DAFTAR PUSTAKA Abbott, A.J. 1976. Propagation of Temperate Woody Species Tissue Culture. Sci. Hortic. 28(4). Abo El-Nil, M.M. 1977. Organogenesis and embryogenesis in callus cultures of garlic ( Afliu~ sativua L.) Plant Sci. Let, 9: 259-264.., and E. Whiteley. 1976. Culture of Malus Tissues i n vitrc). Multiplication of Apple Plants from Isolated Shoot Apices. Scientia Hort. 4: 183-189. Ahloowalia, B.S. 1990. Somatic embryos in monocots, their genesis and genetic stability. Biotechnology '90. International Symposia in Picardy. Bayliss, M.W. 1980. Chromosomal variation in plant tissues in culture. Int. Rev. Cytol., Suppl. 11 A: 113-144. Bhojwani, S.S. 1980. Irr vifro Propagatim of Garlic by Shoot Proliferation. Sci. Hortic. 13: 47-52., and M.K. Razdan. 1983. Plant Tissue Culture. Theory and Practice. Elsevier. Amsterdam. Bonga, J.M and D.J. Durzan. 1987. Cell and Tissue Culture in Forestry. Martinus Ni jhoff. Pub. Dordrecht. Boston. Lancaster. Bovo, O.A. L.A. Mroginski. 1985. Obtaining garlic (Allium sativur L.) plants by in vitro meristem culture. Phyton. Argentina. 45(2): 159-163. Boxus, P. 1976. In Vitro Vegetative Propagation of Plants. Brown, C.L. and H.E. Sommer. 1982. Vegetable propagation of dicotyledonous trees, p. 109-149. In: J.M. Bonga and D.J. Durzan (eds). Tissue Culture in Forestry. Martinus Nijhoff/DJ. W. Jonk. Publisher. London. Conci, V.C., D.N. Moriconi., S.F. Nome. 1987. In vitro plantlet regeneration from callus in garlic (Allium sativur L.) Plant Physiol. 83(4).
D'Amato, F. 1977. Cytogenetics of differentiation in tissue and cell cultures. In: Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Cu,lture (J. Reinert and Y.P.S. Bajaj., eds). Springer. Verlag. Berlin.. 1978. Chromosome Number Variation in Cultured Cells and Regenerated Plants. In: Frontiers of Plant Tissue Culture (Thorpe, TA., ed). The 1nt.Ascc 04 Plant Tissue Culture. Univ. of Calgary, Canada. Dixon, R.A. 1985. Plant Cell Culture a Practical Approach. IRL Press Limited. Dodds, J.H. and L.W. Roberts. 1984. Experiments in Plant Tissue Culture. Cambridge. London. Dolezel. J. and F.J. Novak, 1984. Cytogenetic effect of plant tissue culture medium with certain growth substances on Alliua sativur L. Meristem root tip cells. Biol. Plant. 26(4) : 293-298.. 1986. Sister chromatic exchanges in garlic (Alliur sativum L.) callus cells. plant cell rep (1986) 5: 280-281. Dube, S.L. dan Vidaver, W. 1992. Photosynthetic competence of plantlets grown in vitro. An automated system for measurement of photosynthesis in vitro. Physiol Plant. 84 : 409-416. Dunstan, D. I., Short, K.C. 1977. Improved growth of tissue culture of the onion Allium cepa. Physiol. Plant. 41: 70-72. Dutcher, R.D. and L.E. Powell. 1972. Culture of apple shoots from bud in vitro. Am. Soc. Hortic. Sci. 97(4): 511-514. Eigsti, O.J. and P. Dustin. 1957. Colchicine. The Iowa State College Press. Ames, Iowa, USA.. Elliott, R.F. 1970. Axenic culture of shoot pieces of apple N.Z.J. Bot 10: 254-258. Evans, D.A dan W.R. Sharp. 1980. Plant Regeneration from Cell Cultures. Horticultural Reviews. Vol 3. Avi Publishing Co, Inc. Westport, Connecticut.
