Dimana : a = bobot cawan dan sampel awal (g) b = bobot cawan dan sampel akhir (g) c = bobot sampel awal (g)

Transkripsi

1 77 Lampiran 1. Prosedur Analisis Proksimat a. Kadar Air (AOAC 1995) Sejumlah sampel (± 5 g) dimasukkan ke dalam cawan yang telah diketahui bobotnya. Kemudian cawan dimasukkan ke dalam oven bersuhu 100⁰C hingga diperoleh bobot yang konstan. Perhitungan kadar air dilakukan berdasarkan bobot basah dengan menggunakan rumus : (a-b) Kadar air (% wb ) = x 100 % c Dimana : a = bobot cawan dan sampel awal (g) b = bobot cawan dan sampel akhir (g) c = bobot sampel awal (g) b. Kadar Abu (AOAC 1995) Cawan porselin dikeringkan dakam oven bersuhu ⁰C, kemudian didinginkan dalam desikator dan ditimbang. Sebanyak 5 g sampel ditimbang dan dimasukkan ke dalam cawan porselin. Selanjutnya sampel dipijarkan di atas nyala pembakar bunsun sampai tidak berasap lagi, kemudian dilakukan pengabuan di dalam tanur listrik pada suhu ⁰C selama 4-6 jam atau sampai terbentuk abu berwarna putih. Kemudian sampel didinginkan dalam desikator, selanjutnya ditimbang. Perhitungan kadar abu dilakukan dengan rumus : bobot abu (g) Kadar abu : x 100% bobot sampel (g) c. Kadar Protein ( Metode Mikro- Kjeldahl AOAC 1995) Sejumlah kecil sampel (1-2 g ) ditimbang dan di masukkan ke dalam labu Kjeldahl. Kemudian ditambahkan 1,9 g K 2 SO 4, 40 mg HgO, dan 2,0 ± 0,1 H 2 SO 4. Sampel dididihkan selama 1-5 jam sampai cairan menjadi jernih. Sampel didinginkan dan ditambah sejumlah kecil air secara perlahanlahan. Isi tabung dipindahkan ke alat destilasi dan labu dibilas 5-6 kali

2 78 dengan 1-2 ml air. Air cucian dipindahkan ke labu destilasi dan ditambahkan 8-10 ml larutan aoh- a 2 SO 3. Erlenmeyer yang berisi 5 ml larutan H 3 BO 3 dan 2 tetes indikator (campuran 2 bagian merah metil 0,2 persen dalam alkuhol) diletakkan di bawah kondesor. Isi erlenmeyer diencerkan sampai kira-kira 50 ml, kemudian dititrasi dengan HCl 0,02 sampai terjadi perubahan warna menjadi abu-abu. Penetapan untuk blanko juga dilakukan dengan prosedur yang sama tetapi tanpa sampel. Kadar protein dihitung dengan rumus : ( ml HCl sampel ml HCL blanko ) % = x HCl x x 100 bobot sampel (mg) Kadar Proten (%) = % x 6,25 d. Kadar Lemak (AOAC 1995) Labu lemak yang akan digunakan dikeringkan dalam oven bersuhu ⁰C, didinginkan dalam desikator, dan ditimbang sebanyak 5 g dibungkus dengan kertas saring dan dimasukkan ke dalam alat ekstraksi (soxhlet), yang telah berisi pelarut heksana. Refluks dilakukan selama 5 jam (minimun) dan pelarut yang ada di dalam labu lemak didistilasi. Selanjutnya labu lemak yang berisi lemak hasil ekstraksi dipanaskan dalam oven pada suhu 105⁰C hingga bobotnya konstan, didinginkan dalam desikator, dan ditimbang. Kadar lemak dihitung dengan rumus : bobot lemak (g) Kadar lemak = x 100% bobot sampel (g) e. Kadar Karbohidrat (by difference ) (Apriyantono et al. 1989) Kadar Karbohidrat (%) = ( 100% - (P + KA + A + L )) Keterangan : P = kadar protein (%) KA = kadar air (%) A = kadar abu (%) L = kadar lemak (%)

