Key word : Artificial spawning, ovulation, hormone, catfish Pangasionodon hypothalmus, ovaprim, spawnprim 10

11 I. PENDAHULUAN Budidaya ikan patin (Pangasionodon hypothalmus) merupakan salah satu kegiatan budidaya ikan air tawar yang mempunyai prospek yang cerah. Peluang usaha patin dimulai sejak tahun Pada tahun 2004 produksinya sebesar ton dan terus meningkat menjadi ton pada tahun Tahun 2010 sendiri kebutuhan ikan patin diproyeksikan mencapai ton, yang artinya 2,8 kali lipat lebih besar produksinya dibandingkan dengan tahun Patin hanya dikenal dan digemari kalangan masyarakat Sumatera dan Kalimantan sehingga harganya mahal untuk di daerah tersebut. Suksesnya pembenihan patin di Pulau Jawa diadopsi di Pulau Sumatra dan Kalimantan sehingga terjadi penurunan kegiatan pembenihan di Pulau Jawa. Pembenihan ikan patin dilakukan dengan pemijahan buatan karena telur yang telah ovulasi tidak dapat dikeluarkan oleh induk tersebut. Berkembangnya kegiatan pembenihan di luar Pulau Jawa pun mengalami kendala diantaranya adalah penyediaan ovaprim yang sulit sehingga perlu dilakukan alternatif bahan lain untuk mengganti ovaprim sehingga proses produksi dapat terus berlanjut (Khairuman, 2007). Pemijahan buatan memerlukan manipulasi hormon; manipulasi hormon yang digunakan adalah ovaprim yang berisi sgnrh (D-Arg 6, Trp 7, Leu 8, Pro 9 Net)-LH- RH dan domperidone sebagai antidopamin (Nandeesha, 1990). Selain itu, Sahoo (2005) menambahkan bahan-bahan tersebut merupakan stimulus pada otak dan kelenjar hipotalamus sehingga dapat mempercepat ovulasi. Hatchery patin yang ada di wilayah Kabupaten Bogor pada umumnya menggunakan ovaprim dengan harga Rp Rp Produk ini merupakan produk impor dari Syndel Laboratories, Kanada dan proses pembuatannya dilakukan di India, sehingga pembenihan ikan patin ini masih bergantung dengan peraturan dan syarat yang berlaku pada perdagangan internasional. Importir yang ada di Indonesia pun harus menunggu saat pasokan dan stok habis. Untuk menjamin ketersediaan benih pada kegiatan pembesaran perlu ada terobosan baru di bidang reproduksi ikan diantaranya adalah mengganti ovaprim, bahan lain yang dapat digunakan untuk perangsangan ovulasi adalah aromatase inhibitor (AI). Pada mulanya, AI digunakan dalam manipulasi sex pada individu baru (larva ikan) yang masih memiliki ketidakstabilan 11

12 sex. Pengarahan kelamin pada ikan perlu dilakukan karena kebutuhan pasar terhadap ikan tersebut. Pembalikkan kelamin menggunakan AI dimulai sejak tahun 2000 hingga saat ini. Pada tahun 2005, AI mulai dicoba untuk proses perangsangan ovulasi pada common carp dan catfish di tahun Oleh karena itu, AI sebagai alternatif pengganti ovaprim dikemas dalam suatu produk baru dengan nama spawnprim. Spawnprim merupakan produk Indonesia yang diproduksi sehingga harganya bisa lebih murah dan tidak perlu menunggu stok dari luar negeri. Penggunaan spawnprim diharapkan dapat menurunkan biaya produksi pada ikan patin karena adanya kompensasi dari AI yang menurunkan kandungan LHRHa. Substitusi LHRHa dengan AI dapat merangsang terjadinya ovulasi pada ikan patin. Bahan substitusi LHRHa mudah diperoleh dan murah sehingga menurunkan harga jual dari penggunaan ovaprim. Penggunaan premix spawnprim pada perangsangan ovulasi menyebabkan penurunan penggunaan ovaprim. Penelitian ini bertujuan untuk merangsang ovulasi pada ikan patin (Pangasionodon hypothalmus) dengan menggunakan premix spawnprim sebagai pengganti ovaprim sehingga diharapkan dapat menurunkan biaya produksi. 12