Evans, D.A., W.R. Sharp and P.V. Arnmirato. 1983. Handbook of Plant Cell Culture. Vol. I. MicMillan. Publishing Co. New York. Evans, D.A., W.R. Sharp and P.V. Ammirato. 1986. Handbook of Plant Cell Culture. Vol. 4. MC.Millan Publishing Co. New York. Etoh, T. 1984. Hybrids between wild garlic (Alliun longicurpis Regel) and garlic (Allium sativum L.). Eucarpia 3rd. AI~liur syrposius. 1984. Institut for Horticultural Plant Breeding (IVF) Wsgeningen. Gamborg, L.O. and J.P. Shyluk. 1981. Nutrition, media and characteristics of plant cell and tissue culture. Ir:: Plant Tjssue Culture. Methods and Applications in Agriculture. T.A. Thorpe (ed). Academic Press. New York. George, E.F. and P.D. Sherrington. 1984. Plant Propagation by Tissue Culture. Exegetics Ltd., Eversley. Gupta, P.P., Sharma, A.K. and Chaturvedi, H.C. 1978. Multiplication of Lilium longifiorr Thumb by aseptic culture of bulbscales and their segments. India 3. Exp. Biol., 16: 940-942. Hacket, W.P. 1969. Control of bulblet formation on bulbscale of Lilium longiflorm. Hortscience. 4: 171. Bavranek, P. 1973. Virus free clone garlic obtained via mensternatic cultures. In Crech Ochrama Rosthim (Praha) 8: 291-298. and F.J. Novak. 1973. The bud formation in the callus cultures of Alliur sativum L. Pflanzenphysiol. 68. p. 308-318. Hughes, K.W. 1981. Ornamental Species. p. 5-50. In B.V Conger (ed.). Cloning Agricultural Plants via in vitro. Techniques. CRC. Press. Inc. Florida. Hussey, G. 1977. In vitro propagation of gladiolus by precocious axilar shoot formation. Sci. Hortic, 6: 287-296.. 1978. In vitro propagation of the onion. Aliiur cepa by axillcory and adventitions shoot proliferation Sci. Hortic. 9: 227-236.
. 1978. The application of tissue culture to the vegetative propagation of plants. Sci. Prog. 65: 185-208. Hussey, G. and A. Falavigna. 1990. Origin and production of in vitro adventitious shoots in the onion. Allium cepa L. J. Exp. Bot 3(125): 1675-1686. Jones, H.A. and L.K. Mann. 1983. Onions and Their Aliies. London. Leonard Hill. Ltd. XVIII. Kalloo. 1988. Vegetable Breeding. Vol 111. CRC. Press. Inc. Boca Raton, Florida. Kartha, K.K. 1981. Meristem culture and cryopreservation methods and applications. In: Thorpe (ed). Plant Tissue Culture. Methods and Application in a Agriculture. Academic Press. Inc. New York. Keese, R.J., E.A. Rupert dan G.E. Carter. 1991. Investigations of proliferative and senescent callus of soybean. Physiol. Plant. 81: 513-517. Kehr, A.E. and Schaeffer, G.W. 1976. Tissue culture and differentiation of garlic. HortScience. 11: 422-423. Knott, J.E. and J.R. Deann, Jr. 1967. Vegetable Production in Southeast Asia. UPGA. ~hillipines VII, Koevary, K., L. Rappaport, and L.L. Morris. 1978. Tissue culture propagation of head lettuce. Hort. Science. 13(1): 39-41. Konvicka, 0 and A. Levan. 1972. Chromosome studies in Aliium sativua. Hereditas 72: 129-148. 1973. Die ursachen der sterilita von Allium sativua L. Biol. Plant. 15: 144-149. Koul, A.K., Grohil, R.N. 1970. Causes averting sexual reproduction in AlIiur, sativur, Linn. Cytologia 35: 197-202. Koul, A.K., R.N. Gohil and A. Langer. 1978. Prospects of breeding improved garlic in the light of its genetic and breeding systems. Euphytica 28: 457-464.
