c. Kadar Lemak (AOAC, 1995) Labu lemak yang ukurannya sesuai dengan alat ekstraksi Soxhlet

Transkripsi

1

2 Lampiran 1. Prosedur Analisis a. Kadar Air (AOAC, 1995) Pengukuran kadar air dilakukan dengan menggunakan metode oven. Sebelum digunakan, cawan aluminium dikeringkan dengan oven pada suhu 100 o C selama 15 menit kemudian didinginkan dalam desikator selama 10 menit. Cawan yang sudah kering ditimbang (a gram). Sekitar 5 gram sampel ditimbang dengan cepat dalam cawan (x gram), kemudian dikeringkan dengan oven pada suhu 105 o C selama 5 jam, didinginkan dalam desikator dan ditimbang sampai beratnya konstan (y gram). Selanjutnya kadar air dihitung dengan cara berikut: Kadar air (%wb) = x y 100 x a Kadar air (%db) = x y 100 y a Keterangan : x = bobot sampel basah y = cawan dan bobot kering a = bobot cawan kering b. Kadar Abu (AOAC, 1995) Cawan porselen dikeringkan dengan tanur pada suhu 500 o C selama 1 jam kemudian didinginkan dalam desikator. Cawan ditimbang dengan neraca analitik (a gram). Sekitar 2 gram sampel ditimbang dalam cawan porselen (w gram). Sampel diarangkan diatas hot plate selama menit sampai tidak berasap, kemudian sampel diabukan dalam tanur bersuhu 600 o C selama 2 jam dan ditimbang (x gram). Kadar abu dihitung dengan rumus berikut: x a 100 Kadar abu (% wb) = w a Keterangan: x = bobot cawan dan abu w = bobot sampel a = bobot cawan kering c. Kadar Lemak (AOAC, 1995) Labu lemak yang ukurannya sesuai dengan alat ekstraksi Soxhlet

3 dikeringkan dalam oven kemudian didinginkan dalam desikator dan ditimbang (a gram). Sebanyak ± 5 gram (x gram) sampel kering ditimbang pada kertas saring yang sesuai dengan ukuran kemudian ditutup dengan kapas-wool yang bebas lemak. Kertas saring yang berisi sampel tersebut dimasukkan dalam alat ekstraksi soxhlet kemudian alat kondensor dipasang diatasnya dan labu lemak dibawahnya. Pelarut dietil eter dituangkan dalam labu lemak secukupnya. Proses refluks dilakukan selama 5 jam sampai pelarut yang turun ke labu lemak berwarna jernih. Labu lemak yang berisi hasil ekstraksi dipanaskan dalam oven pada 105 o C. Setelah dikeringkan sampai berat tetap dan didinginkan dalam desikator, ditimbang labu beserta lemaknya (b gram). Kadar lemak dihitung dengan rumus berikut: Keterangan: x = bobot sampel Kadar lemak (% wb) = a = bobot labu lemak kering b = bobot labu lemak dan lemak b a x 100 d. Kadar Serat (AOAC, 1995) Bahan sebanyak 1 gram dimasukkan ke dalam erlenmeyer 500 ml dan ditambahkan dengan 100 ml H 2 SO N. Bahan selanjutnya dihidrolisis di dalam otoklaf bersuhu 105 o C selama 15 menit. Bahan yang telah dihidrolisis kemudian didinginkan dan ditambahkan 50 ml NaOH 1.25 N. Hidrolisis bahan dilakukan kembali di dalam otoklaf bersuhu 105 o C selama 15 menit. Bahan disaring menggunakan kertas saring yang telah dikeringkan dan diketahui beratnya. Setelah itu, kertas saring dicuci berturut-turut dengan air panas+25 ml aceton/alkohol. Kertas saring dan bahan kemudian diangkat dan dikeringkan dalam oven bersuhu 110 o C selama ± 1-2 jam. Kadar Serat (%) = (Berat kertas saring + bahan) Berat kertas saring Berat awal bahan x 100%