13 II. BAHAN DAN METODE Penelitian ini dilakukan di Kolam Percobaan Babakan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan-IPB, Laboratorium Pengembangbiakkan dan Genetika Ikan dan Laboratorium MST (Marine Science and Technology) Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah 20 buah akuarium (30 x 15 x 15cm), 1 buah kolam dengan ukuran 20 x 10m, instalasi aerasi, botol film, syringe 3ml, pipet tetes, sudip, kain lap, baskom, kaca preparat, mikroskop cahaya, mikrometer okuler, timbangan digital, kamera digital, jaring, magnet stirer, kateter, sentrifuser, hot plate, gelas kimia, gelas ukur, effendorf, dan vortex. Bahan-bahan yang digunakan adalah induk ikan patin sebanyak 50 ekor, ovaprim, Aromatase Inhibitor jenis imidazole, LHRHa, etilalkohol, larutan sierra, aquabides, larutan fisiologis 0.9%, kertas alumunium foil, dan domperidone tablet. 2.1 Metode Penelitian Tahap Persiapan Persiapan Wadah Persiapan wadah terbagi atas beberapa wadah diantaranya adalah wadah pemeliharaan induk, pemberokkan induk, dan wadah inkubasi telur. Wadah pemeliharaan induk yang digunakan berukuran 20x10m, wadah pemeliharaan induk disiapkan dengan membersihkan dari sampah dan mengontrol debit air. Wadah pemberokkan induk dilakukan dengan mengeringkan bak dan mengisi air dengan air bersih dan mengatur sistem aerasi dengan menggunakan blower. Wadah inkubasi telur dilakukan pada akuarium berukuran 60 x 40 x 40cm dengan membersihkan akuarium dari kotoran dan kerak yang ada di dinding. Setelah itu, akuarium direndam dengan klorin dan dibiarkan hingga 3 hari, setelah itu akuariumm dibilas dengan air dan diisi dengan air serta aerasi diatur melalui regulator aerasi tersebut. Inkubasi telur dilakukan pada suhu 28 C dengan menggunakan lampu pijar, air yang digunakan untuk inkubasi telur dan pemeliharaan larva adala air yang telah diendapkan di tandon. 13

14 Pemeliharaan Ikan Uji Ikan uji yang digunakan adalah induk ikan patin berjumlah 50 ekor yang telah diseleksi dari 287 induk. Induk patin yang berjumlah 50 ekor terdiri atas 40 ekor betina dan 10 jantan dengan bobot rataan 0,89 + 0,25kg. Pemeliharaan ikan uji dilakukan di kolam berukuran 20 x 10m dan pemberokkan di bak berukuran 3 x 3m. Selama pemeliharaan induk dilakukan pemberian pakan berupa pakan pellet dengan FR 4% dan keong mas Pembuatan Larutan Premix Kandungan premix spawnprim adalah LHRHa, anti dopamin (AD), dan aromatase inhibitor (AI). Tahap awal pembuatan premix ini adalah membuat larutan stok sesuai dengan dosis. Leutinizing Hormone Releasing Hormone - analogue (LHRHa) yang digunakan merupakan produk dari perusahaan Syndel Laboratories Ltd, Kanada. LHRHa ini berbentuk serbuk sebanyak 5 mg dikemas dalam botol. Dosis LHRHa yang digunakan adalah 0µg/ml, 5µg/ml, 10µg/ml, dan 15µg/ml. Pembuatan larutan stok LHRHa adalah melarutkan dalam etil alkohol ke dalam botol LHRHa lalu dikocok hingga larutan tersebut homogen. Larutan tersebut diambil 1 ml dan ditambahkan etilalkohol sebagai larutan stok Larutan stok Anti Dopamin (AD) Jenis antidopamin yang digunakan adalah domperidon. Pembuatan larutan stok ini adalah dengan melarutkan 10 tablet domperidon pada NaCl kemudian distirer menggunakan di atas hot plate selama 24 jam. Larutan terbentuk dimasukkan dalam effendorf 1,5 ml dan disentrifuse dengan kecepatan rpm selama 15 kemudian diambil supernatan yang terbentuk dan dimasukkan dalam botol gelap ukuran 10 ml. Supernatan yang terkumpul merupakan larutan AD dan diberi label stok AD Larutan stok Aromatase Inhibitor (AI) Aromatase inhibitor (AI) yang digunakan adalah jenis imidazole. Jenis AI yang digunakan berbentuk serbuk dan dilarutkan menggunakan NaCl. Pembuatan stok ini dilakukan dengan pencampuran AI dan NaCl dalam satu wadah kemudian dihomogenkan. 14

