Lampiran 1. Universitas Sumatera Utara

Transkripsi

1 Lampiran 1

2 Lampiran 2

3 Lampiran 3

4 Lampiran 4 Uji Kadar Sulfur Dioksida (SO 2 ) Uji kadar sulfur dioksida dengan menggunakan acuan metode SNI Lingkup pengujian meliputi (SNI, 2005): 1. Cara pengambilan contoh uji gas sulfur dioksida dengan menggunakan larutan penyerap. 2. Cara penghitungan volum contoh uji gas yang diserap. 3. Cara penentuan gas sulfur dioksida di udara ambient dengan metoda pararosanilin menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang 550 nm dengan kisaran konsentrasi 0,01 ppm sampai 0,4 ppm udara atau 25 g/m 3 sampai 1000μg/m Acuan normatif mengacu kepada ASTM D , Test method for fulfur dioxide content of the atmosphere ( West-Gaeke Method). Istilah dalam pengujian ini meliputi (SNI, 2005): 1. Udara ambient, udara bebas di permukaan bumi pada lapisan troposfir yang dibutuhkan dan mempengaruhi kesehatan manusia, mahluk hidup dan unsure lingkungan hidup lainnya. 2. μg/nm 3, satuan ini dibaca sebagi microgram per normal meter kubik, notasi N menunjukkan satuan volum hisap udara kering di koreksi pada kondisi normal (25 0 C,760 mmhg). 3. Midget impringer, botol tempat penyerap contoh uji yang dilengkapi dengan ujung silinder gelas yang berada di dasar labu dengan maksimum diameter dalam 1 mm.

5 4. Larutan induk, larutan dasar konsentrasi tinggi yang digunakan untuk membuat larutan standar konsentrasi lebih rendah. 5. Larutan standar, larutan dengan konsentrasi yang telah diketahui untuk digunakan sebagai pembanding di dalam pengujian. 6. Kurva kalibrasi, grafik yang menyatakann hubungan antara konsentrasi larutan standar dengan hasil pembacaan serapan dan merupakan suatu garis lurus. 7. Larutan penyerap, larutan yang dapat menyerap analat. 8. Blanko laboratorium, larutan penyerap yang diperlakukan sebagai control kontaminasi selama preparasi dan penentuan contoh uji di laboratorium. 9. Blanko lapangan, larutan penyerap yang diperlakukan sebagai control kontaminasi selama pengambilan contoh uji. 10. Pengendalian mutu, kegiatan yang bertujuan untuk memantau kesalahan analisis, baik berupa kesalahan metode, kesalahan manusia, kontaminasi, maupun kesalahan pengambilan contoh uji dan perjalanan laboratorium. 1. Cara Uji Bahan Bahan yang digunakan dalam uji konsentrasi sulfur dioksida terdiri dari : ( lampiran ) 1. Larutan penyerap tetrakloromerkurat ( TCM ) 0,04 M 2. Larutan induk natrium metabisulfit (Na 2 S 2 O 5 ) 3.Larutan standar natrium metabisulfit ( Na2S 2 O 5 ). 4. Larutan induk iod (I 2 ) 0,1 N 5. Larutan iod 0,01 N 8. Larutan induk natrium tio sulfat (Na 2 S 2 O 3 ) 0,1 N.

6 9. Larutan Na 2 S 2 O 3 0,01N 10. Larutan asam klorida ( HCL ) 1 M 12. Larutan asam fosfat (H 3 PO 4 ) 3 M 13. Larutan induk pararosanilin hidroklorida (C 14. Penentuan kemurnian pararosanilin 15. Larutan kerja pararosanilin 16. Larutan formaldehida (HHO) 0,2% v/v 17. Larutan penyangga asetat 1 M (ph = 4,74 ) 19H 17 N 3.HCL) 0,2% Peralatan Peralatan terdiri dari : 1. Labu ukur 50 ml; 100 ml; 250 ml; 1000 ml 2. Pipet volumetric 1 ml; 2 ml; 5 ml; 50 ml 3. Gelas ukur 100 ml 4. Gelas piala 100 ml; 250 ml; 500 ml; 1000 ml 5. Tabung uji 25 ml 6. Spektrofotometer UV - Vis dilengkapi dengan kuvet 7. Timbangan analitik dengan ketelitian 0,1 mg 8. Buret 50 ml 9. Labu Erlenmeyer asah bertutup 250 ml 10. Oven 11. Kaca arloji 12. Thermometer 13. Baro eter