Maggioni. L., C. Cordi and C. Fogher. 1989. Callus induction, ploidy level and plant regeneration in vitro Garlic (Alliun sativuw L.) Cultures. J. Genet. Breeding. 43(4): 251-254. Matsubara, S. dan D. Chen. 1989. In vitro production of garlic plants and field acclimatization. Hort Science 24(4): 677-679. McCown, B.H., Zeldin, E.L., Pinkafia, H.A., Dedolph, R.R. 1988. Nodule culture: a developmental pathway with hige potential for regeneration automated, micropropagation, and plant metabolite production from woody plants. In: Hannover, J.W., Reathley, D.E (eds). Genetic manipulation of woody plants. Plenum, New York. 149-166. McGillivray, J.H. 1961. Vegetable Production HcGraw-Bill Book Company, Inc. New York, Toronto, Londcm. Murashige, T. 1973. Somatic plant cell. In P.F. Kruse, and M.K. Patteren, Tissue Culture Methods and Applications (ed). Academic Press Inc. New Yo*. 170-172. - 1974. Plant propagation through tissue culture. Ann. Rev. Plant Physiol. 25: 135-166. Nabors, M.W., Heysen, J.W., Dykes, T.A. and DeMott, K.J. 1983. Long duration high frequency plant regeneration from cereal tissue cultures. Planta 157: 385-391. Nagasawa, A and J.J. Finer. 1988. Introduction of morphogenic callus cultures from leaf tissue of garlic HortScience. (23): 1068-1070. Novak, F. J. and P. Havranek. 19.75. Attempts to overcome the sterility of common Garlic (Alliua sativum L.). Biol. Plant. 17(5): 376-179. Novak, F. J., L. Havel and J. Dolezel. 1982. In vitro breeding system of allium In Plant Tissue Culture. 1982. A. Fujiwara (ed.) p. 767-768. Maruzen. Tokyo. Novak, F.J., L. Havel and J. Dolezel. 1986. Allium p. 419-456. In D.A. Evans, W.R. Sharp and P.V. Ammirato (eds). Handbook of Plant Cell Culture. Vol IV. Mc.Mullan Pub. Co. New York.
Quak, F. 1970. Review of heat tretment and meristem tip culture as methods to obtain virus-free plants, Inter. Soc. for Hort, Congr. Tel-Aviv, Israel. Ministry of Agric. TelAviv. 1972. Vol. 3: 13-23. Raghavan, V. 1976. Experimental Embryogenesis in Vascular Plants. New York. Academic Press. Ramulu, K.S. 1985. Origin and nature of somaclonal variation in potato. In Semal, J. feds) Somaclonal Variations and Crop Improvement. Proceedings of a Seminar in the CEC Programme of Coordination of Research on Plant Protein Improvement, Gembloux, Belgium. Reinert, J and J.P.S. Bajaj. 1977. Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Culture. Berlin. Springer-Verlag. Schneider, E.F. 1970. The rest period of rhododendron from buds. 11. Studies of the rest period in tissue culture as in Situ. Exp. Bot. 21: 799-807. Sen, S. 1974. Differentiated nuclei and elucidation of chromosomal central of differentiation, Nucleus 17: 40-51. Sikka, K., Sharma, A.K. 1976. The effects of some herbicides on plant chromosomes. Proc. Uhannat. Sci. Acad. 42: 299-307. Stace Smith, R., and Mellor, F.C. 1968. Eradication of potato virus x and s by thermotherapy and axillary bud culture. Phytopathology 58: 199-203. Stone, O.M. 1963. Factors affecting the growth of carnation plants from shoot apices. Ann. Appl. Biol. 52: 199-209. Shukla, R.S. and P.S. Chandel. 1977. Cytogenetics and Evolution. S. Chand & Co. Ltd. Ram Nagar, New Delhi Suh, S.K. and A.G. Park. 1986.. Studies on the anther culture of garlic (AILium sativua L.) I. Callus formation and plant regeneration J. Korean Soc. Hortic Sci. 27 (2): 89-95.