15 Larutan Premix (Spawnprim) Larutan premix dibuat dengan mencampurkan larutan LHRHa, larutan AD, dan larutan AI. Pencampuran LHRHa, AI dan AD menjadi premix yang disebut Spawnprim, untuk membedakan setiap perlakuan dilakukan perbedaan nama antara lain adalah spawnprim A, B, C, dan D. Setelah itu, botol diberikan label Spawnprim A, B, C, D dan disimpan pada lemari pendingin Seleksi Ikan Uji Seleksi ikan uji dilakukan pada induk betina ikan patin yang telah matang gonad dan belum mengalami ovulasi. Pengamatan secara mikroskopik dengan melihat posisi inti telur dilakukan untuk mengetahui tingkat kematangan gonad ikan. Induk ikan diseleksi dari 287 induk menjadi 50 ekor induk yang digunakan untuk perlakuan. Tahap selanjutnya adalah induk diberok dari wadah pemeliharaan sehingga induk tersebut siap suntik dan memastikan bahwa ikan tersebut adalah ikan matang gonad Tahap Perlakuan Penelitian ini dilakukan dengan 6 perlakuan dan 4 ulangan masing-masing perlakuan, 2 diantaranya adalah sebagai kontrol positif dan negatif. Perlakuan tersebut adalah : 1) spawnprim A, dengan 4 kali ulangan; 2) spawnprim B, dengan 4 kali ulangan; 3) spawnprim C, dengan 4 kali ulangan; 4) spawnprim D, dengan 4 kali ulangan; 5) ovaprim, sebagai kontrol positif dengan 4 kali ulangan; 6) larutan fisiologis NaCl 0,9%, sebagai kontrol negatif dengan 4 kali ulangan Penyuntikan Larutan Premix Induksi premix dilakukan pada malam hari dengan dosis 0,7 ml/kg menggunakan syringe secara intramuscular (penyuntikkan melalui otot punggung). Penyuntikkan premix dilakukan selang 24 jam antar suntikkan ke satu dan kedua sedangkan suntikkan kedua dan stripping berjarak jam pasca penyuntikkan kedua. Kemiringan suntikkan dilakukan pada 45 sehingga premix yang dimasukkan ke dalam tubuh ikan patin dapat sesuai dengan organ target. Penyuntikkan larutan premix dilakukan pengenceran menggunakan aquabidest (ddh 2 O). 15