7 14. Pengaduk 15. Botol pereaksi 2. Pengambilan contoh uji Pengambilan contoh uji terdiri dari pengambilan contoh uji 1 jam, 2 jam dan 24 jam. Pengambilan contoh ini tergantung dari jenis alat yang tersedia. Dari data laboratorium Biro Lingkungan Hidup Provinsi Sumatera Utara bahwa alat yang tersedia adalah untuk pengambilan contoh uji selama 2 jam. Peralatan ini telah menjadi standarisasi Badan Standarisasi Nasional Indonesia (BLH, 2011). Langkah langkah pengambilan contoh uji adalah sebagi berikut (SNI,2005): a. Masukkan larutan penyerap SO 2 sebanyak 10 ml ke masing masing botol penyerap. Atur botol penyerap agar terlindung dari hujan dan senar matahari langsung. b. Hidupkan pompa penghisap udara dan atur kecepatan alir 0,5 L/menit sampai 1 L/menit, setelah stabil catat laju alir awal F c. Lakukan pengambilan contoh uji selama 1 sampai 2 jam dan catat temperatur dan tekanan udara. 1 ( L/menit). d. Setelah 2 jam, catat laju alir akhir F 2 ( L/menit ) dan kemudian matikan pompa penghisap. e. Diamkan selama 20 menit setelah pengambilan contoh uji untuk menghilangkan pengganggu

8 Contoh alat dapat dilihat pada gambar di bawah ini : 3.Persiapan Pengujian 1.Standarisasi larutan natrium tiosulfat 0.01N a. Panaskan kalium iodat (KIO 3 ) pada suhu C selama 2 jam dan didinginkan dalam desikator. b. Larutkan 0,09 g kalium iodat (KIO tambahkan air suling sampai tanda tera, lalu homogenkan. c. Pipet 25 ml Larutan kalium iodat ke dalam labu Erlenmeyer asah 250 ml. d. Tambahkan 1 g KL dan 10 ml HCL (1+10) ke dalam labu Erlenmeyer tersebut. 3 ) ke dalam labu ukur 250 ml dan

9 e. Tutup labu Erlenmeyer dan tunggu 5 menit, titrasi larutan dalam Erlenmeyer dengan larutan tiosulfat 0,1N sampai warna larutan kuning muda. f. Tambahkan 5 ml indicator kanju, dan lanjutkan titrasi sampai titk akhir (warna biru tepat hilang), catat volum larutan penitar yang diperlukan. g. Hitung normalitas larutan natrium tio sulfat tersebut dengan rumor sebagai berikut: Dengan pengertian : N = b x 1000 x V 35,67 x 250 x V 2 1 N : konsentrasi larutan natrium tio sulfat dalam grek/l (N): B : bobot KIO 3 dalam 250 ml air suling (g): V1 : volum KIO 3 yang digunakan dalam titrasi (ml) V 2 : volum larutan natrium tiosulfat hasil titrasi (ml); 35,67 : bobot ekivalen KIO3 (KIO 3 /6) 1000 : volum larutan KIO 1000 : konversi liter (L) ke ml 3 yang dibuat dalam labu ukur 250 ml 2. Penentuan Konsentrasi SO 2 dalam larutan induk Na 2 S 2 O 5 a) Pipet 25 ml larutan induk Na2S 2 O 5 pada langkah ke dalam labu Erlenmeyer asah dan pipet 50ml larutan iod 0,01 N ke dalam labu dan simpan dalam ruangan tertutup selama 5 menit b) Titrasi larutan dalam Erlenmeyer dengan larutan tio 0,01 N sampai warna larutan kuning muda c) Tambahkan 5 ml indicator kanji,dan lanjutkan titrasi sampai titik akhir (warna biru tepat hilang), catat volum larutan penitar yang diperlukan (V c ).