Tapia, M.I. 1987. Organogenesis and in vitro regeneration of garlic (Allium sativum L.) Plants. Simiente. 57(3): 103-104. Theodoro, C. 1976. How to Grow Garlic. UPLB. College of Agric. College, Laguna. Thorpe, T.A. 1981. Plant Tissue Culture Methods and Applications in Agriculture Academic Press. New York. London. Toronto. Sydney. Sari Fransisco. Tisserat, B. 1985. Embryogenesis, organogenesis and plant regeneration. In Plant Cell Culture a Practical Approach. Dixon, R.A. (ed). IRL. Press. Limited. Torres, K.C. 1989. Tissue Culture Tecniques for Horticultural Crops. An AVI Book Published by Van Nostrand. Reinhold, New York. Tulecke, W., Leonard, H.W., Alan Rutner, H.J., Laurencot. 1961. The biochemical composition of coconut water (coconut milk) as related to its use plant tissue culture. Centr: kyce Thompson Inst. 21: 115-128. Vine, S.J. 1968. Improved culture of apical tissue for production of virus free strawberries. J. Hortic. Sci. 43: 293-317. Walkey, D.G. 1968. The production of virus-free rhubarb by apical tip culture. J. Hortic. Sci. 43: 283-287. Wang, P.J. and L.C. Huang. 1976. Beneficial effects of activated charcoal on plant tissue and organ cultures. In vitro. 12 ( 3). Warayanaswamy, S. 1977. Regeneration of plants from tissue cultures. In applied and fundamental aspects of plant, cell, tissue and organ culture. J. Reinert and Y.P.S. Bajaj. (eds). Berlin. Springer- Verlag. Wareing, P.F., and I.D.J. Phillips. 1978. Sterile culture method in studies of,differentiation. In the Control of Growth and Differentiation in Plant. (ed). Pergamon Press. Oxford. Wattimena, G.A. 1987. Zat Pengatur Tumbuh. Lab. Kultur Jaringan Tanaman. PAU. BIOTEKNOLOGI, IPB Bogor, Dirjen Pendidikan Tinggi Departemen P dan K.
---- ----- 1988. Peranan Kultur Jaringan dalam Mempertinggi Produksi Pertanian di Indonesia. Makalah yang Disampaikan pada Seminar Kultur Jaringan Tanaman di Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya, Malang. 1988 (Tidak dipublikasikan). Weaver, R.J. 1978. Plant Growth Substances in Agriculture. W.H. Freeman and Company. San Fransisco. Winata, L. 1987. Teknik Kultur Jaringan. Lab. Kultur Jaringan Tanaman. PAU Bioteknologi IPB Bogor. Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi. Departemen Pendidikan dan Kebudayaan. Yeoman, M.M. 1970. Early Development Callus Cultures. Int. Rev. Cytol. Ziauddin, A dan K.J. Kasha. 1990. Longterm callus cultures of diploid barley (Hordeum Vulgare) 11. Effect of auxins on chomosomal status of cultures and regeneration of plants. Euphytica 48: 279-286.
Tabel Lampiran 1. Komposisi Medium MS dan BDS MS BDS COCl2. 6 H20 H3M3 NaMO04. 2 H20 NAH2P04. 2 H20 FeSO*. 7 H20 Na2 EDTA Nicotinic Acid Thianin HC1 Pyridoxine HC1 Meso Inositol Sucrosa
Tabel Lampiran 2. Komposisi Medium AZ Na2 EDTA Nicotinic Acid Thianin HC1 Pyridoxine HC1 Meso Inositol Sucrosa
Tabel Lampiran 3. Metode Pemeriksaan Kromosom 1. Arnbil akar yang bagus dan segar, potong ujangnya kira-kira 0,5-1 cm. 2. Masukkan potongan akar ke dalam larutan 8-hidroksiquinolin (0,15 gr / 500 cc air) selama 5 jam dalam lemari es. 3. Panaskan air sampai suhu 60O~ 4. Masukkan botol kecil yang berisi larutan asam asetat 45% satu bagian dan HC1 1 N tiga bagian ke dalam air yang sudah dipanaskan. 5. Material difiksasi dalam larutan asam asetat 45% selama 10 menit kemudian masukkan ke dalam asam asetat 45% dan HC1 1 N (1 : 3) dalam suhu 60 c selama dua 6. Letakkan material ke objek gelas, diberi zat warna, aceto orcein, kemudian disquash. 7. Lihat di bawah mikroskop.