16 Pemijahan Pemijahan yang dilakukan pada ikan patin adalah secara buatan. Pemijahan buatan dilakukan dengan mengurut dari bagian depan menuju arah belakang secara perlahan. Pemijahan induk dilakukan pada induk yang telah mengalami ovulasi, dan pengamatan ovulasi diamati mulai 10 jam pasca penyuntikkan kedua hingga jam ke- 24. Induk yang telah ovulasi dimasukkan dalam wadah yang telah dicampur dengan NaCl 90% yang selanjutnya akan dibuahi oleh sperma. Pencampuran sperma dan telur dilakukan pada wadah yang sama kemudian ditebar pada wadah inkubasi telur untuk diamati FR (Fertilitation Rate), HR (Hatching Rate), dan SR (Survival Rate) Tahap Pengamatan Parameter yang diamati pada penelitian ini adalah keberhasilan dan lama waktu ovulasi, diameter telur, FR (Fertilitation Rate), HR (Hatching Rate), dan SR (Survival Rate), dan kualitas air Tingkat keberhasilan dan Lama Waktu Ovulasi Tingkat keberhasilan ovulasi ditentukan dari posisi inti telur yang telah bermigrasi menuju tepi (Germinal Vesicle Break Down, GVBD) setelah itu ditentukan waktu ovulasi dan dihitung dari penyuntikkan kedua. Pengecekkan induk yang belum mengalami ovulasi dilakukan setiap 3 jam. Penghitungan tingkat keberhasilan ovulasi dilakukan dengan menggunakan rumus di bawah ini : Tingkat Keberhasilan Ovulasi = Diameter Telur jumlah telur yang diovulasikan jumlah seluruh telur di dalam gonad x 100% Pengamatan diameter telur dilakukan pada saat sebelum dilakukan penyuntikkan, setelah dilakukan penyuntikkan, dan pada saat ovulasi terjadi. Telur yang diamati ditambahkan larutan sierra untuk mempertahankan bentuk inti telur. Jumlah telur yang diamati pada satu bidang pandang di bawah mikroskop adalah 100 butir telur dengan 4 ulangan. Metode penghitungan diameter telur menggunakan mikrometer okuler dan dikonversi berdasarkan jumlah strip pada mikrometer objektif. Pengkonversian jumlah diameter telur dilakukan dengan menggunakan rumus sebagai berikut : 15 D = d x µm

17 Keterangan: D = ukuran sebenarnya (µm) d = nilai yang terlihat pada skala mikrometer okuler 15 = jumlah strip pada pembesaran lensa objektif 10x Derajat Penetasan (Hatching Rate) Penetuan derajat penetasan dilakukan setelah 28 jam penebaran telur pada wadah inkubasi telur. Telur yang dibuahi akan menetas mulai pada jam ke-20 ditandai dengan adanya gerakkan pada bagian larva. Penentuan jumlah derajat penetasan adalah dengan menggunakan rumus : HR = telur dibuahi telur menetas x 100% Tingkat Kelangsungan Hidup (Survival Rate) Tingkat kelangsungan hidup diamati sejak larva menetas hingga 1 hari setelah larva habis kuning telur (mulai makan artemia). Larva diamati sejak menetas selama 5 hari kemudian dihitung tingkat kelangsungan hidupnya. Penetuan jumlah larva yang masih hidup dengan menggunakan rumus : SR = larva akhir larva awal x 100% Analisis Data Data yang diperoleh dianalisa secara deskriptif statistik dengan menggunakan Microsoft Excel 2007 untuk uji-f dan uji lanjut Duncan dengan menggunakan SPSS 10 for windows. 17

18 III. HASIL DAN PEMBAHASAN 3.1 Hasil Penelitian yang telah dilakukan menunjukkan adanya alternatif pengganti ovaprim. Hasil penelitian tersebut adalah sebagai berikut : Tabel 1. Kinerja reproduksi ikan patin betina yang disuntik dengan spawnprim. Perlakuan Larutan Fisiologis (-) Ovaprim (+) Spawnprim A Spawnprim B Bobot Induk (kg) Keberhasilan (jam) Fekunditas (butir/ekor) HR (%) SR5(%) Habis Kuning telur (jam ke-) Ulangan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan 1 1,50 -x 2 1,00 -x 1,15 + 0,26 3 0,90 -x 4 1,20 -x 12 jam , % 100% jam % 100% ,20 1,05 + 0,3 12,58 + 0,17 a ,3% 100,0% 12 jam % 100% ,40 95,5 + 0,57 12 jam , % 100% ,76 15 jam % 100% jam , % 100% jam 15 15,19 + 0,13 b ,3% 100,0% , % 100% ,50 0,72 + 0,15 15 jam , % 100% ,85 15 jam % 100% jam ,80 0,85 + 0,07 15,37 + 0,29 b % 100,0% 100% 100,0% 90 89,25 + 0,91 15 jam , % 100% 89