3 79 f. Kadar mineral (SI 1998) Persiapan sampel dari analisis ini dilakukan dengan cara pengabuan basah, sedangkan prinsip pengukuran mineral dan logam bobot dilakukan dengan cara spektrofotometer. Pengabuan basah diawali dengan menimbang sejumlah sampel yang mengandung 5-10 g padatan dan dimasukkan ke dalam labu kjeldahl, sampek ditambahkan larutan H 2 SO 4 sebanyak 10 ml dan larutan HO 3 sebanyak 10 ml (atau lebih) serta beberapa buah batu didih. Kemudian sample dipanaskan perlahan-lahan sampai larutan berwarna gelap, dihindari pembentukan buih yang berlebihan. Selanjutnya sampel ditambahkan 1-2 ml HO 3 dan pemanasan dilanjutkan sampai larutan lebih gelap lagi. Penambahan HO 3 dan pemanasan dilanjutkan selama 5-10 menit sampai larutan tidak gelap lagi (semua zat organik teroksidasi) kemudian didinginkan. Akuades sebayak 10 ml ditambahkan sampai larutan akan menjadi tidak berwarna atau menjadi kuning muda jika mengandung Fe, dan kemudian dipanaskan sampai berasap. Lalu larutan didinginkan dan diencerkan menggunakan labu takar 50 ml dengan menambahkan akuades sampai tanda tera lalu disaring dan dimasukkan kee dalam erlenmeyer kosong, lalu dianalisis kadar cemaran logam bobot dan mineralnya. Kandungan mineral dan campuran bobot pada sampel dianalisa menggunakan Atomic Absortion Spectrophotometry (AAS). Sebelumnya dibuat pula larutan blanko yang berisi semua pereaksi yang digunakan, yaitu H 2 SO 4 pekat, HO 3 pekat, larutan standar, larutan blanko dan larutan sampel dibaca absorbansinya pada panjang gelombang 428,7 nm untuk kalsium (Ca), 248,3 nm untuk besi (Fe), 213,9 nm untuk seng (Zn), 235,5 nm untuk timah putih, 283,3 nm untuk timbal (Pb) (SI ). g. Kadar Serat (Sulaeman et al. 1994) Sampel kering homogen diekstraksi lemaknya dengan petroleum eter pada suhu kamar selama 15 menit. Sejumlah 1 g sampel dimasukkan ke dalam Erlenmeyer kemudian ditambahkan 25 ml buffer fosfat ph 6 dan dibuat menjadi suspensi. Selanjutnya suspensi ditambahakan 0,1 ml enzim termamyl, ditutup dengan alufo dan diinkubasi pada suhu 100⁰C selama 15 menit, diangkat dan didinginkan dalam air mengalir. Air destilata

4 80 diitambahkan sebanyak 20 ml dan ph-nya diatur menjadi 6,8 dengan menambahkan naoh 4 M. Erlenmeyer ditutup dan dilakukan inkubasi pada suhu 40⁰C dan diagitasi selama 60 menit sambil diagitasi. Selanjutnya ph diatur kembali menjadi 4, 5 dengan HCL. Suspensi disaring dengan cruicible kering yang telah diketahui bobotnya (porositas 2) yang mengandung 0,5 g celite kering kemudian dicuci dengan 2 x 10 ml air destilata. Residu padatan ( IDF) dicuci dengan 2 x 10 ml etanol 95 persen dan 2 x 10 ml aseton. Dikeringkan pada suhu 105⁰C (oven) sampai bobot tetap, kemudian ditimbang setelah didinginkan dalam desikator (D1). Residu tersebut kemudian diabukan dalam tanur 500⁰CF selama paling sedikit 5 jam, kemudian ditimbang setelah didinginkan dalam desikator (I 1 ). Volume filtrat (SDF) dimasukkan dalam labu ukur 100 ml dan tepatkan volumenya dengan menambahkan air destilata. Setelah tepat 100 ml dituang dalam wadah lain dan dimasukkan 400 ml etanol 95 persen hangat (60⁰C). Larutan tersebut diendapkan selama 1 jam. Disaring dengan cruicible kering (porositas 2) dengan mengandung 0,5 g celite kering yang telah diketahui bobot keringnya. Kemudian residu dicuci dengan 2x 10 ml etanol 78 persen, 2 x 10 etanol 95 persen dan 2 x 10 aseton. Residu dikeringkan dalam oven sampai diperoleh bobot tetap, kemudian ditimbang setelah didinginkan dalam desikator (D2). Setelah itu residu tersebut diabukan dengan tanur 500⁰C, dan ditimbang setelah didinginkan dalam desikator (I 2 ). Serat makanan total diperoleh dengan menjumlahkan jumlah serat makanan larut dan tidak larut. Blanko untuk serat makanan larut dan tidak larut diperoleh dengan cara yang sama, tetapi tanpa sampel. ilai blanko sekali-kali perlu diperiksa ulang, terutama jika menggunakan enzim dengan kemasan baru.