4 e. Kadar Protein Sekitar gram sampel ditimbang dan dimasukkan ke dalam labu kjeldahl. Sebanyak 2 gram campuran selenium atau satu butir Kjeltabs dan 25 ml H 2 SO 4 pekat ditambahkan ke dalam labu, dididihkan dalam digestion system hingga dingin. Larutan dipindahkan ke dalam labu takar 100 ml. Labu dibilas 2-3 kali dan larutan diencerkan sampai tanda tera. Sebanyak 10 ml larutan dipipet kedalam alat penyuling, ditambah 10 ml NaOH 30% dan 3-5 tetes indikator PP dan dilakukan destilasi selama 10 menit. Destilat ditampung dalam 25 ml asam borat 2% yang telah dicampur dengan 5 tetes indikator BCG-MM kemudian larutan dititrasi dengan HCl 0.01N dan dibuat juga blanko. Berikut ini adalah rumus perhitungan kadar protein: ( VHCL Vblanko) NHCL FK FP 100 Kadar Protein (%wb) = Wsampel Keterangan: FK = Faktor Konversi (6.25) FP = Faktor Pengenceran f. Kadar Karbohidrat (Winarno, 2002) Kadar karbohidrat dapat dihitung dengan metode by difference menggunakan rumus sebagai berikut: Kadar Karbohidrat (% wb) = (% air + % abu + % lemak + % protein) g. Kadar Antosianin (Boyko et al., 2006) Penentuan total kadar antosianin dilakukan dengan menggunakan metode yang dikemukakan oleh Boyko et al. (2006) yang dimodifikasi. Mulamula sebanyak 500 mg ekstrak dilarutkan ke dalam 9 ml metanol kemudian disaring menggunakan kertas saring dan dipisahkan antara filtrat dengan solidnya. Filtrat yang terbentuk kemudian diencerkan sebanyak 10 kali menggunakan metanol sehingga didapatkan larutan ekstrak dengan konsentrasi 5000 ppm. Setelah dilakukan pengenceran, sebanyak 9 ml ekstrak tersebut masing-masing dicampur dengan 0.25 M buffer KCl (ph 1,0;1ml) dan 4M buffer asetat (ph 4.5;1ml)

5 A x M x DF x 10 3 Total antosianin (mg/ g sample) = ε x W Keterangan: A = Selisih absorbansi ph1.0 dengan ph4.5 pada 515 M = Bobot molekul sianidin 3-Oglukosida (445 g/mol) DF = Faktor Pengenceran Ε = Absorbansi molar sianidin 3-O-glukosida ( L mol -1 cm -1 ) W = Bobot kering ekstrak yang digunakan (gram) h. Kadar Tanin (AOAC, 2005) a. Reagen 1. Larutan asam oksalat-0.1n. 1 ml = gram asam quercitannic atau gram O diserap 2. Larutan potassium permanganate standar- Larutkan 1.33 gram KMnO 4 dalam 1 L H 2 O dan distandarisasi sesuai 1). 3. Larutan indigo- Larutkan 6 gram Na indigotin disulfonat dalam 500 ml H 2 O dengan dipanaskan, kemudian didinginkan dan ditambahkan 50 ml H 2 SO 4, encerkan hingga 1 L dan saring b. Penentuan Kadar Tanin Ekstrak 2 gram sampel, 20 jam dengan anhidrit eter. Residu direbus selama 2 jam dengan 300 ml H 2 O, dan didinginkan. Kemudian encerkan hingga 500 ml dan saring. Ukur 25 ml dari infusi ke dalam 2L cawan petri serta tambahkan 20 ml larutan indigo dan 750 ml H 2 O. Tambahkan larutan KmnO 4 hingga larutan berwarna kuning emas. Dengan cara yang sama, titrasi campuran 20 ml indigo dan 750 ml H 2 O. Multiplekan perbedaan antara kedua titrasi dengan faktor desire, (1), untuk mendapatkan asam quetri tannic atau O yang diserap. Kadar Tanin (%) = FP x (a-b) x N x bobot contoh