19 4 0,80 15 jam 40 Lanjutan Tabel 1. Kinerja reproduksi ikan patin betina yang disuntik dengan spawnprim % 100% 88 Perlakuan Ulangan Bobot Induk (kg) Keberhasilan (jam) Fekunditas (butir/ekor) HR (%) SR5(%) Habis Kuning telur (jam ke-) Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan Perlakuan Rataan 14 jam , % 100% jam % 100% 89 Spawnprim 2 0,88 0,83 + 0,12 14,48 + 0,37 b ,0% 100,0% C 14 jam % 100% ,90 88,75 + 0,96 14 jam 5 4 0, % 100% jam , % 100% jam % 100% 88 Spawnprim 2 0,50 0,76 + 0,19 14,41 + 0,14 b ,0% 100,0% D 14 jam % 100% ,75 88,75 + 0,96 14 jam , % 100% 90 Keterangan : 1,2,3,4 merupakan ulangan x = Tidak memijah a,b menunjukkan beda nyata pada selang kepercayaan 95 % 19

20 Berdasarkan Tabel 1, perlakuan yang memiliki waktu ovulasi paling cepat adalah Spwnprim D yakni 14,41 + 0,14 jam. Premix yang lain yang paling cepat adalah kontrol positif yakni penyuntikkan dengan menggunakan ovaprim, hasil yang diperoleh 12,58 + 0,17, sedangkan untuk larutan fisiologis yang dijadikan sebaga kontrol negatif. Berdasarkan hasil statistik menunjukkan bahwa F test sebesar 0,442 dan P value 0,772 > 0,05 sehingga kesimpulannya adalah ada perbedaan antara spawnprim pada waktu ovulasi dibandingkan dengan kontrol positif (ovaprim). Hal ini menunjukkan bahwa peran ovaprim dapat diganti dengan spawnprim. Semakin tinggi kandungan LHRHa maka memiliki kecenderungan yang baik dalam derajat penetasan. Lama waktu habis kuning telur menunjukkan berbeda nyata pada p<0,05 sehingga penambahan AI dalam premix ada pengaruhnya. Hal ini berdampak pada waktu pemberian pakan alami atau exogenous feeding; pakan yang diberikan dari luar pun semakin cepat. Tabel 2. Perkembangan diameter telur ikan patin sebelum dan sesudah penyuntikkan Perlakuan Larutan Fisiologis (-) Ovaprim (+) Spawnprim A Spawnprim B Spawnprim C Spawnprim D Ulangan Diameter Telur (µm) Sebelum Rataan Sesudah Rataan Ovulasi Rataan 1 252, , , , ,17 + 2, , ,16 + 1, , , , , , , ,83 + 2, , , , ,83 + 2, , , , , , , , , , ,67 + 5,07 261,5 + 3, , , ,33 + 4, , , , , , , , , ,5 + 3, , , , ,5 + 6, , , , , , ,17 + 3,93 257,5 + 4, , , , ,83 + 6, , , , , , , , ,70 281,33 + 5, , , , ,00 + 5, Keterangan : 1, 2, 3, 4 = ulangan 20