5 81 Rumus perhitungan nilai IDF dan SDF: ilai IDF (dalam persen bobot sampel kering): D 1 - I 1 - B 1 = x 100% W ilai SDF (dalam persen bobot sampel kering): D 2 I 2 B 2 = x 100% W Keterangan : W = bobot sampel (g) D I B = bobot setelah analisis dan dikeringkan dalam oven (g) = bobot setelah diabukan (g) = bobot blanko bebas serat (g)

6 82 Lampiran 2. Prosedur Analisis Kandungan Bahan Aktif a. Vitamin C (Haryono et al 2007) Buat larutan sampel dengan konsentrasi 1% (larutan basa) dan 10% (larutan asam). Ambil 10ml larutan sampel dengan pipet ukur dan masukkan ke dalam erlenmeyer. Masukkan 1 ml indikator pp 1%. Digojok sampai homogen. Titrasi dengan larutan aoh 0,1 (pada larutan sampel yang bersifat asam) atau titrasi dengan larutan HCl 0,1 (pada larutan sampel yang bersifat basa) sampai terjadi perubahan warna. Catat banyaknya larutan aoh 0,1 atau HCl 0,1 yang digunakan untuk titrasi b. β- Karoten (Simonne et al 1993) Sampel ditimbang 5-15 gram, disaponifikasi semalam pada suhu 21 0 C dalam 250ml labu erlenmeyer bertutup dengan skrup. Campuran untuk saponifikasi terdiri dari 50ml etanol, 25ml aquades, 25 larutan 50% KOH dalam air, dan 1g asam askorbat (sebagai antioksidan). Erlenmeyer yang dipakai ditutup, dibungkus dengan kertas aluminium dan ditempatkan dalam penggojog bolak-balik. Setelah saponifikasi karotenoid diekstrak 3 kali dengan 50 heksan (HPLC grade) yang menggandung 0,01% BHT. Ekstrak yang telah dijadikan satu dicuci dengan larutan acl jenuh. Sisa air yang tertinggal dari heksan dikeringkan dengan medium porosity sintered grass filter yang diisi dengan a-sulfat anhidrous (25g). Hasil saringan seterusnya diuapkan sampai kering dan dilarutkan ke dalam fase mobil yang mengandung asetonitril/metanol/tetrahidrofuran. Kecepatan aliran fase mobil 1ml/menit. c. Asam Asiatik (Jain KP dan Agrawal 2008) Timbang sampel setara dengan 100 mg asiatikosida dalam labu volumetrik 100 ml dilarutkan dalam 50 ml metanol dan buat sampai 100 ml lalu disaring. Disiapkan alat HPLC lalu disuntikkan 20 µl standar asam asiatik, dicatat injeksi kromatogam hingga empat kali dan hitung RSD. Kemudian suntikkan 20 µl sampel dan direkam oleh kromatogram. Hitung %

7 83 asam asiatik dari kurva daerah puncak. Profil HPLC : LC8A pump, detektor SPD-M 10A vp, kolom Octyl silane C8, ukuran 5 µ, 250 x 4,6 mm; kecepatan alian 1,5 ml/min.