Tabel Lampiran 4. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Kalus dengan Media AZ Kode 4-CPA 2,4-D Kinetin perlakuan (mg/l) (mg/l) (mg/l) Tabe 1 Lampiran 5. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 1) Kode perlakuan NAA (mg/l)
Tabel Lampiran 6. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 2) Kode perlakuan NAA (mg/l) Tabel Lampiran 7. Kompasisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 3) Kode perlakuan NAA BA GA (mg/l) (mg/l) (mg/l)
Tabel Lampiran 8. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 4) Kode NAA BA GA perlakuan (mg/l) (mg/l) (mg/l) Tabel Lampiran 9. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 5) Kode NAA BA Picloram perlakuan (mg/l) (mg/l)
Tabel Lampiran 10. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 6) Kode NAA BA GA Glutamin Glisin perlakuan (mg/l) (mg/l) (mg/l) (mg/l) (mg/l) Tabel Lampiran 11. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 7) Kode perlakuan NAA B A Picloram (mg/l) (mg/l) (mg/l)
Tabel Lampiran 12. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 8) Kode perlakuan NAA (mg/l) Tabel Lampiran 13. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 9) Kode NAA BA perlakuan (mg/l) (mg/l)
Tabel Lampiran 14. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 10) Kode NAA BA 2-iP CCC Coumarin perlakuan (mg/l) (mg/l) (mg/l) (mg/l) (mg/l)
Tabel Lampiran 15. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 11) Kode perlakuan Picloram (mg/l)
Tabel Lampiran 16. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 12) Kode NAA 2-iP Ancymidol perlakuan (mg/l) (mg/l) (mg/l)
Tabel Lampiran 17. Komposisi Zat Pengatur Tumbuh untuk Induksi Tunas secara Langsung dengan Media BDS (Penelitian Pendahuluan 13) Kode NAA 2-iP Adenin sulfat perlakuan 1 (mg/l) (mg/l) Tabel Lampiran 18. Sidik Ragam Berat Basah Kalus pada Umur 6 Minggu Sesudah Kalus Terbentuk " Sumber keragaman DB JK KT F P Perlakuan 3 1,791 0,5969 9,289 0,0011 Sisa 16 1,028 0,0643 -
Tabel Lampiran 19. Sidik Ragam Berat Kering Kalus pada Umur 6 Minggu Sesudah Kalus Terbentuk - - - - - - -- - - Sumber keragaman DB JK KT F P Perlakuan Sisa Tabel Lampiran 20. Sidik Ragam Berat Basah Kalus pada Umur 8 Minggu Sesudah Kalus Terbentuk Sumber keragaman DB JK KT F P -- ----- Perlakuan 3 2,241 0,7471 2,032 0,1491 Sisa 16 5,882 0,3676 - Tabel Lampiran 21, Sidik Ragam Berat Kering Kalus pada Umur 8 Minggu Sesudah Kalus Terbentuk - - - Sumber keragaman DB JK KT F P Perlakuan 3 0,00543* 0,0018 5,329 0,0098 Sisa 16 0,00544 0,0003 ----
Tabel Lampiran 22. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Bertunas pada Minggu ke-10 Setelah Dikulturkan - ------ - Perlakuan Ya Tidak Total Total 21 124 145 ---- -- Khi-kuadrat = 41.112 ; D.B = 11 ; PROB. = 2.261E-05
Tabel Lampiran 23. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Bertunas pada Minggu ke-10 setelah Dikulturkan Setelah Perlakuan W4 Dikeluarkan Diperoleh Kelompok Homogen Perlakuan Ya. Tidak Total w1 w2 w3 W5 6 ' 0 (1.26) 13 (11.741 13 2 (1.36) 12 (12.64) 14 2 (1.16) 10 (10.84) 12 3 (0.97) 7 ( 9-03] 10 2 (1.16) 10 (10.84) 12 w11 1 (1.26) 12 (11.74) 13 w12 0 (1.16) 12 (10.84) 12 Total 13 121 134 Khi-kuadrat = 12.030 ; D.B = 10 PROB. = 0.2831
Tabel Lampiran 24. Uji Tukey dari Jumlah Tunas/Kultur pada Minggu ke 10 Setelah Dikulturkan Jumlah tunas minggu 10 Perlakuan N... DB Rata-rata Va r Galat kuadrat tenjgah 5.17