21 Berdasarkan tabel 2, penambahan AI dalam premix spwanprim memberikan pengaruh terhadap diameter telur dan menunjukkan beda nyata terhadap perlakuan kontrol positif (Ovaprim) dan kontrol negatif (Larutan Fisiologis). Perlakuan yang memiliki kecenderungan yang bagus adalah perlakuan yang memiliki kandungan LHRHa yang tinggi. Hal ini menunjukkan bahwa peran AI dalam menghentikan peran FSH yang mempercepat sekresi LH dari otak terlihat dengan jelas bahwa selisih diameter setelah penyuntikkan dengan HCG sangat kecil bila dibandingkan dengan diameter telur kontrol (ovaprim). Berdasarkan hasil statistik menunjukkan bahwa F test sebesar 1,3 untuk perlakuan sebelum penyuntikkan HCG, 2,3 untuk penyuntikkan setelah penyuntikkan dengan HCG dan pada saat ovulasi 0,668 dan P value untuk sebelum penyuntikkan HCG 0,308, setelah penyuntikkan HCG 0,086 dan pada saat ovulasi terjadi sebesar 0,639 > 0,05 sehingga kesimpulannya adalah tidak ada perbedaan antara spawnprim pada waktu ovulasi dibandingkan dengan kontrol positif (ovaprim). Hal ini menunjukkan bahwa peran ovaprim dapat diganti dengan spawnprim. Setelah itu, pengujian dilanjutkan dengan uji duncan yang menunjukkan adanya beda nyata terhada perlakuan kontrol positif dan negatif serta premix spawnprim. Selain itu, penambahan AI memiliki korelasi terhadap pembentukkan diameter kuning telur. Tabel 3. Hasil penghitungan harga spawnprim dan penghematan dibandingkan dengan ovaprim Premix Harga (Rp) Penghematan (%) Ovaprim Spawnprim A ,11 Spawnprim B ,09 Spawnprim C ,42 Spawnprim D ,39 Berdasarkan hitungan secara ekonomi maka premix yang paling irit adalah spawnprim A yakni Rp dan seiring dengan meningkatnya kandungan LHRHa pada premix maka harga pun meningkat. Karena premix menunjukkan bahwa komponen LHRHa yang paling mahal. 21

22 3.2 Pembahasan Penggunaan ovaprim sebagai perangsang dalam proses ovulasi sangat penting dalam pemijahan buatan yang menggunakan hormon ketika sinyal lingkungan tidak dapat mengendalikan siklus reproduksi. Rangsangan hormon yang diberikan kepada ikan merupakan salah satu alternaltif dalam memanipulasi proses ovulasi. Penelitian tentang ovaprim telah banyak dilakukan dengan tujuan mencari dosis yang optimum dalam merangsang telur, penelitian ini dilakukan sejak tahun 1990 di Kanada. Setelah itu, sejak tahun 2006 dimulai perangsangan ovulasi menggunakan aromatase inhibitor yang dicampur dengan ovaprim. Setelah itu, pada tahun 2007 AI mulai ditambahkan dalam satu premix sebagai pengganti ovaprim. Pada penelitian ini ovaprim dijadikan sebagai kontrol positif, larutan fisiologis dijadikan sebagai kontrol negatif, dan spawnprim dengan komposisi LHRHa, antidopamine, dan AI, komponen yang paling mahal dari ovaprim adalah LHRHa sehingga penelitian ini mencoba menurunkan konsentrasi LHRHa. Sedangkan kandungan ovaprim adalah sgnrh dan antidopamin. Antidopamin yang digunakan pada ovaprim adalah domperidon, selain domperidon, sulpirid, dan metoclopramid. Hal ini sesuai dengan Kouril (2009) yang menyatakan bahwa antidopamin yang dapat digunakan pada proses pelepasan blokcking dari dopamin adalah domperidon, sulpirid, dan metoclopramid. Kesetaraan dosis yang digunakan adalah 5 mg/kg domeperidon = 20 mg/kg metoclopramid = 40 mg/kg sulpirid. sgnrh berfungsi untuk merangsang hipofisa dalam melepaskan gonadotropin, namun demikian pada kondisi alamiahnya sekresi gonadotropin dihambat oleh dopamin sehingga penambahan antidopamin pada premix ovaprim membuat peran dopamin terhenti. Sedangkan AI berfungsi untuk menghambat produksi estrogen; hidrosilaksi androstenedion menjadi estron, testosteron menjadi estradiol 17β. Menurut Holzer et al., 2006 dalam Basuki, 2007 menjelaskan bahwa aktivitas tersebut dapat dilihat pada jaringan seperti ovari, jaringan adipose, plasenta, otak, otot, fibroblas, hati, dan payudara. Berdasarkan Tabel 1 dapat diketahui bahwa waktu ovulasi pada ovaprim lebih cepat dibandingkan dengan spawnprim A, B, C, dan D. Waktu ovulasi yang terjadi pada ovaprim adalah 12,58 + 0,17 sedangkan pada spawnprim waktu 22