8 84 Lampiran 3. Prosedur Analisis Mikrobiologi a. TPC (Total Plate Count) (SI 2008) Sampel MP-ASI sebanyak 25 g ditimbang, kemudian masukkan dalam wadah steril. Pindahkan 1 ml suspensi pengenceran 10-1 tersebut dengan pipet steril ke dalam laruten 9 ml BPW untuk mendapatkan pengenceran Buat pengenceran 10-3, 10-4, 10-5 dan seterusnya dengan cara yang sama seperti pada butir a), sesuai kebutuhan. Selanjutnya masukkan sebanyak 1 ml suspensi dari setiap pengenceran ke dalam cawan petri secara duplo. Tambahkan 15ml sampai dengan 20ml PCA yang sudah didinginkan hingga temperatur 45 0 C ± 1 0 C pada masing-masing cawan yang sudah berisi suspensi. Supaya larutan contoh dan media PCA tercampur seluruhnya, lakukan pemutaran cawan ke depan dan ke belakang atau membentuk angka delapan dan diamkan sampai padat. Inkubasikan pada temperatur 34 0 C sampai dengan 36 0 C selama 24 jam sampai dengan 48 jam dengan meletakkan cawan pada posisi terbalik. Hitung jumlah koloni pada setiap seri pengenceran kecuali cawan petri yang berisi koloni menyebar. Pilih cawan yang mempunyai jumlah koloni sampai dengan 250. koloni Total mikroba (koloni/g) = {(1 x n 1 ) + (0,1 x n 2 )} x FP Keterangan : n 1 n 2 FP = jumlah cawan pengenceran pertama = jumlah cawan pengenceran kedua = pengenceran pertama pada cawan yang dihitung b. MP Koliform (SI 2008) Timbang sampel sebanyak 25 g kemudian masukkan ke dalam wadah steril. Pindahkan 1 ml larutan pengenceran 10-1 tersebut dengan pipet steril ke dalam larutan 9 ml BPW 0,1% untuk mendapatkan pengenceran Dengan cara yang sama seperti di atas dibuat pengenceran Pipet

9 85 masing-masing 1 ml dari setiap pengenceran ke dalam 3 seri tabung LSTB yang berisi tabung Durham. Inkubasi pada temperatus 35 0 C selama 24 jam sampai dengan 48 jam. Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan positif apabila terbentuk gas. Banyaknya koliform yang terdapat dalam contoh uji diinterpretasikan dengan mencocokkan kombinasi jumlah tabung yang memperlihatkan hasil positif, berdasarkan tabel nilai MP. Kombinasi yang diambil, dimulai dari pengenceran tertinggi yang masih menghasilkan semua tabung positif, sedangkan pada pengenceran berikutnya terdapat tabung yang negatif. Kombinasi yang diambil terdiri dari tiga pengenceran. ilai MP contoh dihitung sebagai berikut: MP contoh = x faktor pengenceran yang di tengah c. Escherichia coli (SI 2008) Pengujian dilakukan dengan uji pendugaan, uji peneguhan dan isolasi-identifikasi melalui uji biokimia Indole, methyl red, Voges- Proskauer dan Citrate (IMViC). Timbang sampel sebanyak 25g kemudian masukkan ke dalam wadah steril. Pindahkan 1 ml larutan pengenceran 10-1 tersebut dengan pipet steril ke dalam laruten 9 ml BPW 0,1% untuk mendapatkan pengenceran Dengan cara yang sama seperti di atas di buat pengenceran Pipet masing-masing 1 ml dari setiap pengenceran ke dalam 3 seri tabung LSTB yang berisi tabung Durham. Inkubasi pada temperatur 35 0 C selama 24 jam sampai dengan 48 jam. Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan positif apabila terbentuk gas. Pengujian harus selalu disertai dengan menggunakan kontrol positif. Pindahkan biakan positif dengan menggunakan jarum inokulasi dari setiap tabung LSTB ke dalam tabung ECB yang berisi tabung Durham. Inkubasikan ECB pada temperatur 45,5 0 C selama ± 2 jam, jika hasilnya negatif inkubasikan kembali selama 48 jam ± 2 jam. Perhatikan adanya gas yang terbentuk di dalam tabung Durham. Hasil uji dinyatakan positif apabila terbentuk gas. Selanjutnya gunakan tabel MP untuk menentukan nilai MP berdasarkan jumlah