6 Keterangan: FP = Faktor Pengenceran a = ml KMnO 4 untuk contoh B = ml KMnO 4 untuk blanko N = Normalitas KMnO 4 1 ml KmnO 4 (0.1N) setara dengan gram tanin i. Kadar Xanthone Penentuan total xanthone dilakukan dengan menggunakan prinsip metode Boyko (1982) dengan menggunakan nilai estimasi -mangostin. Mulamula sebanyak 10 ml sampel diekstrak menggunakan 10 ml etil asetat sebanyak tiga kali. Hasil ekstraksi tersebut kemudian diuapkan menggunakan rotavapor pada suhu 60 C hingga diperoleh padatan kuning. Padatan tersebut kemudian dilarutkan ke dalam 10 ml metanol untuk kemudian diukur absorbansinya menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang 320 nm. Perhitungan yang digunakan dapat dilihat di bawah ini. Keterangan: C= Jumlah xanthone (mg/ml sampel) = A = Absorbansi b = Lebar kuvet (mm) ε = emisifikasi -mangostin (3.16 x 10 3 liter/mol) C = konsentrasi ekstrak (mol/liter) BM = A ε x b C x BM x 10 x FP ml sampel massa molekul relatif -mangostin ( gr/mol) j. Nilai ph (Apriyanto et al., 1989) Pengukuran derajat keasaman (ph) dilakukan dengan phmeter. Sebelumnya alat dikalibrasi dengan buffer ph 7 dan ph 4. Kemudian 25 ml sampel dimasukkan ke dalam gelas piala. Elektroda siap ditempatkan dalam sampel, sehingga dapat dibaca nilai ph yang terukur.

7 k. Total Gula (Modifikasi Apriyantono et al) 1. Pembuatan Kurva Standar Pipet sebanyak 2 ml larutan fruktosa standar yang mengandung 0, 10, 20, 30, 40, dan 60 µ glukosa yang masing-masing dimasukkan ke dalam tabung reaksi. Tambahkan 1 ml larutan fenol 5%, kocok dan secara cepat masukkan 5 ml larutan asam sulfat pekat. Ukur absorbansi larutan pada panjang gelombang 490 nm setelah larutan dirasa dingin. 2. Penetapan Sampel Masukkan 2 ml sampel ke dalam tabung reaksi, kemudian tambahkan 1 ml larutan fenol dan 5 ml larutan asam sulfat pekat. Hitung absorbansi pada panjang gelombang 490 nm setelah larutan dingin. Sampel yang digunakan untuk pengujian harus berwarna bening. Gunakan pengenceran jika sampel berwarna keruh. Hitung nilai total gula berdasarkan kurva standar. l. Kadar Vitamin C Sebanyak 10 gram bahan dimasukkan ke dalam labu ukur 250 ml, dan ditepatkan hingga tera. Sampel kemudian dimasukkan ke dalam erlenmeyer sebanyak 25 ml dan ditambahkan dengan 1 ml larutan kanji 10% dan kemudian titrasi dengan cepat memakai larutan yod 0.01 N sampai timbul perubahan warna. Setiap ml yod 0.01 N sebanding dengan 0.88 mg asam askorbat, sehingga kadar asam askorbat (vitamin C) dari bahan dapat dihitung dengan rumus: A= ml yod 0.01 N x 0.88 x P x 100 bobot contoh Keterangan: A= miligram asam askorbat per 100 gram bahan P= Jumlah pengenceran

8 m. Total Mikroba Sebanyak 1 ml sampel diambil dan dimasukkan ke dalam 9 ml larutan pengencer. Selanjutnya dilakukan pengocokan hingga homogen. Pengenceran dan pemupukan dilakukan hingga tingkat Dari pengenceran 10-2 dan 10-3, dipipet secara aseptis 1 ml untuk dimasukkan ke dalam cawan petri steril (pemupukan) secara duplo dan ditambahkan media PCA (Plate Count Agar) steril sebanyak ml. Segera setelah penuangan, cawan petri digerakkan di atas meja secara hati-hati untuk menyebarkan sel-sel mikroba secara merata, yaitu dengan gerakan melingkar atau angka delapan. Setelah medium membeku, cawan petri diinkubasikan dengan posisi terbalik pada inkubator suhu 37 o C selama 2 hari (48 jam).