Tabel Lampiran 25. Uji Tukey dari Jumlah Tunas/Kultur pada Minggu ke 10 Setelah Dikulturkan Setelah Perlakuan W4 Dikeluarkan Diperoleh Kelompok Homogen Jumlah tunas minggu 10 Perlakuan M... DB Rata-rata - Galat kuadrat tengah 1.14
Tabel Lampiran 26. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Berakar pada Minggu ke 10 Setelah Dikulturkan Perlakuan Ya Tidab Total W1 2 (3.27) 11 ( 9.73) 13 Total 36 Khi-kuadrat = 32.620 ; D.B = 11 ; PROB. = 6.0583-04
Tabel Lampiran 27. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Berakar pada Minggu ke 10 Setelah Dikulturkan Kelompok I Perlakuan Ya Tidak Total Total 16 91 107 Rhi-kuadrat = 11,651 ; D.B = 8 ; PROB. = 0.1675 Kelompok I1 Per lakuan Ya Tidak Total Total 20 Kh'i-kuadrat = 0.900 ; D.B = 2 ; PROB. = 0.6376
Tabel Lampiran 28. Uji Tukey dari Jumlah Akar/Kultur pada Minggu ke 10 Setelah Dikulturkan Jumlah akar minggu 10 Perlakuan N... DB Rata-rata Var Galat kuadrat tengah 1.76
Tabel Lampiran 29. Uji Tabel Kontingensi dari Jumfah Kultur Bertunas pada Minggu ke-12 Setelah Dikulturkan Perlakuan Ya Tidak Total Total 50 293 343 - - - Khi-kuadrat = 57.276 ; D.B = 19 ; PROB. = 9.9033-06
Tabel Lampiran 30. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Bertunas pada Minggu ke-12 Setelah Dikulturkan Kelompok I -- Perlakuan Ya Tidak Total Total 31 57 88 Khi-kuadrat = 3.729 ; D.3 = 4 ; PROB. = 0.4440 Kelompok I1 Perlakuan Ya Tidak Total Total 19 236 255 Khi-kuadrat = 17.893 ; D.B = 14 ; PROB. = 0.2117
Tabel Lampiran 31. Uji Tukey dari Jumlah Tunas/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah tunas minggu 12 Perlakuan N... DB Rata-rata Var Galat kuadrat tengah 2.10
Tabel Lampiran 32. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Berakar pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Perlakuan Ya Tidak Total Total -
Tabel Lampiran 33. U3i Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Berakar pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Kelompok I -- - - - - Per lakuan Ya Tidak Total Total 6 229 235 Khi-kuadrat = 21.862 ; D.B = 13 ; PROB. = 0.0575 Kelompok I1 Perlakuan Ya Tidak Total Total 35 71 106
Tabel Lampiran 34. Uji Tukey dari Jumlah Akar/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah akar minggu 12 Per lakuan N... DB Rata-rata Var Galat kuadrat tengah 4.18
\ Tabel Lampiran 35. Uji Tabel Kontingensi dari Jwnlah Kultur Bertunas pada Minggu ke-12 Setelah Dikulturkan Perlakuan Ya Tidak Total Total 29 90 219 - - Khi-kuadrat = 6.556 ; D.B = 9 ; PROB. =.6832
Tabel Lampiran 36. Uji Tukey dari Jumlah Tunas/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah tunas minggu 12 Perlakuan N ---------------------- DB Rata-rata Var Galat kuadrat tengah 3.87
Tabel Lampiran 37. Uji Tukey dari Jumlah Tunas/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah tunas minggu 12 Perlakuan N... DB Rata-rata Galat kuadrat tengah 3.87 110 -
Tabel Lampiran 38. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Berakar pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Perlakuan Ya Tidak Total Total 80 39 119 - Khi-kuadrat = 4.789 ; D.B = 9 ; PROB. =.8523
Tabel Lampiran 39. Uji Tukey dari Jumlah Akar/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah akar minggu 12... DB Rata-rata Var Gafat kuadrat tengah 16.06
Tabel Lampiran 40. Uji Tukey dari Jumlah Akar/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah akar minggu 12 Per lakuan N... DB Rata-rata Galat kuadrat tengah 16.06 110