10 86 tabung ECB yang positif mengandung gas di dalam tabung Durham sebagai jumlah E.coli per mililiter atau per gram. E.coli dinyatakan berdasarkan hasil MP, isolasi-identifikasi, dan uji biokimia. d. Salmonella spp (SI 2008) Timbang contoh sebanyak 25 g kemudian masukkan dalam wadah steril. Pindahkan suspensi ke dalam Erlenmeyer atau wadah steril. Inkubasikan pada temperatur 35 0 C selama 24 jam ± 2 jam. Aduk perlahan biakan kemudian ambil dan pindahkan masing-masing 1 ml ke dalam media 10 ml TTB, sedangkan untuk media RV pindahkan 0,1 ml ke dalam 10 ml RV. Contoh dengan dugaan cemaran Salmonella spp. tinggi inkubasikan media RV pada temperatur 42 0 C ± 0,2 0 C selama 24 jam ± 2 jam. Sedangkan untuk media TTB inkubasi pada temperatur 43 0 C ± 0,2 0 C selama 24 jam ± 2 jam. Contoh dengan dugaan cemaran Salmonella spp rendah inkubasi mediarv pada temperatur 42 0 C ± 0,2 0 C selama 24 jam ± 2 jam. Sedangkan untuk media TTB inkubasi pada temperatur 35 0 C ± 2 0 C selama 24 jam ± 2 jam. Amati koloni Salmonella pada media HE terlihat berwarna hijau kebiruan dengan atau tanpa titik hitam. Pada media XLD koloni terlihat merah muda dengan atau tanpa titik mengkilat atau terlihat hampir seluruh koloni hitam. Pada media BSA koloni terlihat keabu-abuan atau kehitaman, kadang matalik, media sekitar koloni berwarna coklat dan semakin lama waktu inkubasi akan berubah menjadi hitam. e. Staphylococcus (SI 2008) Sebanyak 10 g sampel dicampur secara aseptik dengan 90 ml acl 0,85%. Suspensi diencerkan sampai 10-3, kemudian dilakukan pemupukan pada media Vogel Johnson agar. Inkubasi dilakukan pada suhu 37 o C selama 2 hari. Uji yang positif ditandai dengan adanya koloni berwarna hitam dan dikelilingi dengan areal yang berwarna kuning.

11 87 Lampiran 4. Kuisioner Uji Organoleptik a. Uji Hedonik FORMULIR UJI HEDOIK ama Panelis : ama Produk : MP-ASI Tanggal Pengujian : Di hadapan Anda tersedia 12 contoh MP-ASI. Anda diminta untuk menilai contoh tersebut dengan ketentuan sebagai berikut : 1. Beri tanda silang pada garis atau nomor yang disediakan dari 1-9 yang tepat menggambarkan persepsi Anda. 2. Silahkan untuk berkumur atau minum terlebih dahulu sebelum Anda menilai contoh MP-ASI berikutnya. 3. Mohon tidak membandingkan anatar contoh MP-ASI saat Anda melakukan penilaian. Warna permukaan Amat sangat Biasa Amat sangat Tidak suka (suka tidak, tidak suka tidak) suka Aroma Amat sangat Biasa Amat sangat Tidak suka (suka tidak, tidak suka tidak) suka Rasa Amat sangat Biasa Amat sangat Tidak suka (suka tidak, tidak suka tidak) suka Tekstur Amat sangat Biasa Amat sangat Tidak suka (suka tidak, tidak suka tidak) suka Keseluruhan Amat sangat Biasa Amat sangat Tidak suka (suka tidak, tidak suka tidak) suka Komentar :... Terima kasih

12 88 b. Uji Mutu Hedonik FORMULIR UJI MUTU HEDOIK ama Panelis : ama Produk : MP-ASI Tanggal Pengujian : Di hadapan Anda tersedia 12 contoh MP-ASI. Anda diminta untuk menilai contoh tersebut dengan ketentuan sebagai berikut : 1. Beri tanda silang pada garis atau nomor yang disediakan dari 1-9 yang tepat menggambarkan persepsi Anda. 2. Silahkan untuk berkumur atau minum terlebih dahulu sebelum Anda menilai contoh MP-ASI berikutnya. 3. Mohon tidak membandingkan anatar contoh MP-ASI saat Anda melakukan penilaian. Warna permukaan Amat sangat Amat sangat pucat hijau Aroma Amat sangat Amat sangat Tidak beraroma beraroma daun kering Rasa pahit Tidak terasa Amat sangat sama sekali terasa Tekstur Amat sangat Amat sangat tidak lunak lunak Komentar : Terima kasih