9 Lampiran 2. Rekapitulasi Hasil Karakterisasi Ekstrak Kulit Manggis Parameter yang diamati Perlakuan Ulangan Ethanol:Air K. Xanthone K. Antosianin K. Serat K. Tanin (mg/100 ml) (mg/g) (%) (%) 1: Rata-rata : Rata-rata : Rata-rata

10 Lampiran 3. Tabel Analisa Keragaman Kadar Xanthone Sumber Keragaman df SS MS F Hitung Rata-Rata F Tabel (α=0.05) Perlakuan Error Total Kesimpulan: Fhitung > Ftabel maka terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan Uji Lanjut Duncan Pengaruh Perbandingan Ethanol-Air terhadap Kadar Xanthone Perlakuan Rata-Rata Pengelompokan Duncan 1: a 1: a 1: b Kesimpulan: pengelompokan Duncan dengan huruf yang sama menyatakan tidak berbeda nyata

11 Lampiran 4. Tabel Analisa Keragaman Kadar Antosianin Sumber Keragaman df SS MS F Hitung F Tabel (α=0.05) Rata-Rata Perlakuan Error Total Kesimpulan : F hitung < F tabel maka tidak terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan

12 Lampiran 5. Tabel Analisa Keragaman Kadar Serat Sumber Keragaman df SS MS F Hitung F Tabel (α=0.05) Rata-Rata Perlakuan Error Total Kesimpulan : Fhitung > Ftabel maka terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan Uji Lanjut Duncan Pengaruh Perbandingan Ethanol-Air terhadap Kadar Serat Perlakuan Rata-Rata Pengelompokan Duncan 1:2 0,19 a 1:3 0,16 a b 1:4 0,12 b Kesimpulan: pengelompokan Duncan dengan huruf yang sama menyatakan tidak berbeda nyata

13 Lampiran 6. Tabel Analisa Keragaman Kadar Tanin Sumber Keragaman df SS MS F Hitung F Tabel (α=0.05) Rata-Rata Perlakuan Error Total Kesimpulan : F hitung < F tabel maka tidak terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan

14 Lampiran 7. Rekapitulasi Nilai Hedonik Aroma Sirup Xanthone Panelis Kode Perlakuan A1 A2 A Total Rata-Rata Keterangan: A1: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:2 A2: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:3 A3: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:4

15 Lampiran 8. Tabel Analisa Keragaman Aroma Sirup Xanthone Sumber Keragaman df SS MS F Hitung F Tabel (α=0.05) Rata-Rata Perlakuan (Ai) Kelompok (Bj) Error Total Kesimpulan : F hitung < F tabel maka tidak terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan

16 Lampiran 9. Rekapitulasi Nilai Hedonik Rasa Sirup Xanthone Panelis Perlakuan A1 A2 A Total Rata-Rata Keterangan: A1: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:2 A2: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:3 A3: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:4

17 Lampiran 10. Tabel Analisa Keragaman Rasa Sirup Xanthone Sumber Keragaman df SS MS F Hitung F Tabel (α=0.05) Rata-Rata Perlakuan (Ai) Kelompok (Bj) Error Total Kesimpulan : F hitung < F tabel maka tidak terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan

18 Lampiran 11. Rekapitulasi Nilai Hedonik Warna Sirup Xanthone Panelis Perlakuan A1 A2 A Yi Rata-Rata Keterangan: A1: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:2 A2: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:3 A3: Sirup dari hasil ekstrak kulit manggis 1:4

19 Lampiran 12. Tabel Analisa Keragaman Rasa Sirup Xanthone Sumber Keragaman df SS MS F Hitung F Tabel (α=0.05) Rata-Rata Perlakuan (Ai) Kelompok (Bj) Error Total Kesimpulan : F hitung > F tabel maka terdapat perbedaan yang nyata antar perlakuan Uji Lanjut Duncan terhadap Rasa Sirup Xanthone Perlakuan Rata-Rata Pengelompokan Duncan A a A b A b Kesimpulan: pengelompokan Duncan dengan huruf yang sama menyatakan tidak berbeda nyata

20 Lampiran 13. Grafik Kurva Standar Fenol Total Gula (ppm) y = x R 2 = Absorbansi Total Gula Sirup Xanthone Ulangan Absorbansi Pengenceran Total Gula Total Gula (ppm) (%) , , Total 604,