23 ovulasinya 14,41 + 0,14 15,37 + 0,29. Seharusnya spawnprim yang memiliki kandungan AI dapat mempercepat proses ovulasi. Hal ini terjadi karena AI memblocking produksi estrogen dengan menghambat proses aromatisasi pada hipothalmus-hipofisis-gonad axis dari umpan balik negatif estrogen, hasil dari proses ini adalah adanya peningkatan sekresi FSH sehingga mempengaruhi perkembangan ovari hingga terjadi ovulasi. Hal ini sesuai dengan Casper dan Mitwally, (2006) yang menyebutkan bahwa AI dapat memblocking produksi estrogen dengan menghambat aromatase pada organ tertentu yang menghasilkan sekresi FSH yang meningkat sehingga merangsang perkembangan ovari sehingga terjadi ovulasi. Hal lain juga yang mempengaruhi adalah aktivitas aromatase akan meningkat dan mencapai puncaknya pada pasavetelogenesis. Hal ini sesuai dengan Nagahama (1994) yang menyebutkan kinerja aromatase akan meningkat dan terjadi kinerja yang optimum pada saat pascavitelogenesis karena pascavitelogenesis produksi estradiol 17β akan menurun demikian juga aromatase. Penurunan estradiol 17β dan aromatase menyebabkan oosit mengalami GVBD dan berakhir pada ovulasi. Oleh karena itu, proses ovulasi yang ditambahkan AI lebih lama dibandingkan tanpa penambahan AI. Namun demikian konsentrasi LHRHa pada ovaprim sangat tinggi sehingga dengan adanya penurunan LHRHa dapat disubstitusi melalui AI. Menurut Permana (2009) ovulasi terjadi setelah pematangan akhir dan sel telur telah mengalami GVBD. Jumlah telur yang diovulasikan bergantung pada jumlah telur yang telah masak sebelum folikel pecah, karena pengaruh hormon dalam perkembangan dan pematangan oosit berperan besar dalam proses tersebut. Keberhasilan memijah pada ikan bergantung kepada faktor internal dan eksternal. Faktor internal antara lain: genetika, umur induk, ukuran induk, dan tingkat kematangan gonad yang dipengaruhi oleh sistem fisiologis yang berlangsung di dalam tubuh ikan, khususnya sistem hormon. Faktor eksternal merupakan faktor yang mampu merangsang ikan memijah, seperti lingkungan yang meliputi substrat, pakan, suhu, intensitas cahaya, kulaitas air, dan tingkat stres. Adanya faktor lingkungan yang dapat diterima sebagai sinyal maka pemijahan dapat terjadi. Hal ini diungkapkan oleh Sumantri (2006) yang menyebutkan bahwa pemijahan dapat terjadi karena faktor eksternal seperti suhu, 23

24 pakan, cahaya, dan lain-lain. Parameter lainnya adalah diameter telur, diameter telur akan berbeda antar pelakuan yang diberikan hormon dengan yang alami. Hal ini terjadi karena diameter telur dapat dipengaruhi oleh induksi hormon yang diberikan pada induk. Ukuran diameter telur dipengaruhi oleh banyaknya vitelogenin yang tersimpan di dalamnya yang terjadi ketika proses perkembangan telur. Namun demikian, menurut Effendie (1997) tidak semua ikan memiliki hubungan yang berbanding lurus antara fekunditas dan diameter sel telur. 24

25 IV. KESIMPULAN DAN SARAN Spawnprim A, B, C, dan D dapat merangsang percepatan ovulasi dan lebih ekonomis, serta dapat menggantikan peran ovaprim. AI dapat mensubstitusi LHRHa dalam merangsang percepatan proses ovulasi. Penelitian selanjutnya disarankan digunakan antidopamin yang berbeda dan perlu dilakukan penambahan LHRHa yang telah dicampur dengan tipe LHRHa yang berasal dari mamalia, ayam, dan catfish. 25

