PENGAMBILAN SPESIMEN YANG BENAR UNTUK KULTUR RESISTENSI ANTIMIKROBA. dr.anti Dharmayanti, SpPK(K)

Transkripsi

1 PENGAMBILAN SPESIMEN YANG BENAR UNTUK KULTUR RESISTENSI ANTIMIKROBA dr.anti Dharmayanti, SpPK(K)

2 PRA ANALITIK PENANGANAN SPESIMEN MIKROBIOLOGI AMAT PENTING UTK AKURASI HASIL & INTERPRETASI

3 SPESIMEN KULTUR MIKROBIOLOGI Titik kritis pra analitik pemeriksaan mikrobiologi pengambilan spesimen secara benar: 6 BENAR Kesalahan salah satunya berakibat: Tidak tumbuh kuman, tumbuh flora normal atau kuman kontaminan Tidak mudah, perlu komunikasi, koordinasi & kerjasama semua pihak

4 PENGAMBILAN SAMPEL MIKROBIOLOGI 1. Benar lokasi : mewakili material lokasi infeksi dan bebas kontaminasi 2. Benar waktu pengambilan: jumlah optimal perjalanan penyakit c : - darah: akut, saat demam kuman sebelum terapi AB 90% (+) 3. Benar volume spesimen: cukup utk kultur& Gram (k.p.dlm mediatransport)

5 PENGAMBILAN SAMPEL MIKROBIOLOGI 4. Benar cara pengambilan : - urine MSU, urine bag khusus bayi 5. Benar wadah : steril, sesuai jenis spesimen 6. Benar identitas & spesimen: 7. Cuci tangan prosedural dan tindak aseptik dalam setiap prosedur pengambilan spesimen

6 PENGUMPULAN SPESIMEN Perlu data: Asal spesimen (pemrosesan berbeda) tgl & jam diambil Diagnosis/riwayat relevan, nama DPJP & kontak person jika emergensi Sampel cukup Media transport benar Pengiriman sesegera mungkin Dikonsultasikan lab Infeksi/Mikrobiologi jika ada keraguan

7 KRITERIA TOLAKAN SPESIMEN (WHO) 1. Identitas pasien salah/tidak lengkap 2. Volume spesimen kurang 3. Wadah tidak sesuai 4. Spesimen terkontaminasi 5. Pengiriman/ penyimpanan spesimen salah 6. Tidak diketahui waktu & lokasi pengambilan sampel

8 ALUR SPESIMEN Penerimaan spesimen dari pasien (poli, ruangan) Pemrosesan spesimen : mikroskopis (Gram) dan kultur bakteri Inkubasi 1 malam (1 hari), baca hasil besoknya Identifikasi bakteri dan lakukan sensitivitas tes (1 hari), manual Baca hasil dan laporkan Turn-around-time : 1 hari mikroskopis, 2-3 hari (atau lebih, jika fastidious) untuk biakan bakteri total ± 4-5 hari (darah 5-6 hari)

9 SPESIMEN YANG DIAMBIL PASIEN SENDIRI Urin, sputum, feses, semen Jangan dianggap pasien sudah tahu cara mengambil spesimen sendiri Perlu edukasi (Instruksi tertulis, verbal dan gambar)

10

11 PENGAMBILAN SPESIMEN DARAH 1. Diambil 1 set, 2 lokasi berbeda (kiri, kanan) Set mkn > hsl (+) mkn 2. Bila mungkin sebelum AB, waktu suhu mulai 3. Sesaat sebelum pemberian AB berikutnya (pasien rawat sedang terapi AB)

12

13 PENGAMBILAN SPESIMEN DARAH 4. Volume neonatus ml, anak 2-5 ml,dws 8-10 ml 5. Dalam Bactec, tidak dalam spuit, kuman terperangkap dalam bekuan false negatif 6. Identitas, kirim segera Bila terpaksa ditunda, simpan suhu kamar maksimal 24 Jam, jangan masuk kulkas

14 Alat & bahan untuk biakan darah 1. Spuit steril 10 ml Larutan antiseptik: chlorhexidine gluconate dalam alkohol 70% Botol media mengandung resin (netralisir AB)

15 Biakan darah Gunakan sarung tangan steril Perhatikan tindak antiseptik, usap tutup botol dengan alkohol 70% biarkan kering 1 2 menit sblm flebotomi Masukkan darah langsung ke dalam botol dan campurkan dengan menggoyang botol Identitas: nama, asal ruang, tanggal, jam pengambilan. Segera kirim ke laboratorium

16 PENGAMBILAN DARAH

17

18

19

20 BIAKAN DARAH Berapa jumlah darah per botol? WHO: Neonatus - 0,5 ml ( 1 btl) Bayi 1 tahun - 1 ml (2) Anak 2 tahun - 2 ml (2) 3 tahun - 3 ml (2) 4 tahun - 4 ml (2) 5 tahun - 5 ml (2) 6 tahun - 6 ml (2) > 6 tahun - 8 ml (2) Dewasa - 10 ml / botol (2)

