BAB IV DESKRIPSI DAN ANALISA DATA

dokumen-dokumen yang mirip
BAB IV DESKRIPSI DAN ANALISA DATA

BAB III METODE PENELITIAN

BAB III METODE PENELITIAN

UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK DAUN SIRIH HITAM (Piper sp.) TERHADAP DPPH (1,1-DIPHENYL-2-PICRYL HYDRAZYL) ABSTRAK

Prosiding SNaPP2015 Kesehatan pissn eissn

KAJIAN AWAL AKTIFITAS ANTIOKSIDAN FRAKSI POLAR KELADI TIKUS (typhonium flagelliforme. lodd) DENGAN METODE DPPH

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. Sampel yang digunakan pada penelitian ini adalah kentang merah dan

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. Gambar 14. Hasil Uji Alkaloid dengan Pereaksi Meyer; a) Akar, b) Batang, c) Kulit batang, d) Daun

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. (Pandanus amaryllifolius Roxb.) 500 gram yang diperoleh dari padukuhan

BAB III METODOLOGI PENELITIAN

III. METODOLOGI PENELITIAN. Metodologi penelitian meliputi aspek- aspek yang berkaitan dengan

STUDI KOMPARASI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN PADA DAUN SALAM

BAB III METODE PENELITIAN

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. di Laboratorium Kimia Riset Makanan dan Material Jurusan Pendidikan

AKTIVITAS ANTIOKSIDAN KULIT BUAH KAKAO MASAK DAN KULIT BUAH KAKO MUDA

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Instrumen Jurusan Pendidikan Kimia FPMIPA Universitas Pendidikan

BAB I PENDAHULUAN A. Latar Belakang Masalah

BAB III METODOLOGI PENELITIAN

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk menguji aktivitas antioksidan pada

BAB III METODOLOGI PENELITIAN

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. FPMIPA Universitas Pendidikan Indonesia dan Laboratorium Kimia Instrumen

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Maret sampai dengan Juni 2012.

HASIL DAN PEMBAHASAN Persiapan dan Ekstraksi Sampel Uji Aktivitas dan Pemilihan Ekstrak Terbaik Buah Andaliman

4. HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB III METODE PENELITIAN

BAB III METODE PENELITIAN. salam dan uji antioksidan sediaan SNEDDS daun salam. Dalam penelitian

IDENTIFIKASI SENYAWA ANTIOKSIDAN DALAM SELADA AIR (Nasturtium officinale R.Br)

HASIL DAN PEMBAHASAN Penetapan Kadar Air Hasil Ekstraksi Daun dan Buah Takokak

BAB III METODE PENELITIAN

HASIL. Kadar Air Daun Anggrek Merpati

BAB III. Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Riset, Jurusan Pendidikan Kimia,

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. polyanthum) asal NTB. Untuk memastikan identitas dari tanaman salam

AKTIVITAS PENANGKAP RADIKAL BEBAS EKSTRAK ETANOL KULIT BUAH NAGA DENGAN METODE DPPH (1,1-DIFENIL-2-PIKRILHIDRAZIL)

BAB III METODE PENELITIAN

Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Dan Fraksi Kulit Buah Jengkol (Archidendron jiringa (Jeck) Nielsen Dengan Metode Peredaman Radikal Bebas DPPH

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. identitas tanaman tersebut, apakah tanaman tersebut benar-benar tanaman yang

BAB III METODE PENELITIAN. di Laboratorium Kimia Riset Makanan dan Laboratorium Kimia Analitik

BAB III METODOLOGI PENELITIAN

3 METODOLOGI 3.1 Waktu dan Tempat 3.2 Bahan dan Alat

BAB III METODELOGI PENELITIAN

HASIL DA PEMBAHASA. Kadar Air

BAB III METODOLOGI PENELITIAN

UNIVERSITAS PANCASILA DESEMBER 2009

BAB III METODE PENELITIAN. Metode penelitian yang dilakukan adalah penelitian eksperimental, karena

BAB III MATERI DAN METODE. Laboratorium Nutrisi dan Pakan Ternak Fakultas Peternakan dan Pertanian,

BAB III METODE PENELITIAN. dengan tempat penelitian sebagai berikut :

BAB III METODE PENELITIAN. ini berlangsung selama 4 bulan, mulai bulan Maret-Juni 2013.

BAB III METODOLOGI PENELITIAN

METODE PENELITIAN Waktu dan Tempat Penelitian Alat dan Bahan Prosedur Penelitian

METODE Waktu dan Tempat Bahan dan Alat Tahapan

3. BAHAN DAN METODE Waktu dan Lokasi Penelitian. Pengambilan sampel karang lunak dilakukan pada bulan Juli dan Agustus

BAB III METODE PENELITIAN

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Riset, Jurusan Pendidikan Kimia,

BAB III METODE PENELITIAN

BAB III METODE PENELITIAN. Subjek penelitian ini adalah ekstrak etanol daun pandan wangi.