10 d) Pipet 25 ml air suling sebagai blanko ke dalam Erlenmeyer asah dan lakukan langkah-langkah diatas (V b ). e) Hitung konsentrasi SO 2 dalam larutan induk tersebut dengan rumus sebagai berikut : C= (V b -V c ) x N x 32,03 x 1000 V a Dengan pengertian : C adalah konsentrasi SO 2 dalam larutan induk Na 2 S 2 O 5 (ug/ml) Vb adalah volum natrium tio sulfat hasil titrasi blanko (ml) Vc adalah volum natrium tio sulfat hasil titrasi larutan induk Na 2 S 2 O 5 (ml) N Va adalah normalitas larutan natrium tio sulfat 0,01 N (N) adalah volum larutan induk Na 2 S 2 O 5 yang dipipet (ml) 1000 adalah konversi gram ke ug; 32,03 adalah berat ekivalen SO 2 (BM SO 2 /2) Melalui rumus diatas dapat diketahui jumlah (ug) S)2 tiap ml larutan induk Na2S 2 O 5, sedangkan jumlah (ug) SO 2 untuk tiap ml larutan standar dihitung dengan memperhatikan faktor pengenceran. 3. Pembuatan Kurva Kalibrasi a) Optimalkan alat spektrofotometer sesuai petunjuk penggunaan alat b) Masukkan masing-masing 0,0 ml; 1,0 ml; 2,0 ml;3,0 ml dan 4,0 ml larutan standar Na 2 S 2 O 5 pada langkah kedalam tabung uji 25 ml dengan menggunakan pipet volum atau buret mikro. c) Tambahkan larutan penjerap sampai volum 10 ml

11 d) Tambahkan 1 ml larutan asam sulfamat 0,6% dan tunggu sampai 10 menit e) Tambahkan 2,0 ml larutan formaldehida 0,2% f) Tambahkan 5,0 ml larutan pararosanilin g) Tepatkan dengan air suling sampai volum 25 ml, lalu homogenkan dan tunggu sampai menit h) Ukur Serapan masing-masing larutan standar dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 550 nm. i) Buat kurva kalibrasi antara serapan dengan jumlah SO 2 (ug) 1. Pengujian Contoh Uji 1. Pengujian contoh uji untuk pengambilan contoh uji selama 1 jam a.pindahkan larutan contoh uji kedalam tabung uji 25 ml dan tambahkan 5 ml air suling untuk membilas. b. lakukan langkah-langkah pada butir d sampai h. c. baca serapan contoh uji kemudian hitung konsentrasi dengan menggunakan kurva kalibrasi d.lakukan langkah-langkah diatas untuk pengujian blanko dengan menggunakan 10 ml larutan penyerap. 2. Pengujian contoh uji untuk pengambilan contoh uji selama 24 jam a. pindahkan larutan contoh uji ke dalam labu ukuran 50 ml, bilas dan tepatkan dengan larutan penjerap lalu homogenkan b. pipet 5 ml larutan diatas masukkan ke dalam tabung uji 25 ml dan tambahkan 5 ml larutan penjerap.

12 c.lakukan langkah-langkah pada butir d) sampai h) d. baca serapan contoh uji kemudian hitung konsentrasi dengan menggunakan kurva kalibrasi e. lakukan langkah-langkah diatas untuk pengujian blanko dengan menggunakan 10 ml larutan penyerap. 3. Volum contoh uji udara yang diambil Volum contoh uji udara yang diambil dikoreksi pada kondisi normal (25 o C, 760 mmhg) dengan menggunakan rumus sebagai berikut: V=F1+F 2 x t x P a x Ta 760 dengan pengertian: V F 1 F T 2 P a : volum udara yang dihisap (L); : laju alir awal (L/menit); : laju alir akhir (L/menit); : durasi pengambilan contoh uji (menit); : tekanan barometer rata-rata selama pengambilan contoh uji T a : (mmhg); temperatur rata-rata selama pengambilan contoh uji (K); 298 : temperatur pada kondisi normal 25 C (K); 760 : tekanan pada kondisi normal 1 atm (mmhg) o

13 4. Konsentrasi sultur dioksida (SO 2 ) di udara ambient a. Konsentrasi SO 2 dalam contoh uji untuk pengambilan contoh uji selama 1 jam dapat dihitung dengan rumus sebagai berikut: C= a x 1000 v dengan pengertian: C : konsentrasi SO 2 di udara(ug/nm3) a : jumlah SO 2 dari contoh uji dengan melihat kurva kalibrasi (ug) v : volum udara pada kondisi normal (L) 1000:adalah konversi liter (L) ke m3 b. Konsentrasi SO 2 dalam contoh uji untuk pengambilan contoh uji selama 24 jam dapat dihitung dengan rumus sebagai berikut: C = a x 1000 x 50 v 5 dengan pengertian: C : konsentrasi SO 2 di udara (ug/nm a : jumlah SO 2 dari contoh uji dengan melihat kurva kalibrasi (ug); v : volum udara kondisi normal (L); 50 : jumlah total larutan penjerap yang dipakai untuk pengambilan contoh uji 24 jam; 5 : volum yang dipipet untuk dianalisis dengan Spektrofotometer. 3)

14 2. Jaminan mutu dan pengendalian mutu 1. Jaminan mutu a.gunakan thermometer dan barometer yang terkalibrasi b.gunakan alat ukur laju alir (flow meter) yang terkalibrasi. c. hindari terjadinya penguapan yang berlebihan dari larutan penjerap dalam botol penjerap, gunakan aluminium foil atau box pendingin sebagai pelindung terhadap matahari. d. pertahankan suhu larutan penjerap dibawah 25 o C selama pengangkutan ke laboratorium dan penyimpanan sebelum analisa, untuk menghindari kehilangan SO 2 e. hindari pengambilan contoh uji pada saat hujan 2. Pengendalian mutu Uji blanko a. Uji blanko laboratorium Menggunakan larutan penjerap sebagai contoh uji (blanko) dan dikerjakan sesuai dengan penentuan contoh uji untuk mengetahui kontamonasi, baik terhadap pereaksi yang digunakan maupun terhadap tahap-tahap selama penentuan di laboratorium. b. Uji blanko lapangan Menggunakan larutan penjerap sebagai contoh uji (blanko) dan dikerjakan sesuai dengan penentuan contoh uji untuk mengetahui

15 kontaminasi, baik terhadap pereaksi yang digunakan maupun terhadap tahap-tahap selama penentuan di lapangan Linieritas kurva kalibrasi Koefisian korelasi (r) lebih besar atau sama dengan 0,998 (atau sesuai dengan kemampuan laboratorium yang bersangkutan) dengan intersepsi lebih kecil atau sama dengan batas deteksi. Jaminan dan pengendalian mutu dilakukan sesuai dengan kebijaksanaan laboratorium yang bersangkutan.

16 Lampiran 5 Pemeriksaan C-Reactive Protein Metoda ELISA (Quantikine ELISA R & D System) 1. Peralatan 1. Microplate reader yang mampu mengukur absorban pada 450 nm dengan koreksi gelombang pada 540nm atau 570nm 2. Pipet dan pipet tips 3. Air destilasi 4. Squirt bottle, manifold dispenser atau automated microplate washer ml, 500 ml graduated cylinders 6. Polypropylene test tubes untuk larutan standard an sampel 7. Human CRP Control. 8. Serum, sampel disentrifugasi selama 15 menit dengan 1000xg, simpan dalam temperature < C 9. Reagen CRP standar 2. Cara Kerja 1. Siapkan reagen, larutan standar, dan sampel 2. Ambil micropalte strips dari plate frame 3. Tambahkan 100μL Assay diluents RD1F kedalam setiap sumur. 4. Tambahkan 50μL standar. Tutup dengan perekat dan diinkubasi selama 2 jam dalam temperature kamar.

17 5. Aspirat dari setiap sumur dan cuci, ulangi proses sebanyak 3 sampai 4 kali pencucian. Cuci dengan memasukkan Wash buffer (400μL) menggunakan squirt bottle 6. Tambahkan 200 μl CRP Conjugate kedalam setiap sumur, tutup dengan strip baru, inkubasi selama 2 jam pada temperature kamar. 7. Ulangi aspirat dan pencucian sepertk dalam langkah Tambahkan 200μL Stop Solution ke setiap sumur. Inkubasi selama 30 menit pada temperature kamar. Hindari cahaya. 9. Tambahkan 50μL Stop Solution kedalam setiap sumur. Perhatikan warna perubahan biru ke warna kuning. 10. Lakukan penjelasan densitas optic setiap sumur dalam waktu 30 menit dengan microplate reader.

18 Lampiran 6 Uji Spirometri 1.Peralatan Alat yang digunakan adalah Alpha Spirometer produksi Vitalograph, Ireland. Spirometri Vitalograph,Ireland 2. Cara Kerja: a. Letakkan alat spirometer pada tempat permukaan rata b. Pasangkan tube dengan lengkap c. Hubungkan alat dan pasangkan kabel arus pada tempatnya d. Responden / sampel dalam posisi berdiri tegak, bila tidak memungkinkan responden untuk berdiri, maka diperbolehkan dalam posisi duduk. e. Ukur tinggi badan responden.

19 f. Tentukan besar nilai dugaan nilai standar paru Pneumobile Project Indonesia g. Nyalakan alat spirometer. h. Lakukan kalibrasi dengan menggunakan alat kalibrasi i. Masukkan data sesuai yang tertera pada alat spirometer ( identitas, tanggal lahir, tinggi badan, jenis kelamin dan ras ) j. Responden menarik napas secara maksimal k. Masukkan tube filter ( mouthpiece ) ke dalam rongga mulut responden l. Lakukan ekspirasi ( meniup ) secara perlahan-lahan dengan usaha yang merata sampai mencapai titik ekspirasi maksimal untuk memperoleh Kapasitas Vital m. Pengukuran dilakukan sebanyak 3 kali n. Kembalikan tube mouthpiece ketempatnya. o. Cetak data setelah dilakukan pengujian fungsi paru p. Bersihkan tube dan dikembalikan ke tempat semula q. Penandatanganan oleh responden pada lembar data yang telah dicetak oleh alat spirometri untuk keaslian data pemeriksaan. 3. Pengukuran dan Nilai Tabel 3.2. Derajat Gangguan Fungsi Paru Keparahan Persen Prediksi VEP1 Ringan > 70% Sedang 60-69% Sedang Berat 50-59% Berat 35-49%

20 Sangat Berat < 35% Lampiran 7

21 Lampiran 8

22 Lampiran 9

23 Lampiran 10

24 Lampiran 11

25 Lampiran I2

26 Alat Absorpsi S02 Alat Uji Spiometri C. Proses Pengambilan Absorpsi SO 2 di SPBU

27 D. Proses Pemeriksaan Serum CRP di Laboratorium

28

29 Lampiran 13.b Jenis Kelamin

30 Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Laki-Laki Valid Perempuan Total Kategori Lama Kerja Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent < 5 tahun Valid >= 5 tahun Total Interpretasi Spirometri Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Normal Valid Restriksi Restriksi + Obstruksi Total Lokasi SPBU Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Valid Total Correlations

31 Kadar SO2 10 Jumlah Jam Kendaraan Pearson Correlation ** Kadar SO2 10 Jam Sig. (2-tailed).000 N ** Pearson Correlation Jumlah Kendaraan Sig. (2-tailed).000 N **. Correlation is significant at the 0.01 level (2-tailed). Paired Samples Test Mean Paired Differences t df Sig. Std. Deviation Std. Error Mean 95% Confidence Interval of the Difference (2- tailed ) Lower Upper Kadar Pai r 1 SO2 10 Jam - Jumlah Kendaraa n Count Kategori Lama Kerja * Interpretasi Spirometri Crosstabulation Interpretasi Spirometri Total Normal Restriksi Restriksi + Obstruksi < 5 tahun Kategori Lama Kerja >= 5 tahun Total

32 Count Jenis Kelamin * Interpretasi Spirometri Crosstabulation Interpretasi Spirometri Total Normal Restriksi Restriksi + Obstruksi Laki-Laki Jenis Kelamin Perempuan Total Descriptives Kategori Lama Kerja Statistic Std. Error Mean % Confidence Interval for Mean Lower Bound Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance < 5 tahun Std. Deviation Minimum Maximum Range Interquartile Range Skewness Kadar SO2 10 Jam Kurtosis Mean % Confidence Interval for Mean Lower Bound Upper Bound % Trimmed Mean Median >= 5 tahun Variance Std. Deviation Minimum Maximum Range Interquartile Range Skewness