21 Ketidaksesuaian sampel yang didapatkan - Kultur darah diambil setelah pemberian AB hasil negatif - Volume darah tidak optimal/ hanya 1 lokasi hasil negatif. Hasil kultur darah : 5 hari pasca inokulasi

22 BIAKAN URIN Supra pubic punction/spp Urin porsi tengah : pasien harus dipandu tidak dibiarkan bak sendiri stlh desinfeksi, bbrp tetes I dibuang & baru ditampung Pungsi kateter : TIDAK BOLEH DARI URINE BAG Aspirasi melalui urine port : jarum 28 G Bersamaan dengan bahan urinalisis/ul

23 Alat dan bahan A. Urin porsi tengah 1. Sabun dan air mengalir 2. Pot urin steril 3. Untuk bayi kantong penampung urin steril

24 B. Urin suprapubik 1. Larutan antiseptik 2. Larutan anestesi lokal 3. Spuit 4. Pot urin steril C. Urin kateter 1. Larutan antiseptik 2. Klem 3. Spuit 4. Pot urin steril

25 PENGAMBILAN URIN PORSI TENGAH PADA WANITA 1. Pasien diberitahu tindakan yang akan dilakukan dengan jelas menggunakan gambar 2. Pasien mencuci tangan dengan sabun dan bilas dengan air mengalir sampai bersih 3. Pasien duduk di kloset, cuci genitalia luar menggunakan sabun dari arah depan ke belakang lalu bilas dengan air mengalir dari arah depan ke belakang

26 PENGAMBILAN URIN PORSI TENGAH PADA WANITA 4. Buka pot urin steril, letakkan tutup dengan bagian dalam yang steril menghadap ke atas 5. Dengan 2 jari, labia mayora dibuka sehingga urin dapat mengalir tanpa menyentuh labia, agar tidak terjadi kontaminasi kuman dari labia mayora 6. Pasien berkemih. Tampung urin ketika aliran urin masih kencang dalam pot steril urin sebanyak ± ml

27 PENGAMBILAN URIN PORSI TENGAH PADA WANITA 7. Sisa urin selanjutnya tidak ditampung, lalu penampung ditutup 8. Pot urin diberi label ( tanggal,jam pengambilan, nama, nomor rekam medis,jenis spesimen dan asal ruangan) 9. Dikirim segera dalam waktu 2 jam setelah diambil. Penundaan:simpan 4⁰C 10. Jika dikirim >2 jam, urin dibawa dalam keadaaan dingin (ice pack)

28 PENGAMBILAN URIN PORSI TENGAH PADA PRIA 1. Pasien diberitahu tindakan yang akan dilakukan 2. Pasien diminta mencuci tangan dengan sabun dan air sampai bersih 3. Cuci ujung penis dengan sabun dan bilas dengan air mengalir 4. Buka pot steril dengan tutup bagian dalam menghadap ke atas

29 PENGAMBILAN URIN PORSI TENGAH PADA PRIA 5. Pasien berkemih. Urin yang keluar pertama dibuang 6. Urin berikutnya ditampung dalam pot steril 10-20ml 7. Sisa urin selanjutnya tidak ditampung, kemudian pot urin ditutup 8. Pot urin diberi label (tanggal,jampengambilan, nama, nomor rekam medis, jenis spesimen & tempat rawat)

30 9. Kirim segera urin ke laboratorium bersama formulir permintaan pemeriksaan dalam waktu 2 jam pada suhu ruang 10 Bila ada penundaan, simpan urin pada suhu 4⁰C selama 24 jam

31 Cara Pengambilan Urin Kateter 1. Klem kateter di bawah tempat pengambilan urin (sampling port), biarkan sampai terlihat produksi urin di dalam kateter 2. Desinfeksi tempat pengambilan pada kateter dengan alkohol 70%/ povidone iodine 3. Gunakan spuit (Jarum suntik 28 G) steril untuk mengambil spesimen urin sebanyak 5-10ml

32

33 CARA PENGAMBILAN URIN KATETER 4. Masukkan urin ke dalam pot urin steril 5. Pot diberi label (tanggal, jam pengambilan, nama, tanggal lahir, nomor rekam medik, jenis spesimen dan tempat rawat) 6. Segera kirim ke laboratorium dalam waktu 2 jam pada suhu ruang 7. Bila terjadi penundaan, urin dapat disimpan pada suhu 4⁰C maksimum 24 jam

34 CARA PENGAMBILAN SPESIMEN URIN PADA BAYI Perlu kantong penampung urin khusus Cara: 1. Petugas mencuci tangan dengan sabun dan air 2. Daerah genital dan sekitarnya dibersihkan dengan air dan sabun, lalu dikeringkan 3. Buka perekat dan pasangkan 4. Urin yang tertampung dituang hati-hati ke dalam pot urin steril