13 Lampiran 5. Hasil Analisis Kandungan Gizi Daun Pegagan Segar dalam 100g Bahan Basah Kandungan gizi Ulangan %b/b Kadar air 1 78, ,3153 Rata-rata 79,6307 Kadar protein 1 4, ,5718 Rata-rata 4,5819 Kadar Lemak 1 1, ,2867 Rata-rata 1,2900 Kadar abu 1 2, ,4635 Rata-rata 2,4529 Kadar serat makanan tidak larut 1 4, ,3344 Rata-rata 4,2825 Kadar serat makanan larut 1 0, ,8067 Rata-rata 0,7994 Kadar serat makanan total 1 5, ,1412 Rata-rata 5,082 Vitamin C (mg) 1 79, ,18 Rata-rata 79,14 β-karoten (ppm) 1 88, ,07 Rata-rata 88,76 Kalsium (mg) , ,41 Rata-rata 1994,28 Fe (mg) 1 43, ,27 Rata-rata 43,26 Selenium (mcg) 1 4,78 2 4,32 Rata-rata 4,55 Asam asiatik (%) 1 0,78 2 0,54 Rata-rata 0,66 89

14 Lampiran 6. Hasil Analisis Kandungan Gizi Serbuk Tabur Pegagan dalam 100g Bahan Kering Kandungan gizi Ulangan %b/b Kadar air 1 7, ,3732 Rata-rata 7,3120 Kadar protein 1 20, ,2090 Rata-rata 20,1145 Kadar Lemak 1 4, ,4110 Rata-rata 4,3853 Kadar abu 1 14, ,2208 Rata-rata 14,2578 Kadar serat makanan tidak larut 1 39, ,7605 Rata-rata 38,8909 Kadar serat makanan larut 1 0, ,8810 Rata-rata 0,8857 Kadar serat makanan total 1 39, ,6416 Rata-rata 39,7767 Vitamin C (mg) 1 231, ,22 Rata-rata 245,27 β-karoten (ppm) 1 325, ,47 Rata-rata 317,56 Kalsium (mg) , ,66 Rata-rata 2697,99 Fe (mg) 1 40, ,85 Rata-rata 40,52 Selenium (mcg) 1 33, ,59 Rata-rata 33,42 Asiatikosida (%) 1 5,73 2 5,45 Rata-rata 5,59 90

15 91 Lampiran 7. Anova Sifat Fisik MP-ASI Pegagan Densitas kamba Sumber keragaman db jk kt F F tabel 1 0, , ,000* 19,00 Pegagan 2 0,0002 1E-04 3,000 Kekeliruan eksperimen 2 6,67E-05 3,33E-05 Kekeliruan sampling ,106 Hasil uji lanjut Waktu Penambahan 1 2 Saat proses 6 0,1167 Setelah proses 6 0,0633 Sig. 1,000 1,000

16 92 Lampiran 8. Anova Kandungan Gizi MP-ASI Pegagan a. Kadar air Sumber keragaman dk 1 3, , ,64511* 19,00 Pegagan 2 3, , ,89392 K.eksperimen 2 0, , K.sampling 6 3, , ,3881 Hasil uji lanjut Waktu Penambahan 1 2 Saat proses 6 3,1541 Setelah proses 6 4,2020 Sig. 1,000 1,000 b. Kadar abu Sumber keragaman dk 1 0, , , ,00 Pegagan 2 0, , , K.eksperimen 2 0, , K.sampling 6 0, , ,78708 c. Kadar lemak Sumber keragaman dk 1 0, , , ,00 Pegagan 2 0, , , K.eksperimen 2 0, , K.sampling 6 0, , ,499618

17 93 d. Kadar protein Sumber keragaman dk 1 0, , , ,00 Pegagan 2 15, , ,49295 * K.eksperimen 2 0, ,39450 K.sampling 6 3, ,13 Hasil uji lanjut Konsentrasi Serbuk Pegagan Konsentrasi Serbuk Pegagan % 4 11,56 7,5% 4 13,12 10% 4 14,32 Sig. 1,000 1,000 1,000 e. Kadar vitamin C sumber keragaman dk 1 271, , ,436010* 19,00 Pegagan , , ,354196* K.eksperimen 2 8, , K.sampling 6 64, , ,76 Hasil uji lanjut Waktu Penambahan 1 2 Saat proses 6 103,31 Setelah proses 6 113,15 Sig. 1,000 1,000