Tabel Lampiran 41. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Bertunas pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Per lakuan Ya Tidak Total Total 76 121 197
Tabel Lampiran 42. Uji Tukey dari Jumlah Tunas/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah tunas minggu 12 Perlakuan N... DB Rata-rata Var Galat kuadrat tengah 39.03
Tabel Lampiran 43. Uji Tukey dari Jumlah Tunas/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah akar minggu 12 Perlakuan N... DB Rata-rata Galat kuadrat tengah 39.03 177
Tabel Lampiran 44. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Berakar pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan ------- Per lakuan Ya Tidak Total M1 8 9 (6.51) 1 (3.49) 10 --- Total 127 68 195 Khi-kuadrat = 30.388 ; D.B = 17 ; PROB. =.0237
Tabel Lampiran 45. Uji Tabel Kontingensi dari Jumlah Kultur Berakar pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Setelah M7 Dikeluarkan Diperoleh Kelompok Homogen Perlakuan Ya Tidak Total Total 126 59 185 Khi-kuadrat = 17.026 ; D.B = 16 ; PROB. = 0.3839
Tabel Lampiran 46. Uji Tukey dari Jumlah Akar/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Jumlah tunas minggu 12 Perlakuan N... DB Rata-rata Var
Tabel Lampiran 47. Uji Tukey dari Jumlah Akar/Kultur pada Minggu ke 12 Setelah Dikulturkan Setelah Perlakuan M7 Dikeluarkan Diperoleh. Kelompok Homogen Jumlah akar minggu 12 Perlakuan N... DB k Rata-rata Galat lmadrat tengah 23.45 177
Tabel Lampiran 48. Analisis Sidik Ragam dari Berat Basah kalus Sumber keragaman Db JK KT Nilai F F1 Error Perlakuan berpengaruh nyata terhadap respon pada 5% Tabel Lampiran 49. Analisis Sidik Ragam dari Berat Basah Kalus Setelah perlakuan Z4 dikeluarkan Sumber keragaman Db Nilai F F1 Error Perlakuan tidak berbeda nyata pada taraf 5%, profil ke-3 perlakuan keempat Tabel Lampiran 50. Kontras Variabel : Profil 1 (Berat Basah Kalus) Sumber keragaman Db Nilai F Rata-rata 1 11.74430 11.74430 32.37 F1 2 0.45508 0.22759 0.63 Error 12 4.35389 0.36282
Tabel Lampiran 51. Kontras Variabel : Profil 2 (Berat Basah Kalus) Sumber Db JK KT Nilai F keragaman Error 12 3.76141 0.31345 Tabef Lasipiran 52. Kontras Variabel : Profil 3 (Berat Basah Kalus) Sumber Db JK KT Nilai F keragaaan Rrrta-rata 1 4.62293 4.62293 16.46 0.0016 Fl 2 0.2-5900 0.12954 0.46 0.6412 Error 12 3.37008 0.28084 Tabel Lampiran 53. Analisis Sidik Ragam dari Berat Kering Kalus Sumber Db JK KT Nilai F keraganaan Fl 3 0.00454 0.00151 7.00 0.0032 Error 16 0.00346 0.00022
Tabel Lampiran 54. Analisis Sidik Ragam dari Berat Kering Kalus Setelah perlakuan Z4 dikeluarkan Sumber Db JK KT Nilai F keragaman Error 12 0.00209 0.00017 Perlakuan tidak berbeda nyata pada taraf 5%, prof il- ke-3 perlakuan keempat Tabel Lampiran 55. Kontras Variabel : Profil 1 (Berat Kering Kalus) Sumber Db JK KT Nilai F keragaman Rata-rata 1 0.00587 0.00587 14.15 0.0027 F1 2 0.00042 0.00021 0.50 Error 12 0.00498 0.00041 Tabel Lampiran 56. Kontras Variabel : Profil 2 (Berat Kering Kalus) Sumber Db JK. KT Nilai F keragaman Error 12 0.00489 0.00041
Tabel Lampiran 57. Kontras Variabel : Profil 3 (Berat Kering Kalus) Sumber Db JK KT Nilai F keragaman Error 12 0.00594 0.00049
Tabel Lampiran 57. Kontras Variabel : Profil 3 (Berat Kering Kalus) Sumber Db JK KT Nilai F keragaman Rata-rata 1 F1 2 Error 12