35 Ketidaksesuaian kultur urin yang didapatkan: - Pengambilan kultur sesudah terapi AB false negatif - Jam pengambilan tidak dicantumkan urin segar? Pengiriman tidak segera? kontaminasi, salah interpretasi - Urin bayi tidak memakai urin bag

36 PENGAMBILAN SPESIMEN CAIRAN TUBUH Tidak mungkin diambil ulang, lalu?? Benar wadah : penampung steril, spuit steril Perlu identitas pasien, tgl &jam pengambilan Pengiriman : Segera, jika diperlukan analisis cairan tubuh harus dikirim dw 30 sejak pengambilan karena sel akan rusak

37 Ketidaksesuaian sampel yang didapatkan: - Wadah seadanya (botol tidak steril) kontaminasi - label tidak lengkap(tanpa asal ruangan) sampel tertukar, dikembalikan kemana? - Tidak ada keterangan jam pengambilan validitas hasil?

38 PENGAMBILAN SPESIMEN PUS/SWAB Diambil dari dasar luka, bukan pusnya Dalam media transpor/ tabung steril Dikirim ke lab dlm waktu < 1 jam sejak pengambilan Abses: jarum/spuit steril lab Diberi label. Dicantumkan lokasi/asal bahan

39 Bahan pus luka, IDO, decubitus Peralatan : kapas alkohol 70 %, 1 psg (= 2 bh) lidi kapas steril terbungkus ( 1 utk slide pewarnaan Gram, 1 lagi utk swab luka), media transport Stuart Bersihkan bagian luar/sekitar luka dgn antisepsis (alkohol, povidone iodine), hati2 antiseptik jgn sampai masuk kedalam luka Bagian dalam luka dibersihkan dengan NaCl steril.

40 Gunakan 2 lidi kapas steril, buka bungkus hati2 spy tetap steril, masukkan keduanya ke dasar luka Salah 1 lidi kapas dioleskan pada slide yang disediakan utk pewarnaan Gram Lidi kapas yang lain dimasukkan ke dalam media transport Stuart untuk kultur

41 Ketidaksesuaian sampel yang didapatkan: -Umumnya belum mencantumkan lokasi/ asal bahan pus atau sekret yang diambil sulit interpretasi & pola kuman - Pus banyak tapi tidak dari dasar luka debris, leukosit false negatif - Pasca wound dressing dengan betadine?

42 PENGAMBILAN SAMPEL BIAKAN SPUTUM Wadah : steril, bertutup & bermulut lebar Waktu, terbaik : pagi hari - pasien berkumur dulu dengan air matang - tdk dianjurkan potongan slang ETT rancu kuman kontaminan, gunakan mucous extractor - Jumlah sampel adekuat.

43 Spesimen Sputum Kriteria sputum baik: 1. Makroskopis: mukoid, purulen atau bercampur darah 2. Mikroskopis: epitel<10 dan PMN >25 dengan pembesaran 10x10

44 Di laboratorium : Penilaian kelayakan sputum menilai epitel & leukosit secara mikroskopis (Kriteria Bartlett) untuk bedakan sputum/ludah Note: Sputum: deteksi infeksi saluran napas bawah Apus tenggorok tidak bisa menggantikan sputum deteksi infeksi saluran napas atas

45 Ketidaksesuaian sampel yang didapatkan: Sputum terkontaminasi ludah tidak berkumur? perlu ulang/ sampel baru Potongan ETT rawan terkontaminasi Jumlah minim sekali/kering, tidak dapat diperiksa

46 PEMERIKSAAN ANAEROB Kriteria spesimen yang baik untuk pemeriksaan kuman anaerob - Spesimen yang baik diambil secara tepat (aspirasi/ biopsi jaringan, swab?) - Tidak tercemar oleh mikroba yang tak diinginkan - Terhindar dari kontak dengan udara - Menggunakan media transport anaerob (bila perlu)

47

48 PERMASALAHAN UMUM PENGAMBILAN SAMPEL Sampling, pelabelan tidak prosedural, data tidak lengkap Sampel salah (ETT), jumlah kurang kering Swab luka : a. Pus bukan dari dasar luka & tumpah karena terlalu banyak b. Membuat preparat Gram salah Darah kultur Bactec Pemberian label di barcode (menyulitkan pembacaan barcode di alat) Sampel urin sebaiknya disertai urinalisis

49 Pengumpulan Spesimen Sangat penting - salah pengumpulan salah hasil, akhirnya pelaporan yang salah. Tidak membantu dalam diagnostik, penanganan pasien, dapat berbahaya. Pengambilan spesimen yang benar harus memperhatikan syarat pengambilan Spesimen yang tidak memenuhi syarat sebenarnya harus ditolak karena akan mengacaukan/mempengaruhi hasil biakan

50