18 94 Konsentrasi Serbuk Pegagan Konsentrasi Serbuk Pegagan % 4 84,15 7,5% 4 112,78 10% 4 127,77 Sig. 1,000 1,000 1,000 f. Kadar beta karoten Sumber keragaman dk , ,194 0, ,00 Pegagan , ,700 0, Kekeliruan eksperimen , ,91 Kekeliruan sampling , , ,629,299 g. Kadar kalsium Sumber keragaman dk , , ,07799 * 19,00 Pegagan , , ,84884 * Kekeliruan eksperimen 2 148, , Kekeliruan sampling , , ,826 Hasil uji lanjut Waktu Penambahan 1 2 Setelah proses 6 290,56 Saat proses 6 261,69

19 95 Konsentrasi Serbuk Pegagan Konsentrasi Serbuk Pegagan % 4 211,07 7,5% 4 300,67 10% 4 318,15 h. Kadar Fe Sumber keragaman dk 1 83, , ,00289 * 19,00 Pegagan 2 47, , , * Kekeliruan eksperimen 2 1, , Kekeliruan sampling 6 62, , ,5349 Hasil uji lanjut Waktu Penambahan 1 2 Saat proses 6 11,76 Setelah proses 6 16,81 Konsentrasi Serbuk Pegagan Konsentrasi Serbuk Pegagan % 4 11,97 7,5% 4 14,06 10% 4 33,65

20 96 i. Kadar selenium Sumber keragaman dk 1 3, , , * 19,00 Pegagan 2 68, , ,89938 * Kekeliruan eksperimen 2 0, , Kekeliruan sampling 6 1,55, , ,89181 Hasil uji lanjut Waktu Penambahan 1 2 Saat proses 6 25,50 Setelah proses 6 26,53 Konsentrasi Serbuk Pegagan Konsentrasi Serbuk Pegagan % 4 22,80 7,5% 4 26,70 10% 4 28,55 j. kadar asam asiatik Sumber Keragaman dk 1 0, , ,67716 * 19,00 Pegagan 2 0, , ,8090 * K.eksperimen 2 0, , K. sampling 6 4, , ,12511

21 97 Hasil uji lanjut Waktu Penambahan 1 2 Saat proses 6 0,63 Setelah proses 6 0,69 Konsentrasi Serbuk Pegagan Konsentrasi Serbuk Pegagan % 4 0,55 7,5% 4 0,63 10% 4 0,81

22 98 Lampiran 9. Anova Organoleptik MP-ASI 1. Uji Hedonik MP-ASI a. Warna Sumber keragamanan dk , , ,8802* 5,14 Pegagan , ,6406 0,7016 K. eksperimen , ,5336 K. sampling , ,1958 jumlah ,5 Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI 1 2 MP-ASI dapur MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI sebelum pengeringan MP-ASI komersial Sig b. Aroma Sumber keragamanan dk , ,175 28,927983* 5,14 Pegagan , ,7875 1, K. eksperimen , ,0625 K. sampling , , jumlah Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI 1 2 MP-ASI dapur MP-ASI sebelum pengeringan MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI komersial Sig

23 99 c. Rasa Sumber keragamanan dk , , ,405423* 5,14 Pegagan , , , K. eksperimen , , K. sampling , , jumlah ,25 Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI 1 2 MP-ASI dapur MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI sebelum pengeringan MP-ASI komersial Sig d. Tekstur Sumber keragamanan dk , , , * 5,14 Pegagan , , , K. eksperimen , ,4059 K. sampling , , jumlah ,75 Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI 1 2 MP-ASI dapur MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI sebelum pengeringan MP-ASI komersial Sig

24 100 e. Keseluruhan Sumber keragamanan dk , , , * 5,14 Pegagan ,1 1336,55 1, K. eksperimen , , K.sampling , , jumlah ,5 * Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI 1 2 MP-ASI dapur MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI komersial MP-ASI sebelum pengeringan Sig Uji Mutu Hedonik MP-ASI a. Warna Sumber keragamanan dk , ,2 38, * 5,14 Pegagan , , , K. eksperimen , , K. sampling , , jumlah ,5 Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI MP-ASI komersial MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI sebelum pengeringan MP-ASI dapur Sig