26 DAFTAR PUSTAKA Afonso, L. O. B., G. K. K. Iwama, Smith, J., dan E. M. Donaldson. 1999a. Effects of the aromatase inhibitor Fadrozole on Plasma Sex Steroid Secretion and oocyte maturation in female coho salmon (Oncorhynchus kisutch) during vitellogenesis. Fish Physiology Biochemistry. 20 : p. Afonso, L. O. B., G. K. K. Iwama, Smith J., dan E. M. Donaldson. 1999b. Effects of the aromatase inhibitor Fadrozole on reproductive steroids and ovulation rate in female coho salmon (Oncorhynchus kisutch)/ close to final maturation. Gen Comp Endocrinology 113: p. Afonso, L. O. B., G. K. K. Iwama, J. Smith dan E. M. Donaldson Effects of the aromatase inhibitor Fadrozole on reproductive steroids and spermiation in male coho salmon (Oncorhynchus kisutch)/ during sexual maturation. Aquaculture 188 : p. Basuki, F Optimalisasi Pematangan Oosit dan Ovulasi pada Ikan Mas Koki (Carassius auratus) Melalui Penggunaan Inhibitor Aromatase. Disertasi. Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor. Devlin, R.H., dan Nagahama, Y Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental inf luences. Aquaculture 208 (Review Article): p. Effendie, HI Biologi Perikanan. Yayasan Pustaka Nusantara. Yogyakarta. Khairuman dan Amri, Khairul Buku Pintar Budidaya 15 Ikan konsumsi. Jakarta: Agromedia. Khairuman dan Sudenda, Dodi Budidaya Ikan Patin secara Intensif. Jakarta: Agromedia. Naeem, M., Abdus Salaam, Farha Diba, dan Atifa Saghir Fucundity Induced Sawning of Silver Carp Hypopthalmichthys molitrix by Using a single intramuscular injection of Ovaprim C at Fish Hatchery Islamabad, Pakistan. Nagahama, Y Endocrine regulation of gametogenesis in fish. International Journal of Biology 38 (Review) : p. Nagahama, Y., M. Yoshikuni, M. Yamashita, T. Takumoto, dan Y. Katsu Regulation of Oocyte Growth and Maturation in Fish. Vol. 30. Academic Press, Inc. P: Nandeesha, M.C., Kondapalli G Rao, Rama N Jayanna, Nick C Parker, T.J. Varghese, Perar Keshavanath, and Handady P.C. S Induced Spawning of Indian Major Carps through Single Aplication of Ovaprim-C. The 2 nd Asian Fisheries Forum Society, Manila, Philippines. 991 p. 26

27 Podhorec, P., J. Kouril Induction of final oocyte maturation in Cyprinidae fish by hypothalamic factors: a review article. Veterinarni Medicina, 54, 2009 (3): p Permana, D Efektivitas Aromatase Inhibitor dalam pematangan Gonad dan Stimulasi Ovulasi pada ikan Sumatra Puntius tetrazona. Skripsi. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Sahoo, SK., Giri, SS., dan Sahu, AK Induced spawning of Asian catfish, Clarias batrachus (Linn.): effect of various latency periods and SgnRHa and domperidone doses on spawning performance and egg quality. Aquaculture Research 36 : p. Sumantri, D Efektifitas Ovaprim, dan Aromatase Inhibitor Dalam Mempercepat Pemijahan Pada Ikan Lele Dumbo Clarias Sp. Skripsi. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Woynarovich E. dan Horvath L The Artificial Proagation of Warm Water Finfishes. A manual Extension. Food and Agriculture. Organitation of the United Nation. Wibisono, AP Efisiensi Transportasi Benih Ikan Patin siam (Pangasius hypothalmus) pada ukuran dan kepadatan yang berbeda. Skripsi. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Zairin, M., K. Asahina, K. Furukawa, dan K. Aida Plasma Steroid Hormone Profile during hcg Induced Ovulation in female Walking Catfish Clarias batrachus. Zoological Science 9: