PENGARUH INFUSA DAUN JAMBU BIJI (Psidium guajava, Linn) TERHADAP KEMATIAN Ascaris suum, Goeze IN VITRO

Transkripsi

1 PENGARUH INFUSA DAUN JAMBU BIJI (Psidium guajava, Linn) TERHADAP KEMATIAN Ascaris suum, Goeze IN VITRO SKRIPSI Untuk Memenuhi Persyaratan Memperoleh Gelar Sarjana Kedokteran RISANG GALIH S G FAKULTAS KEDOKTERAN UNIVERSITAS SEBELAS MARET SURAKARTA 2010

2 PENGESAHAN SKRIPSI Skripsi dengan judul : Pengaruh Infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) terhadap Kematian Ascaris suum, Goeze In vitro Risang Galih S, G , Tahun 2010 Telah diuji dan sudah disahkan di hadapan Dewan Penguji Skripsi Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret Pada Hari Kamis, 4 November 2010 Pembimbing Utama Nama : Sri Haryati, Dra., MKes. NIP : ( ) Pembimbing Pendamping Nama : Sutartinah Sri Handayani, Dra. NIP : ( ) Penguji Utama Nama : Murkati, dr., MKes., Sp.ParK NIP : ( ) Anggotan Penguji Nama : Moch.Arief Tq., dr., MS., PHK NIP : ( ) Surakarta,... Ketua Tim Skripsi Dekan FK UNS Muthmainah, dr., M.Kes Prof. Dr. AA Subijanto, dr., MS. NIP : NIP : ii

3 PERNYATAAN Dengan ini menyatakan bahwa dalam skripsi ini tidak terdapat karya yang pernah diajukan untuk memperoleh gelar kesarjanaan di suatu perguruan tinggi, dan sepanjang pengetahuan saya juga tidak terdapat karya atau pendapat yang pernah ditulis atau diterbitkan oleh orang lain. Kecuali yang secara tertulis diacu dalam naskah dan disebutkan adalah daftar pustaka. Surakarta, November 2010 RISANG GALIH S NIM. G iii

4 ABSTRAK Risang Galih S., G , Pengaruh Infusa Daun Jambu Biji terhadap Kematian Ascaris suum, Goeze In vitro. Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret Surakarta. Tujuan Penelitian : Untuk mengetahui pengaruh infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) terhadap kematian Ascaris suum, Goeze In vitro. Metode Penelitian : Eksperimental laboratorik dengan post test only controlled group design, menggunakan cacing Ascaris suum dewasa, dibagi dalam 5 kelompok (kelompok kontrol negatif, infusa 60%, infusa 80%, infusa 100%, kelompok obat pembanding, yaitu pyrantel pamoate dengan konsentrasi 5mg/ml). Teknik pengambilan sampel dengan metode purposive sampling. Cacing direndam dalam larutan uji sebanyak 25 ml, diinkubasi pada suhu 37 0 C. Pengamatan dilakukan tiap 1 jam selama 7 jam dan dihitung jumlah cacing yang mati tiap jam. Data dinalisis dengan uji one way ANOVA dilanjutkan uji Post Hoc Least Significance Difference (LSD) dengan tingkat kemaknaan p<0,05. Hasil Penelitian : Terdapat peningkatan jumlah kematian cacing yang sebanding dengan peningkatan konsentrasi infusa daun jambu biji pada konsentrasi 60% hingga 100%. Pada uji One Way ANOVA yang kemudian dilanjutkan dengan uji Post Hoc LSD dapat disimpulkan bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 100% mempunyai efektivitas yang sebanding atau hampir sama dengan pyrantel pamoate yang merupakan drug of choice untuk askariasis. Simpulan Penelitian : Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa infusa daun jambu biji mempunyai pengaruh terhadap kematian Ascaris suum, Goeze In vitro. Kata kunci : Infusa Daun Jambu Biji, Ascaris suum, In vitro iv

5 ABSTRACT Risang Galih S, G , Effect of Guava Leaf Infusa (Psidium guajava, Linn) Toward Ascaris suum, Goeze In vitro. Medical Faculty University of Sebelas Maret Surakarta Objective: To understand the effect of guava leaf infusa (Psidium guajava, linn) toward Ascaris suum, goeze In vitro. Methods : Experimental laboratoric, with post-test only control group design using adult Ascaris suum, Goeze divided into five groups. NaCl 0,9% for negative control, intervention using 60%, 80%, and 100% concentration of guava leaf infusa, and pyrantel pamoate 5mg/ml solution for positive control. Observation is done in every hour until 7 hours and the death worm is counted. Data is analyzed with One Way ANOVA test continued with Post Hoc Least Significance Difference (LSD) significant (p<0,05). Result : The number of death worm is increase in proportion to the increase of guava leaf infusa consentration, start at 60% to 100%. From statistical analysis, this can be concluded that 100% guava leaf infusa has an equivalent effectiveness to pyrantel pamoate that is drug of choice for askariasis. Conclusion : From the research result, it can be concluded that guava leaf infusa has effect toward Ascaris suum, Goeze In vitro. Keywords: Guava Leaf Infusa, Ascaris suum, In vitro v

6 PRAKATA Puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT karena limpahan nikmat, rahmat, hidayah, serta ridhonya sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi dengan judul Pengaruh Infusa Daun Jambu Biji terhadap Kematian Ascaris suum, Goeze In vitro. Skripsi ini diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kedokteran di Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret Surakarta. Dalam menyelesaikan skripsi ini, penulis bahyak mendapatkan pengarahan, bimbingan, bantuan dan dukungan dari berbagai pihak, oleh karena itu perkenankanlah dengan setulus hati penulis menyampaikan terima kasih kepada : 1. Prof. Dr. A.A. Subijanto, dr., MS, selaku Dekan Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret Surakarta. 2. Muthmainah, dr., M.Kes. selaku Ketua Tim Skripsi Fakultas Kedokteran Universitas Sebelas Maret Surakarta. 3. Sri Haryati, Dra., M.Kes. selaku pembimbing utama yang telah memberikan nasehat, koreksi, kritik dan saran untuk menyempurnakan penyusunan skripsi. 4. Murkati, dr., M.Kes., SpPark sebagai penguji utama yang telah berkenan memberikan waktu bimbingan, saran dan motivasi bagi penulis. 5. Sutartinah Sri Handayani, Dra. sebagai pembimbing pendamping yang telah berkenan memberikan waktu bimbingan, saran dan motivasi bagi penulis. 6. Moch Arief Tq., dr., MS., PHK. Selaku anggota penguji yang telah memberikan nasihat, koreksi, kritik dan saran untuk menyempurnakan penyusunan skripsi. 7. Bapak dan ibu yang selalu memberikan dukungan, doa, semangat, dan selalu mengorbankan segalanya demi kebahagiaan putra-putranya. 8. Reza, Udin, Irfan, Rani, Indi, Teguh, Sahid, atas bantuan yang diberikan untuk penyusunan skripsi ini. 9. Semua pihak yang telah memberi bantuan secara langsung maupun tidak langsung sehingga membantu selesainya skripsi ini. Penulis menyadari sepenuhnya bahwa dalam penyusunan skripsi ini tidak lepas dari kekurangan karena kerterbatasan waktu, tenaga dan pengetahuan penulis. Oleh karena itu, dibutuhkan saran dan masukkan untuk menyempurnakan skripsi ini. Semoga skripsi ini bermanfaat bagi ilmu kedokteran pada khususnya dan masyarakat pada umumnya. Surakarta, 25 Oktober 2010 Risang Galih S vi

7 DAFTAR ISI Halaman PRAKATA... vi DAFTAR ISI.. vii DAFTAR TABEL... ix DAFTAR GAMBAR.. x DAFTAR LAMPIRAN xi BAB I. PENDAHULUAN A. Latar Belakang Masalah. 1 B. Perumusan Masalah 3 C. Tujuan Penelitian 4 D. Manfaat Penelitian.. 4 BAB II. LANDASAN TEORI A. Tinjauan Pustaka 5 B. Kerangka Pemikiran. 13 C. Hipotesis 14 BAB III. METODE PENELITIAN A. Jenis Penelitian.. 15 B. Lokasi dan Waktu Penelitian. 15 C. Subyek Penelitian. 15 D. Teknik Sampling. 15 E. Identifikasi Variabel Penelitian.. 16 F. Definisi Operasional Variabel Penelitian 16 G. Rancangan Penelitian. 19 H. Alat dan Bahan 21 I. Cara Kerja J. Teknik Analisis Data 24 BAB IV. HASIL PENELITIAN A. Data Hasil Penelitian.. 25 vii

8 B. Analisis Data 27 BAB V. PEMBAHASAN.. 32 BAB VI. SIMPULAN DAN SARAN A. Simpulan 35 B. Saran.. 35 DAFTAR PUSTAKA 36 LAMPIRAN viii

9 DAFTAR TABEL Tabel 1. Karakteristik Morfologi 3 Tipe Tanaman Jambu Biji Tabel 2. Hasil Pengamatan Kematian Ascaris suum pada Penelitian Pendahuluan Tabel 3. Hasil pengamatan Kematian Ascaris suum, Goeze dalam Berbagai Konsentrasi pada Penelitian Akhir Tabel 4 Nilai Probabilitas (p) Uji Normalitas Tabel 5 Nilai Probabilitas (p) Uji Homogenitas Tabel 6 Hasil Uji One Way ANOVA Tabel 7 Hasil Uji Post Hoc LSD ix

10 DAFTAR GAMBAR Gambar 1 Berbagai Jenis Jambu Biji Gambar 2 Skema Kerangka Pemikiran Gambar 3 Skema Rancangan Penelitian Pendahuluan Gambar 4 Skema Rancangan Penelitian Akhir Gambar 5 Grafik Jumlah Rata-rata Kematian Cacing dalam Berbagai Konsentrasi pada Penelitian Akhir x

11 DAFTAR LAMPIRAN Lampiran 1. Uji One Way ANOVA Lampiran 2. Uji Post Hoc LSD Lampiran 3. Analisis Probit Lampiran 4. Foto-foto Alat, Bahan, dan Proses Penelitian Lampiran 5. Surat Keterangan Permintaan Bahan Tanaman Lampiran 6. Surat Keterangan Determinasi Tanaman Lampiran 7. Surat Keterangan Pengambilan Sampel dari Dinas Pertanian Kota Surakarta Lampiran 8. Surat Ijin Penelitian dari Laboratorium Pusat MIPA-Biologi xi

12 BAB I PENDAHULUAN A. Latar Belakang Masalah Askariasis adalah penyakit parasit yang disebabkan oleh cacing gelang Ascaris lumbricoides, Linn (Rasmaliah, 2001). Penyakit ini merupakan salah satu manifestasi penyakit cacing yang paling sering ditemukan dan merupakan penyakit kedua terbesar yang disebabkan oleh parasit (Wikipedia, 2009; David, 2008). Prevalensinya di dunia diperkirakan berkisar 25% atau sekitar 0,8 1,22 Milyar orang (David, 2008; Kazura JW, 2007). Penularan askariasis bersifat Soil Transmited Helminth (memerlukan tanah) karena tanah merupakan media perkembangan telur menjadi bentuk infektif (Sudoyo dkk, 2006). Askariasis terutama ditemukan di daerah-daerah tropis dengan suhu panas dan sanitasi lingkungan yang kurang baik. Oleh karena daerah seperti ini banyak terdapat di negara-negara berkembang, maka angka kejadian penyakit ini di negara berkembang relatif sangat tinggi (Pohan, 2006). Populasi dengan risiko tinggi adalah di Asia, Afrika, Amerika Latin dan USSR (Jamsheer, 2001). Sedangkan di daerah-daerah yang mempunyai sanitasi yang bagus dan tidak beriklim tropis, angka kejadian askariasis relatif rendah. Misalnya di Eropa Barat, angka kejadiannya hanya sekitar 10%. Di Indonesia sendiri, askariasis terjadi pada hampir semua anak berusia 1-10 tahun, sedangkan pada orang dewasa angka kejadiannya mencapai 60% 1

13 2 (Rampengan, 2007). Untuk mengatasi masalah ini, sering kali pemerintah mengadakan pengobatan massal dan berulang (Gandahusada dkk, 2000). Obat-obat antihelmintik (anticacing) digunakan untuk memberantas atau mengurangi parasit-parasit cacing dari saluran pencernaan. Mebendazole, albendazole dan pyrantel pamoate merupakan obat-obat cacing pilihan pertama terhadap askariasis. Sedangkan obat alternatifnya adalah piperazine ataupun levamisole (Tjay dan Rahardja, 2002; Katzung, 2004). Akan tetapi, pengobatan massal yang berbasis obat-obat modern tersebut memerlukan biaya yang cukup besar serta efek samping yang cukup merugikan. Oleh karena itu, diperlukan adanya alternatif untuk mengatasi masalah askariasis ini. Salah satu alternatif pilihan adalah dengan menggunakan bahan-bahan alami yang biasanya tersedia banyak di alam dan diharapkan mempunyai efek samping yang lebih kecil dibandingkan dengan obat-obat modern yang ada saat ini. Bermacam-macam bahan tradisional telah banyak digunakan di Indonesia untuk mengatasi berbagai kasus penyakit. Di samping murah dan mudah didapat karena ada di mana-mana, juga dapat mengikutsertakan masyarakat serta mengurangi subsidi pemerintah (Herawati, 2000). Salah satu tanaman yang diperkirakan dapat digunakan untuk mengatasi penyakit askariasis ini adalah jambu biji. Selama ini, daun jambu biji telah dikenal sebagai obat tradisional untuk mengatasi diare (Soedjito, 2008). Daun jambu biji mempunyai senyawa tanin sebesar ppm (Duke, 2009). Telah diketahui bahwa senyawa tanin ini merupakan senyawa yang bersifat

14 3 vermifuga, yakni secara langsung berefek pada cacing melalui perusakan protein tubuh cacing (Harvey dan John, 2005; Duke, 2009). Efek antihelmintik tanin dapat dilihat secara In vitro pada percobaan laboratoium, maupun secara In vivo di dalam tubuh kambing dan domba (Brunet dan Hoste, 2006; Iqbal dkk 2007; Cenci dkk, 2007; Anthanasiadou dkk, 2001). Tanin juga memiliki aktivitas penghambatan terhadap migrasi larva cacing pada kambing (Alonso dkk, 2008). Akan tetapi, belum banyak yang menggunakan daun jambu biji ini sebagai obat cacing. Oleh karena itu, peneliti tertarik untuk meneliti efek antihelmintik ekstrak daun jambu biji. Cacing gelang yang digunakan pada penelitian ini adalah Ascaris suum, Goeze yang terdapat dalam usus babi. Peneliti menggunakan cacing Ascaris suum, Goeze karena sulitnya mendapatkan cacing Ascaris lumbricoides, Linn dalam keadaan hidup dengan jumlah yang banyak untuk diberi perlakuan. Selain itu, Ascaris suum, Goeze hampir sama dengan Ascaris lumbricoides, Linn, bahkan cacing ini disebut juga Ascaris lumbricoides suum (Miyazaki, 1991; Laskey, 2007). B. Perumusan Masalah 1. Apakah infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) dapat membunuh Ascaris suum, Goeze In vitro? 2. Berapakah konsentrasi infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) yang dapat menyebabkan jumlah kematian optimal Ascaris suum, Goeze In vitro?

15 4 C. Tujuan Penelitian 1. Untuk mengetahui pengaruh infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) terhadap kematian Ascaris suum, Goeze In vitro. 2. Untuk mengetahui konsentrasi infusa daun jambu biji yang dapat menyebabkan jumlah kematian optimal Ascaris suum, Goeze In vitro D. Manfaat Penelitian 1. Manfaat teoritis a. Diketahuinya konsentrasi infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) yang dapat menyebabkan kematian optimal Ascaris suum, Goeze In vitro. b. Sebagai sumber informasi ilmiah kepada masyarakat ilmiah pada khususnya dan masyarakat luas pada umumnya tentang manfaat infusa Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) yang dapat digunakan sebagai antihelmintik. 2. Manfaat aplikatif a. Membuka peluang kemungkinan pembuatan preparat obat antihelmintik dari Daun Jambu Biji (Psidium guajava, Linn). b. Menambah referensi informasi fungsi infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn.) selain digunakan untuk mengobati diare namun juga dapat digunakan sebagai antihelmintik. c. Dapat menjadi referensi untuk melakukan penelitian In vivo tentang manfaat infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) sebagai antihelmintik.

16 5 BAB II LANDASAN TEORI A. Tinjauan Pustaka 1. Ascaris suum, Goeze Kingdom : Animalia Subkingdom : Metazoa Filum Kelas Subkelas Bangsa Famili Marga : Nemathelminthes : Nematoda : Scernentea : Ascaridia : Ascarididea : Ascaris Jenis : Ascaris suum, Goeze (Loreille, 2003) Cacing Ascaris suum, Goeze disebut juga Ascaris suilla yang secara morfologi hampir sama dengan Ascaris lumbricoides, Linn. Cacing ini mirip dengan Ascaris Lumbricoides, Linn dalam hal menginfeksi babi percobaan tetapi gejala akibat infeksi Ascaris lumbricoides, Linn berbeda dengan yang diakibatkan oleh Ascaris suum, Goeze. Selain itu, perbedaan lainnya terdapat pada deretan gigi dan bentuk bibirnya (Miyazaki, 1991). Siklus hidup dan cara infeksi cacing Ascaris suum, Goeze sama dengan cacing Ascaris lumbricoides, Linn (Miyazaki, 1991; Robert et al., 2005). Hospes yang penting untuk cacing ini adalah babi. Akan tetapi, cacing ini juga dapat menjadi parasit pada kambing, domba, dan anjing

17 6 (Soedarto, 1992). Yoshihara (2008) menemukan bahwa pada ayam yang terinfeksi Ascaris suum, Goeze terjadi lesi hepatik karena migrasi dari larva cacing ini. Siklus hidup dan cara infeksinya sama dengan Ascaris lumbricoides, Linn. Ascaris suum, Goeze juga dapat menginfeksi manusia namun tidak menimbulkan manifestasi klinis yang berarti (Miyazaki, 1991). 2. Ascaris lumbricoides, Linn a. Taksonomi Kingdom Subkingdom Filum Kelas Subkelas Bangsa Famili Marga : Animalia : Metazoa : Nemathelminthes : Nematoda : Scernentea : Ascaridia : Ascarididea : Ascaris Jenis : Ascaris lumbricoides, Linn ( Utari, 2002) b. Morfologi Cacing jantan berukuran sekitar cm, sedangkan yang betina sekitar cm. Cacing dewasa tubuhnya berwarna kuning kecoklatan serta mempunyai kutikulum yang rata dan bergaris halus. Kedua ujung badan cacing membulat. Mulut cacing mempunyai 3 buah bibir, satu di bagian dorsal dan yang lain di bagian subventral.

18 7 Pada cacing jantan, bagian ekornya melengkung ke arah ventral, serta ditemukan spikula atau bagian seperti untaian rambut di bagian ekornya (posterior), dimana masing-masing spikula berukuran sekitar 2 mm. Cacing betina mempunyai bentuk tubuh posterior yang membulat (conical) dan lurus. Cacing betina pada sepertiga depan terdapat bagian yang disebut cincin atau gelang kopulasi (Zaman, 1997). Cacing dewasa hidup pada usus manusia. Seekor cacing betina dapat bertelur hingga sekitar telur per harinya. Telur yang tidak dibuahi berukuran 90x40 mikron, sedang telur yang telah dibuahi berukuran lebih kecil yaitu sekitar 60x45 mikron. Telur yang telah dibuahi inilah yang dapat menginfeksi manusia (Gandahusada dkk, 2000). c. Habitat, Siklus Hidup, dan Cara Infeksi Dalam lingkungan yang sesuai, telur yang dibuahi dapat berkembang menjadi bentuk infektif dalam waktu kurang lebih 3 minggu. Bentuk infektif ini bila tertelan oleh manusia akan menetas dalam usus halus. Larvanya menembus dinding usus halus menuju pembuluh darah atau saluran limfe lalu dialirkan ke jantung kemudian mengikuti aliran darah ke paru. Di paru, larva menembus dinding pembuluh darah lalu dinding alveolus, masuk ke rongga alveolus kemudian naik ke trakea melalui bronkiolus dan bronkus. Dari trakea, larva ini menuju ke faring sehingga menimbulkan rangsangan pada faring. Penderita batuk karena rangsangan ini dan larva akan tertelan

19 8 ke esofagus, lalu menuju ke usus halus. Di usus halus larva berubah menjadi cacing dewasa. Sejak telur matang tertelan hingga cacing dewasa bertelur diperlukan waktu sekitar 2 bulan (Gandahusada dkk, 2000). Cacing dewasa terdapat di dalam usus halus tetapi kadangkadang dijumpai di bagian usus lainnya. Cacing dewasa dapat hidup pada saluran pencernaan selama 6 24 bulan (Rasmaliah, 2001). Selain di dalam usus manusia, cacing ini juga dapat hidup di dalam usus babi (Soedarto, 1992). d. Patologi dan Gambaran Klinis Sebagian besar kasus tidak menujukkan gejala, akan tetapi karena tingginya angka infeksi, morbiditasnya perlu diperhatikan (Widoyono, 2008). Jumlah cacing yang cukup besar (hyperinfeksi) terutama pada anak-anak akan menimbulkan kekurangan gizi. 20 ekor cacing Ascaris lumbricoides, Linn dewasa di dalam usus manusia mampu mengkonsumsi 2,8 gram karbohidrat dan 0,7 gram protein setiap hari. Selain itu cacing tersebut juga dapat mengeluarkan cairan tubuh yang menimbulkan reaksi toksik sehingga terjadi gejala seperti demam typhoid yang disertai dengan tanda alergi seperti urtikaria, odema di wajah, konjungtivitis, dan iritasi pernapasan bagian atas (Rasmaliah, 2001). Di dalam paru, larva cacing ini akan merusak kapiler paru sehingga dapat menyebabkan kelainan yang disebut Syndrom Loeffler, yaitu gejala-gejala demam, sesak nafas, eosinofilia, dan pada foto Roentgen thoraks terlihat infiltrat yang hilang setelah 3

20 9 minggu (Laskey, 2007). Pada stadium dewasa, di usus cacing akan menyebabkan gejala khas saluran cerna seperti tidak nafsu makan, muntah-muntah, diare, konstipasi, dan mual, serta dapat menyebabkan obstruksi ileus. Bila cacing masuk ke saluran empedu makan dapat menyebabkan kolik atau ikterus. Diagnosis askariasis dilakukan dengan menemukan telur pada tinja pasien atau ditemukan cacing dewasa yang keluar lewat anus, hidung, atau mulut (Gandahusada dkk, 2000; Laskey, 2007). 3. Jambu Biji (Psidium guajava, Linn) a. Klasifikasi Kingdom Divisi Sub Divisi Kelas Suku Marga : Plantae : Spermatophyta : Angiospermae : Dicotyledonae : Myrtaceae : Psidium Spesies : Psidium guajava, Linn (Soedjito, 2008) b. Morfologi Tanaman Jambu biji merupakan tanaman yang berasal dari daerah Amerika Tropik antara Mexico sampai dengan Peru, menyebar ke daerah Asia oleh pedagang Spanyol dan Portugis (Verheij and Coronel, 1999). Tinggi tanaman dapat mencapai 10 meter (Heyne, 2001), mulai berbuah antara umur 2 sampai dengan 4 tahun dan umur

21 10 tanaman produktif tahun (Verheij dan Coronel, 1999). Jambu biji banyak ditanam sebagai pohon buah-buahan, sering tumbuh liar dan terdapat dari dataran rendah sampai 1200 meter di atas permukaan laut. Tumbuhan ini tumbuh pada tanah yang gembur maupun liat, di tempat terbuka dan banyak air. Jenis jambu biji di seluruh dunia ada sekitar 150. Di Indonesia yang banyak ditanam adalah jenis jambu sukun, jambu susu putih, jambu apel, jambu australia, jambu palembang, jambu kamboja, jambu pasar minggu, jambu merah getas, jambu harum manis, jambu sari, dan jambu tukan. Berdasarkan pada karakteristik beberapa jenis jambu biji yang ada di masyarakat saat ini, tanaman ini dapat digolongkan dalam 3 tipe (Yuliani dkk, 2003). Perbedaan karakteristik dari ketiga tipe jambu biji tersebut dapat diamati pada tabel 1. Tabel 1. Karakteristik Morfologi 3 Tipe Tanaman Jambu Biji Karakteristik Tipe Tanaman I II III Batang Bulat, warna Persegi, warna Persegi, warna kemerahan hijau muda kecoklatan Daun Kemerahan Hijau muda Hijau muda, ujung lancip Rata-rata panjang daun 13,03 cm 12,94 cm 11,95 cm Rata-rata lebar daun 6,54 cm 5,94 cm 4,15 cm Rata-rata jumlah tulang daun 16,14 cm 30,53 cm 38,8 cm Rata-rata panjang tangkai 1,12 cm 0,69 cm 0,73 cm Jumlah bunga Banyak Satu Satu Warna kulit buah Kekuningan Kuning Hijau Warna daging buah Putih/Merah Kuning Putih/Merah Rasa buah Asam berpasir Manis renyah Manis halus Sumber: Yuliani dkk (2003)

22 11 Gambar 1. Berbagai Jenis Jambu Biji (Sumber: Soedjito, 2008) c. Kandungan Kimia Daun jambu biji mengandung tanin, minyak atsiri (eugenol, minyak lemak, damar, zat samak, triterpinoid, asam apfel) dan buahnya mengandung asam amino (triptofan, lisin), kalsium, fosfor, besi, belerang, vitamin A, B1 dan C (Wijayakusuma et al., 1994). Kandungan vitamin C buah jambu biji sekitar 87 mg/100 g buah, dua kali lipat dari jeruk manis (49 mg/100 g), serta delapan kali lipat dari lemon (10,5 mg/100 g). Daun jambu biji mempunyai khasiat sebagai antidiare, astringen, mengobati sariawan dan menghentikan perdarahan. Sebagai obat anti diare, jambu biji telah dipasarkan dalam bentuk jamu modern, bahkan industri farmasi telah memformulasikan daun jambu biji menjadi obat fitofarmaka yang sudah banyak beredar di pasaran (Soedjito, 2008). Selain itu, daun jambu biji mempunyai kandungan senyawa tanin yang besar, yaitu sekitar ppm (Duke, 2009). Akan tetapi, kandungan senyawa tanin yang besar ini belum banyak dimanfaatkan sebagai antihelmintik. d. Tanin Alkaloid tanin merupakan poliphenol tanaman yang larut dalam air dan dapat menggumpalkan protein (Westerdarp, 2006). Alkaloid

23 12 tanin memiliki efek vermifuga dengan cara merusak protein tubuh cacing. Hal ini dapat menyebabkan gangguan metabolisme homeostasis pada cacing sehingga cacing akan mati. (Harvey & John, 2005). Hal ini dimungkinkan karena tanin mempunyai gugus karbonil yang menyebabkannya mudah terprotonisasi (menjadi ion bermuatan positif). Ion-ion positif ini kemudian akan menarik ion-ion negatif pada struktur protein, baik mikroorganisme penyebab diare, maupun pada organisme lain pada saluran pencernaan manusia (Sutrasno dkk, 2008). Oleh sebab itulah tanin pada jambu biji ini dapat bersifat sebagai antihelmintik. Efek antihelmintik tanin dapat dilihat secara In vitro maupun In vivo di dalam tubuh kambing dan domba (Brunet dan Hoste, 2006; Iqbal dkk 2007; Cenci dkk, 2007; Anthanasiadou dkk, 2001). Tanin juga memiliki aktivitas penghambatan terhadap migrasi larva cacing pada kambing (Alonso dkk, 2008).

24 13 B. Kerangka Pemikiran Infusa Daun Jambu biji (Psidium guajava, Linn) Tannin Mendenaturasi Protein Cacing Gelang Babi Ascaris suum, Goeze Gangguan Metabolisme dan Homeostasis Variabel luar terkendali Variabel luar tidak terkendali Jenis Cacing Besar Cacing Konsentrasi Larutan Suhu Percobaan Umur cacing Kepekaan cacing Umur daun jambu biji Kematian Cacing Gambar 2. Skema Kerangka Pemikiran

25 14 C. Hipotesis 1. Infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) dapat membunuh Ascaris suum, Goeze In vitro. 2. Peningkatan konsentrasi infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) dapat meningkatkan kematian Ascaris suum, Goeze In vitro.

26 15 BAB III METODE PENELITIAN A. Jenis Penelitian Penelitian ini bersifat eksperimental laboratorik yang menggunakan rancangan penelitian the post test only controlled group design. B. Lokasi Penelitian Laboratorium Pusat Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahun Alam Universitas Sebelas Maret Surakarta. C. Subjek Penelitian Subyek penelitian/hewan uji adalah Ascaris suum, Goeze yang masih aktif bergerak diperoleh dari usus babi dari tempat penyembelihan Dinas Pertanian Kota Surakarta. D. Teknik Sampling Penelitian ini menggunakan teknik sampling purposive sampling dengan cara menyamakan panjang cacing serta tidak membedakan jenis kelamin cacing. Penentuan besar sampel dihitung dengan rumus Federer: (n 1) (t 1) 15 Keterangan : n = besar sampel t = jumlah kelompok perlakuan (Federer, 1955) Karena penelitian ini menggunakan 5 kelompok perlakuan, maka: (n-1)(5-1) 15 4n 19 n 4,75 Masing-masing kelompok akan memiliki sampel sebanyak 5 sampel.

27 16 E. Identifikasi Variabel Penelitian 1. Variabel Bebas Konsentrasi infusa daun jambu biji 2. Variabel Tergantung Jumlah kematian cacing dalam tiap rendaman tiap jam selama 7 jam. 3. Variabel Perancu a. Variabel perancu yang terkendali i. Jenis cacing ii. iii. Ukuran cacing Suhu percobaan b. Variabel perancu yang tidak terkendali 1) Umur cacing 2) Variasi kepekaan cacing terhadap larutan uji 3) Umur tanaman jambu biji F. Definisi Operasional Variabel Penelitian 1. Serbuk Daun Jambu Biji Serbuk daun jambu biji adalah serbuk yang dihasilkan dari daun jambu biji yang telah dikeringkan dalam oven pada suhu 40 0 C kemudian dihaluskan dan diayak dengan pengayak nomor Infusa Daun Jambu Biji Infusa daun jambu biji adalah infusa yang dihasilkan setelah serbuk daun jambu biji yang kemudian diekstraksi dengan metode infudasi.

28 17 3. Konsentrasi Infusa Daun Jambu Biji Konsentrasi infusa daun jambu biji yang digunakan adalah 20%, 40%, 60%, 80% dan 100%. 4. Jumlah Kematian Cacing Jumlah kematian cacing adalah jumlah cacing yang mati dalam tiap rendaman pada waktu yang telah ditentukan. Pengamatan dilakukan tiap 1 jam. Cacing dianggap mati apabila disentuh dengan pinset anatomis tidak ada respon gerakan. 5. Variabel Perancu Terkendali a. Jenis cacing Jenis cacing yang digunakan adalah cacing pada usus halus babi (Ascaris suum, Goeze). b. Ukuran cacing Ukuran cacing dikendalikan dengan memilih cacing yang memiliki panjang antara 30 cm sampai 35 cm c. Suhu percobaan Suhu percobaan dikendalikan dengan inkubator bersuhu 37 0 C. 6. Variabel Perancu Tidak Terkendali a. Umur cacing Umur cacing merupakan variabel luar yang tidak dapat dikendalikan karena cacing yang didapat adalah cacing yang berasal dari usus babi yang tidak dapat dipastikan kapan babi tersebut terinfeksi cacing dan kapan telur cacing menetas menjadi cacing dewasa.

29 18 b. Variasi kepekaan cacing terhadap larutan obat yang diujikan Variasi kepekaan cacing terhadap obat larutan yang diujikan merupakan variabel luar yang tidak dapat dikendalikan karena pertumbuhan dipengaruhi oleh banyak faktor. c. Umur daun jambu biji Umur daun jambu biji merupakan variabel yang tidak dapat dikendalikan karena daun merupakan bagian dari tanaman jambu biji yang selalu beregenerasi. Daun yang telah kering akan rontok dan digantikan dengan daun baru yang lebih produktif. Oleh karena itu, sangat sulit untuk mengetahui kapan daun-daun tersebut mulai tumbuh.

30 19 G. Rancangan Penelitian 1. Penelitian Pendahuluan Kelompok kontrol Kelompok perlakuan 5 ekor cacing Ascaris suum direndam dalam 25ml NaCl 0,9% 5 ekor cacing Ascaris suum direndam dalam 25 ml larutan infusa daun jambu biji konsentrasi 20, 40, 60, 80, dan 100% Inkubasi pada suhu 37 0 C Inkubasi pada suhu 37 0 C Pengamatan dilakukan tiap jam dan dihentikan jika salah satu konsentrasi telah dapat membunuh semua cacing Waktu yang didapat digunakan sebagai dasar pada tahap penelitian akhir Gambar 3. Skema Rancangan Penelitian Pendahuluan

31 20 2. Tahap Penelitian Akhir Ascaris suum, Goeze Direndam dalam larutan garam Fisologis (NaCl 0,9%) Direndam dalam larutan infusa daun jambu biji konsentrasi 60%, 80% dan 100% Direndam Mebendazol dalam larutan pyrantel pamoate 5 mg / ml Inkubasi 37 0 C Inkubasi 37 0 C Inkubasi 37 0 C Pengamatan tiap 1 jam hingga waktu yang didapat pada penelitian pendahuluan Pengamatan tiap 1 jam Semua cacing mati hingga waktu yang didapat pada penelitian pendahuluan Pengamatan tiap 1 jam Semua cacing mati hingga waktu yang didapat pada penelitian pendahuluan Replikasi 4 kali Replikasi 4 kali Replikasi 4 kali uji one way ANOVA uji Post Hoc LSD Analisis Probit Gambar 4. Skema Rancangan Penelitian Akhir

32 21 H. Alat dan Bahan 1. Cawan petri diameter 10 cm 2. Batang kaca sebagai pengaduk 3. Gelas ukur 4. Pinset anatomis 5. Labu takar 6. Toples untuk menyimpan cacing 7. Inkubator 8. Larutan garam fisiologis (NaCl 0,9%) 9. Larutan uji dengan konsentrasi 20%, 40%, 60%, 80%, dan 100% I. Cara Kerja 1. Pembuatan Infusa Daun Jambu Biji a. Pengambilan Bahan Daun jambu biji yang akan diinfus didapat langsung dari B2P2TOT Tawangmangu. b. Pembuatan Serbuk Daun Jambu Biji Serbuk daun jambu biji adalah serbuk yang dihasilkan dari daun jambu biji yang telah dikeringkan dalam oven pada suhu 40 0 C kemudian dihaluskan dan diayak dengan pengayak nomor 40. c. Pembuatan Infusa Daun Jambu Biji Ekstraksi daun jambu biji dilakukan dengan metode infudasi dan hasil ekstraksi disebut infusa. Infudasi adalah proses penyarian yang umumnya digunakan untuk menyari zat kandungan aktif yang

33 22 larut air dan bahan-bahan nabati. Cara ini sangat sederhana dan sering digunakan oleh perusahaan obat tradisional. Dengan beberapa modifikasi, cara ini sering digunakan untuk membuat ekstrak. Infusa dibuat dengan cara : 1) Membasahi 100 gram serbuk daun jambu biji dengan air sebanyak 100 ml. 2) Dipanaskan selama 15 menit pada suhu 90 0 C 98 0 C dengan menggunakan panci infudasi. 3) Penyaringan dilakukan pada saat cairan masih panas. 2. Penentuan Konsentrasi Larutan Uji yang Digunakan Penelitian ini menggunakan larutan infusa daun jambu biji dengan berbagai macam konsentrasi, yaitu: Konsentrasi I : 20 ml infusa daun jambu biji + 80 ml NaCl 0,9% Larutan infusa daun jambu biji 20% Konsentrasi II : 40 ml infusa daun jambu biji + 60 ml NaCl 0,9% Larutan infusa daun jambu biji 40% Konsentrasi III : 60 ml infusa daun jambu biji + 40 ml NaCl 0,9% Larutan infusa daun jambu biji 60% Konsentrasi IV : 80 ml infusa daun jambu biji + 20 ml NaCl 0,9% Larutan infusa daun jambu biji 80% Konsentrasi V : 100 ml infusa daun jambu biji Larutan infusa daun jambu biji 100%

34 23 3. Langkah Penelitian a. Tahap Penelitian Pendahuluan 1) 7 buah cawan petri disiapkan, diisi larutan garam fisiologis (NaCl 0,9%) sebanyak 25 ml dan larutan uji dalam 5 konsentrasi (20%, 40%, 60%, 80% dan 100%), dihangatkan dalam inkubator hingga suhu larutan mencapai 37 0 C. 2) Ke dalam masing-masing cawan petri dimasukkan Ascaris suum, Goeze sebanyak 5 ekor dan diinkubasi pada suhu 37 0 C. 3) Untuk menentukan cacing tersebut mati atau hidup cacing-cacing tersebut disentuh dengan pinset. Jika sudah tidak bergerak, maka cacing dinyatakan mati. Pengamatan dilakukan tiap 1 jam. 4) Waktu kematian dan serial konsentrasi yang dapat menyebabkan kematian cacing pada uji ini menjadi dasar tahap penelitian. a. Tahap Penelitian Akhir 1) 5 cawan petri disiapkan, masing-masing diisi larutan NaCl 0,9% (kontrol negatif), larutan pyrantel pamoate (kontrol positif), dan larutan uji dalam konsentrasi 60%, 80%, dan 100% sebanyak 25 ml dan dihangatkan terlebih dahulu pada inkubator hingga suhu larutan mencapai 37 0 C. 2) Ke dalam masing-masing cawan petri dimasukkan Ascaris suum, Goeze sebanyak 5 ekor dan diinkubasi pada suhu 37 0 C.

35 24 3) Untuk menentukan cacing tersebut mati atau hidup cacing-cacing tersebut disentuh dengan pinset. Jika sudah tidak bergerak, maka cacing dinyatakan mati. Pengamatan dilakukan tiap 1 jam. 4) Hasil pengamatan yang diperoleh tiap 1 jam dicatat. 5) Penelitian direplikasi 4 kali J. Teknik Analisis Data Untuk menentukan apakah hasil penelitian ini bermakna atau tidak, data yang diperoleh akan dianalisis secara statistik dengan Analisis Varian satu jalan (Anova) dan uji Post Hoc. Uji Anova satu jalan adalah untuk membandingkan perbedaan mean pada lebih dari 2 kelompok. Setelah itu untuk mengetahui kelompok mana yang mempunyai perbedaan yang signifikan digunakan uji Post Hoc. Kemudian untuk mengetahui konsentrasi optimum yang dapat membunuh cacing digunakan analisis probit (Dahlan, 2008).

36 25 BAB IV HASIL PENELITIAN A. Data Hasil Penelitian 1. Penelitian Pendahuluan Penelitian pendahuluan ini dilakukan dengan mengamati jumlah kematian cacing Ascaris suum serta waktu kematiannya pada perendaman dalam infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 20%, 40%, 60%, 80%, dan 100%. Berdasarkan hasil penelitian pendahuluan didapatkan hasil pada tabel berikut ini : Tabel 2. Hasil Pengamatan Kematian Ascaris suum pada Tiap Konsentrasi dalam Penelitian Pendahuluan Waktu Jumlah Kematian Cacing Kematian (Jam) NaCl 20% 40% 60% 80% 100% Hasil pengamatan pada penelitian pendahuluan menunjukkan bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 100% dapat membunuh semua cacing dalam waktu 7 jam. Waktu ini menjadi dasar lamanya penelitian pada tahap penelitian akhir. Selain itu, didapatkan pula bahwa pada konsentrasi 20% dan 40% tidak didapatkan cacing yang mati. Oleh karena itu, tahap penelitian akhir hanya digunakan serial konsentrasi 60%, 80% dan 100%.

37 26 2. Penelitian Akhir Hasil pengamatan penelitian pengaruh infusa daun jambu biji terhadap kematian Ascaris suum, Goeze in vitro adalah sebagai berikut: Tabel 3. Hasil Pengamatan Kematian Ascaris suum, Goeze dalam Berbagai Konsentrasi selama 7 Jam pada Penelitian Akhir Waktu Jumlah Kematian Cacing Replikasi (Jam) NaCl 60% 80% 100% PP Mean ,5 3, Mean 0 0 0,5 2,75 3, Mean 0 0 1,25 3, Mean 0 0,25 2,75 3,5 4, Mean 0 1 3,25 4, Mean 0 1,5 3,5 4, Mean

38 27 Hasil pengamatan pada penelitian akhir ini didapatkan bahwa pada konsentrasi 100%, semua cacing mati pada jam ke 7. Sedangkan pada konsentrasi 60% dan 80% masih didapatkan cacing yang hidup pada jam ke 7. Selain itu, didapatkan pula bahwa pada kelompok kontrol positif semua cacing telah mati pada jam ke 5. Tabel 3 di atas dapat dibuat dalam bentuk grafik sebagai berikut: jumlah kematian cacing (ekor) NaCl 60% 80% 100% Pyr Pam waktu (jam) Gambar 5. Grafik Jumlah Rata-rata Kematian Cacing dalam Berbagai Konsentrasi pada Penelitian Akhir Grafik rata-rata jumlah kematian cacing di atas dapat dilihat bahwa pada setiap jam pengamatan, terdapat peningkatan jumlah kematian cacing yang sebanding dengan peningkatan konsentrsi infusa daun jambu biji pada konsentrasi 60% hingga 100%. B. Analisis Data Data hasil pengamatan penelitian akhir pada tabel 3 yang berupa jumlah rata-rata kematian cacing dianalisis dengan menggunakan uji one way ANOVA apabila memenuhi syarat uji.

39 28 1. Uji one way ANOVA Sebelum melakukan uji one way ANOVA ada syarat-syarat yang harus dipenuhi, yaitu distribusi data harus normal dan varians data harus sama (Dahlan, 2008). Pada uji normalitas dan uji homogenitas didapat nilai probabilitas (p) seperti pada tabel berikut : Tabel 4. Nilai Probabilitas (p) Uji Normalitas Konsentrasi Kolgomorov-Smirnov Shapiro-Wilk 60% 0,134 0,079 80% 0,200 0, % 0,200 0,599 PP 0,200 0,184 a. Lilliefors Significance Correction *. This is a lower bound of the true significance. b. mati is constant when konsentrasi = nacl. It has been omitted. Tabel 5. Nilai Probabilitas (p) Uji Homogenitas Levene Statistic Df1 Df2 Probabilitas 1, ,208 a. mati is constant when konsentrasi = nacl. It has been omitted. Tabel Uji Kolmogorov-Smirnov dan Shapiro Wilk di atas menujukkan nilai probabilitas (p) pada semua kelompok perlakuan >0,05. Hal ini berarti bahwa data berdistribusi normal. Kemudian pada tes homogenitas varians, didapatkan nilai probabilitas 0,208 (> 0,05), sehingga varians data dinyatakan homogen. Oleh karena itu syarat-syarat untuk penggunaan uji one way ANOVA telah terpenuhi. Uji one way ANOVA dilakukan untuk menguji apakah kelompok perlakuan memiliki rerata jumlah kematian cacing yang

40 29 berbeda signifikan atau tidak berbeda signifikan secara statistik. Hasil uji one way ANOVA adalah sebagai berikut : Tabel 6. Hasil Uji One Way ANOVA ANOVA Sum of Squares Df Mean Square F Sig. Between Groups Within Groups Total Hipotesis untuk uji one way ANOVA adalah sebagai berikut : a. H 0 : Infusa daun jambu biji tidak mempunyai pengaruh terhadap kematian Ascaris suum, Goeze. b. H 1 : Infusa daun jambu biji mempunyai pengaruh terhadap kematian Ascaris suum, Goeze. Pengambilan keputusan : 1). Jika nilai probabilitas < 0,05, maka H 0 ditolak 2). Jika nilai probabilitas > 0,05, maka H 0 diterima Nilai probabilitas pada uji ANOVA tersebut adalah 0,000 atau p <0,05 maka H 0 ditolak dan H 1 diterima. Karena H 1 diterima maka terdapat perbedaan yang signifikan antara kelima rerata kelompok atau paling tidak terdapat perbedaan jumlah kematian cacing yang signifikan pada dua kelompok. Untuk mengetahui kelompok yang mempunyai perbedaan yang signifikan digunakan uji post hoc (Dahlan, 2008). 2. Uji Post Hoc LSD Hasil Uji Post Hoc LSD adalah sebagai berikut:

41 30 Tabel 7. Hasil Uji Post Hoc LSD Kelompok yang Nilai Signifikan/tidak H dibandingkan probabilitas (p) signifikan 0 NaCl 60%.197 Tidak Signifikan Diterima 80% %.000 Signifikan Ditolak PP % NaCl.197 Tidak Signifikan Diterima 80% %.000 Signifikan Ditolak PP % NaCl % %.006 Signifikan Ditolak PP % NaCl %.000 Signifikan Ditolak 80%.006 PP.220 Tidak Signifikan Diterima PP NaCl %.000 Signifikan Ditolak 80% %.220 Tidak Signifikan Diterima Hipotesis untuk uji Post Hoc LSD di atas adalah sebagai berikut : a. H 0 : Rerata jumlah kematian cacing antara kelompok yang dibandingkan memiliki perbedaan yang tidak signifikan b. H 1 : Rerata jumlah kematian cacing antara kelompok yang dibandingkan memiliki perbedaan yang signifikan. Pengambilan keputusan uji Post Hoc LSD: a. Jika nilai probabilitas < 0,05, maka H 0 ditolak b. Jika nilai probabilitas > 0,05, maka H 0 diterima