25 101 b. Aroma Sumber keragamanan dk , , , * 5,14 Pegagan , , , K. eksperimen , , K. sampling , , jumlah ,75 Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI 1 2 MP-ASI komersial MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI sebelum pengeringan MP-ASI dapur Sig c. Rasa Sumber keragamanan dk , , , * 5,14 Pegagan , , , K. eksperimen , , K. sampling , , jumlah ,25 Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI 1 2 MP-ASI komersial MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI sebelum pengeringan MP-ASI dapur Sig

26 102 d. Tekstur Sumber keragamanan dk Tengah F hitung F tabel , , , * 5,14 Pegagan , , , K. eksperimen , , K. sampling , , jumlah Hasil uji lanjut Jenis MP-ASI MP-ASI dapur MP-ASI sebelum pengeringan MP-ASI setelah pengeringan MP-ASI komersial Sig

27 103 Lampiran 10. Perhitungan Persen AKG Komponen Fungsional MP-ASI Pegagan 1. AKG Protein - Takaran saji MP-ASI pegagan adalah 30g MP-ASI pegagan dikonsumsi sebanyak 2 kali dalam sehari (2 x 30g) - Data kandungan protein MP-ASI pegagan adalah 11,21% Maka jumlah protein yang terpenuhi adalah x 30g x 2 = 6,73g - AKG protein bayi usia 6 bulan adalah 10g Maka persen AKG protein yang terpenuhi adalah x 100 = 67,26% - AKG protein bayi usia 7-11 bulan adalah 16g Maka persen AKG protein yang terpenuhi adalah x 100 = 42,04% - AKG protein bayi usia 1-3 tahun adalah 25g Maka persen AKG protein yang terpenuhi adalah x 100 = 26,90% 2. AKG Vitamin C - Takaran saji MP-ASI pegagan adalah 30g MP-ASI pegagan dikonsumsi sebanyak 2 kali dalam sehari (2 x 30g) - Data kandungan vitamin C MP-ASI pegagan adalah 79,91mg/100g Maka jumlah vitamin C yang terpenuhi adalah: x 30g x 2 = 47,95mg. - AKG vitamin C bayi usia 6-24 bulan adalah 40g Maka persen AKG vitamin C yang terpenuhi adalah: x 100 = 119,87% 3. AKG Vitamin A - Takaran saji MP-ASI pegagan adalah 30g - MP-ASI pegagan dikonsumsi sebanyak 2 kali dalam sehari - Data kandungan beta-karoten MP-ASI pegagan adalah 201,47ppm 201,47 µg/g. - 1 RE vitamin A = 6 µg beta-karoten

28 104 Maka jumlah beta-karoten yang terpenuhi adalah: 201,47 x 30 x 2 = ,2 µg 2.014,7 RE - AKG vitamin A bayi usia 6 bulan adalah 375 RE Maka persen AKG vitamin A yang terpenuhi adalah: x 100 = 537,25% - AKG protein bayi usia 7 bulan hingga 3 tahun adalah 400 RE Maka persen AKG vitamin A yang terpenuhi adalah: x 100 = 503,66% 4. Asam Asiatik - Kandungan asam asiatik ekstrak pegagan pada uji pra klinis adalah 16,03%. - Dosis ekstrak pegagan yang diberikan pada tikus sebesar 100mg, 300mg dan 600mg Maka kandungan asam asiatik dalam 100mg ekstrak pegagan adalah x 100mg = 16,03mg Maka kandungan asam asiatik dalam 300mg ekstrak pegagan adalah x 300mg = 48,09mg Maka kandungan asam asiatik dalam 600mg ekstrak pegagan adalah x 600mg = 96,18mg - Berat badan tikus pada uji pra klinis sekitar 266g - Berat badan bayi sekitar 8kg = 8000g - Maka kadar asam asiatik dibutuhkan oleh bayi adalah: x 16,03mg = 482,11mg - Takaran saji MP-ASI pegagan adalah 30g - MP-ASI pegagan dikonsumsi sebanyak 2 kali dalam sehari (2 x 30g) - Data kandungan asam asiatik MP-ASI pegagan adalah 0,51%

29 105 Maka kandungan asam asiatik yang dapat terpenuhi adalah: x 30g x 2 = 0,306g 306mg Persen Asam asiatik terhadap kebutuhan = x 100% = 63,47%