33 Nilai h-crp Nilai VEP1/KVP Kurtosis Mean % Confidence Interval for Lower Bound Mean Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance.003 < 5 tahun Std. Deviation Minimum Maximum Range Interquartile Range Skewness Kurtosis Mean % Confidence Interval for Lower Bound Mean Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance.001 >= 5 tahun Std. Deviation Minimum Maximum Range Interquartile Range Skewness Kurtosis Mean % Confidence Interval for Lower Bound Mean Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance < 5 tahun Std. Deviation Minimum 47 Maximum 101 Range 54 Interquartile Range 10 Skewness Kurtosis >= 5 tahun Mean

34 Nilai VEP1 Pred (%) Nilai KVP Pred (%) < 5 tahun >= 5 tahun < 5 tahun 95% Confidence Interval for Lower Bound Mean Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance Std. Deviation Minimum 63 Maximum 98 Range 35 Interquartile Range 7 Skewness Kurtosis Mean % Confidence Interval for Lower Bound Mean Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance Std. Deviation Minimum 25 Maximum 155 Range 130 Interquartile Range 24 Skewness Kurtosis Mean % Confidence Interval for Lower Bound Mean Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance Std. Deviation Minimum 36 Maximum 102 Range 66 Interquartile Range 21 Skewness Kurtosis Mean % Confidence Interval for Lower Bound Mean Upper Bound 92.74

35 >= 5 tahun 5% Trimmed Mean Median Variance Std. Deviation Minimum 35 Maximum 167 Range 132 Interquartile Range 22 Skewness Kurtosis Mean % Confidence Interval for Lower Bound Mean Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance Std. Deviation Minimum 45 Maximum 95 Range 50 Interquartile Range 20 Skewness Kurtosis Mean % Confidence Interval for Mean Lower Bound Upper Bound % Trimmed Mean Median Variance < 5 tahun Std. Deviation Nilai FEF % Minimum 12 Maximum 219 Range 207 Interquartile Range 48 Skewness Kurtosis Mean >= 5 tahun 95% Confidence Interval for Mean Lower Bound Upper Bound 99.09

36 5% Trimmed Mean Median Variance Std. Deviation Minimum 19 Maximum 142 Range 123 Interquartile Range 27 Skewness Kurtosis Tests of Normality a Kategori Lama Kerja Kolmogorov-Smirnov Shapiro-Wilk Statistic df Sig. Statistic df S Kadar SO2 10 Jam Nilai h-crp Nilai VEP1/KVP Nilai VEP1 Pred (%) Nilai KVP Pred (%) Nilai FEF % < 5 tahun >= 5 tahun < 5 tahun >= 5 tahun * < 5 tahun >= 5 tahun < 5 tahun >= 5 tahun * < 5 tahun >= 5 tahun * < 5 tahun * >= 5 tahun *. This is a lower bound of the true significance. a. Lilliefors Significance Correction Test of Homogeneity of Variance Levene Statistic df1 df2 Sig. Based on Mean Based on Median Kadar SO2 10 Jam Based on Median and with adjusted df Based on trimmed mean

37 Nilai h-crp Nilai VEP1/KVP Nilai VEP1 Pred (%) Nilai KVP Pred (%) Based on Mean Based on Median Based on Median and with adjusted df Based on trimmed mean Based on Mean Based on Median Based on Median and with adjusted df Based on trimmed mean Based on Mean Based on Median Based on Median and with adjusted df Based on trimmed mean Based on Mean Based on Median Based on Median and with adjusted df Based on trimmed mean Based on Mean Based on Median Nilai FEF % Based on Median and with adjusted df Based on trimmed mean Correlations

38 Kategori Nilai Nilai Nilai Nilai Nilai Lama h- VEP1/KVP VEP1 KVP FEF Kerja CRP Pred Pred (%) (%) % Kategori Lama Kerja Correlation Coefficient Sig. (2- tailed) * N Nilai h- CRP Correlation Coefficient Sig. (2- tailed) N Nilai VEP1/KVP Correlation Coefficient Sig. (2- tailed) * * ** Spearman's rho Nilai VEP1 Pred (%) N Correlation Coefficient * **.705 ** Sig. (2- tailed) N Nilai KVP Pred (%) Correlation Coefficient Sig. (2- tailed) ** ** N Nilai FEF % Correlation Coefficient Sig. (2- tailed) **.705 **.527 ** *. Correlation is significant at the 0.05 level (2-tailed). N **. Correlation is significant at the 0.01 level (2-tailed).