42 31 Dari tabel uji Post Hoc LSD di atas dapat dilihat bahwa tidak terdapat perbedaan yang signifikan antara kelompok NaCl (kontrol negatif), dengan perlakuan 60%, serta pada kelompok perlakuan 100% dengan PP (pyrantel pamoate/kontrol positif). Sedangkan konsentrasi 80% dan 100% serta kelompok kontrol positif (larutan pyrantel pamoate) terdapat perbedaan yang signifikan dengan kelompok kontrol negatif dan kelompok perlakuan 60%. Hasil selengkapnya uji Post Hoc LSD di atas dapat dilihat pada lampiran Analisis Probit Analisis probit digunakan untuk mengetahui konsentrasi infusa daun jambu biji yang dapat membunuh 50% cacing yang dinyatakan dengan LC 50 serta konsentrasi infusa daun jambu biji yang dapat membunuh 90% cacing yang dinyatakan sebagai LC 90. Hasil analisis probit didapatkan bahwa LC 50 infusa daun jambu biji adalah 64,764% dan LC 90 nya adalah 84,782%. Hasil lengkap dari analisis probit dapat dilihat pada lampiran 4.

43 32 BAB V PEMBAHASAN Untuk mengetahui pengaruh infusa daun jambu biji terhadap kematian Ascaris suum, Goeze, penelitian dilakukan dalam dua tahap, yaitu tahap penelitian pendahuluan dan tahap penelitian akhir. Penelitian pendahuluan dilakukan untuk mengetahui serial konsentrasi infusa daun jambu biji yang dapat membunuh cacing serta waktu minimal yang diperlukan infusa daun jambu biji untuk membunuh semua cacing. Waktu tersebut akan digunakan sebagai dasar untuk tahap penelitian akhir. Selain itu, pada penelitian ini digunakan larutan NaCl 0,9% sebagai kontrol negatif untuk membuktikan bahwa cacing mati karena infusa daun jambu biji, serta digunakan pula larutan pyrantel pamoate sebagai pembanding efektivitas infusa daun jambu biji dalam membunuh cacing Ascaris suum, Goeze karena pyrantel pamoate merupakan drug of choice untuk askariasis. Pada tahap penelitian pendahuluan ini didapatkan waktu minimal yang diperlukan infusa daun jambu biji untuk membunuh semua cacing pada konsentrasi 100% selama 7 jam. Oleh karena itu, pada tahap penelitian akhir digunakan waktu penelitian selama 7 jam. Pada tahap penelitian pendahuluan digunakan lima kosentrasi yaitu 20%, 40%, 60%, 80% dan 100%. Ternyata yang dapat membunuh cacing hanya 3 konsentrasi yaitu 60%, 80%, dan 100%. Maka pada penelitian akhir cacing Ascaris suum, Goeze direndam pada infusa daun jambu biji dengan 3 konsentrasi, yaitu 60%, 80% dan 100%.

44 33 Pada data jumlah kematian cacing (tabel 3) dapat dilihat bahwa pada tiap jam pengamatan, terdapat peningkatan jumlah kematian cacing yang sebanding dengan peningkatan konsentrasi infusa daun jambu biji pada konsentrasi 60% hingga 100% yang terlihat pada grafik jumlah kematian cacing (gambar 5). Selain itu, tampak bahwa jumlah kematian cacing pada larutan pyrantel pamoate lebih tinggi jika dibandingkan dengan infusa daun jambu biji. Perbedaan ini menunjukkan bahwa pyrantel pamoate mempunyai kemampuan yang lebih tinggi untuk membunuh cacing dibandingkan dengan infusa daun jambu biji. Akan tetapi, untuk perbandingan efektivitas infusa daun jambu biji dengan pyrantel pamoate secara statistik akan dibahas lebih lanjut pada bagian akhir bab ini. Hasil penelitian diuji dengan One Way Anova untuk menguji adanya perbedaan yang signifikan antara kelompok perlakuan dengan kelompok kontrol. Sebaran data menunjukkan sebaran yang normal dan varians data menunjukkan data yang homogen, sehingga syarat untuk uji anova telah terpenuhi. Pada uji anova didapatkan nilai probabilitas (p) 0,000 atau < 0,05 yang berati bahwa terdapat pengaruh infusa daun jambu biji terhadap kematian Ascaris suum, Goeze. Setelah diketahui adanya perbedaan yang signifikan pada kelompok perlakuan dengan kelompok kontrol, dilanjutkan dengan uji post hoc untuk mengetahui kelompok mana yang mempunyai perbedaan yang bermakna. Hasil analisis post hoc didapatkan perbedaan yang signifikan antara kelompok perlakuan 80%, 100% dan kontrol positif (pyrantel pamoate) terhadap kontrol negatif. Hal ini menunjukkan bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 80% dan 100% serta pyrantel pamoate mempunyai daya bunuh yang

45 34 berarti terhadap ascaris suum. Sedangkan pada kelompok perlakuan 60% tidak didapatkan perbedaan yang bermakna dengan kontrol negatif. Hal ini menunjukkan bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 60% tidak mempunyai kemampuan yang berarti untuk membunuh cacing Ascaris suum. Hasil analisis post hoc menunjukkan pula bahwa kelompok 60% dan 80% mempunyai perbedaan yang signifikan dengan kelompok kontrol positif, yang berarti bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 60% dan 80% mempunyai daya bunuh yang lebih rendah dari pyrantel pamoate. Sedangkan nilai probabilitas antara infusa daun jambu biji pada konsentrasi 100% dengan larutan pyrantel pamoate menunjukkan 0,220 (> 0,05). Hal ini berarti bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 100% tidak mempunyai perbedaan yang bermakna dengan larutan pyrantel pamoate secara statistik, yang berarti bahwa infusa daun jambu biji dengan konsentrasi 100% mempunyai efektivitas yang identik dengan larutan pyrantel pamoate. Hasil analisis probit didapatkan bahwa toksisitas akut (LC 50 ) infusa daun jambu biji adalah pada konsentrasi 64,764%, dimana pada konsentrasi tersebut 50% cacing mati dalam waktu yang ditentukan (7 jam). Didapatkan pula bahwa konsentrasi yang dapat membunuh 90% cacing (LC 90 ) infusa daun jambu biji adalah 84,782%.

46 35 BAB VI SIMPULAN DAN SARAN A. Simpulan 1. Infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) dapat membunuh Ascaris suum, Goeze In vitro 2. Peningkatan konsentrasi infusa daun jambu biji dapat meningkatkan jumlah kematian Ascaris suum, Goeze In vitro B. Saran 1. Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai pengaruh infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) terhadap kematian cacing Ascaris suum, Goeze In vivo. 2. Perlu dilakukan pengujian lebih lanjut tentang infusa daun jambu biji (Psidium guajava, Linn) sehingga diharapkan dapat menjadi bahan obat untuk askariasis.