BAB 1 PENDAHULUAN 1.1. Latar Belakang

BAHAN DAN METODE. Bahan dan Alat

Aktivitas Antioksidan Ekstrak Daun Sirih Merah (Piper crocatum) Hasil Optimasi Pelarut Etanol-Air

BAB III METODE PENELITIAN

UJI FITOKIMIA DAN AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK DAUN RAMBUTAN (Nephelium lappaceum)dengan METODE DPPH (1,1-diphenyl-2-picryhidrazyl)

PENGARUH METODE EKSTRAKSI TERHADAP AKTIVITAS ANTIOKSIDAN KULIT BUAH DURIAN

BAB I PENDAHULUAN. A. Latar Belakang Masalah

BAB III METODE PENELITIAN. 3.1 Lokasi Penelitian Penelitian ini dilakukan dari bulan Maret sampai dengan Juni 2010 di

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Sampel atau bahan penelitian ini adalah daun M. australis (hasil

IDENTIFIKASI FITOKIMIA DAN UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK ETANOL TAUGE (Phaseolus radiatus L.)

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. membentuk konsistensi setengah padat dan nyaman digunakan saat

BAB III METODE PENELITIAN. Neraca analitik, tabung maserasi, rotary evaporator, water bath,

METODE. Waktu dan Tempat Penelitian

I. PENDAHULUAN. rusak serta terbentuk senyawa baru yang mungkin bersifat racun bagi tubuh.

4. PEMBAHASAN 4.1. Warna Larutan Fikosianin Warna Larutan secara Visual

Bab III Bahan dan Metode

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan Januari 2015 Juli 2015, bertempat di

DAFTAR ISI... HALAMAN JUDUL... HALAMAN PENGESAHAN... SURAT PERNYATAAN... PERNYATAAN PERSETUJUAN PUBLIKASI KARYA ILMIAH... PRAKATA...

III. METODE PENELITIAN di Laboratorium Biomassa Terpadu Universitas Lampung.

BAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Alat dan Bahan Prosedur Penelitian

BAB III BAHAN DAN METODE PENELITIAN

BIOKIMIA (Kode : F-07) AKTIVITAS ANTIOKSIDAN SIRUP ROSELA (Hibiscus sabdariffa) SELAMA PENYIMPANAN PADA SUHU RUANG

Jurnal Akademi Farmasi Prayoga ISSN-Online : X Diterbitkan Oleh Akademi Farmasi Prayoga Padang jurnal.akfarprayoga.ac.

BAB 4 HASIL PERCOBAAN DAN PEMBAHASAN

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. tanaman binahong (A. cordifolia) yang diperoleh dari Desa Toima Kecamatan

3 METODOLOGI 3.1 Waktu dan Tempat 3.2 Bahan dan Alat

SKRINING FITOKIMIA DAN UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN EKSTRAK KULIT BATANG LABAN (Vitex Pubescens Vahl)

3. METODOLOGI PENELITIAN

BAB 1 PENDAHULUAN 1.1. Latar Belakang Masalah

Lampiran 1. Surat Keterangan Determinasi

BAB I PENDAHULUAN. antioksidan. Hal ini terjadi karena sebagian besar penyakit terjadi karena adanya

IDENTIFIKASI FITOKIMIA DAN EVALUASI TOKSISITAS EKSTRAK KULIT BUAH LANGSAT (Lansium domesticum var. langsat)

Analisis Fitokimia (Harborne 1987) Uji alkaloid. Penentuan Bakteriostatik Uji flavonoid dan senyawa fenolik. Penentuan Bakterisidal

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Objek atau bahan penelitian ini adalah biji paria (Momordica charantia)

BAB II METODE PENELITIAN

BAB I PENDAHULUAN A. Latar Belakang Masalah

BAB 4 HASIL PERCOBAAN DAN PEMBAHASAN. Hasil pemeriksaan ciri makroskopik rambut jagung adalah seperti yang terdapat pada Gambar 4.1.

BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN. A. Determinasi Tanaman. acuan Flora of Java: Spermatophytes only Volume 2 karangan Backer dan Van

BAB 1 PENDAHULUAN 1.1. Latar Belakang

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB III METODE PENELITIAN. pendahuluan berupa uji warna untuk mengetahui golongan senyawa metabolit

HASIL DAN PEMBAHASAN Analisis Kadar Air Ekstraksi dan Rendemen Hasil Ekstraksi

BAB III METODE PENELITIAN

Transkripsi:

BAB IV DESKRIPSI DAN ANALISA DATA A. Deskripsi Data 1. Preparasi Sampel Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah daun salam (Syzygium polyanthum (Wight) Walp) dan daun jambu air (Syzygium samarangense (BL) Merr et. Perry) varietas delima yang diperoleh dari pekarangan rumah di Desa Wilalung Kecamatan Gajah Kabupaten Demak. Salam (Syzygium polyantum (Wight) Walp) dan jambu air (Syzygium samarangense (BL.) Merr et. Perry) merupakan tumbuhan asli Indonesia yang mudah tumbuh di pekarangan rumah. Daun salam (Syzygium polyantum(wight) Walp) mengandung senyawa aktif seperti minyak atsiri, tanin, flavonoid dan eugenol yang berfungsi sebagai antioksidan dan anti jamur. Daun salam dikenal di masyarakat sebagai penyedap masakan sekaligus sebagai tanaman obat yang mampu mengobati hipertensi, maag, kencing manis dan diare. 1 Penelitian sebelumnya diketahui bahwa daun jambu air mengandung senyawa aktif seteroid, fenolik dan triterpenoid. Daun jambu air (Syzygium samarangense (BL.) Merr et. 1 Ha Manan, Daun Salam untuk Diabet, Maag dan Hipertensi, (http://www.suaramerdeka.com/harian/0208/31/ragam3.htm), diakses 20 Desember 2013 pukul 20.15 WIB 47

Perry) dapat dimanfaat sebagai astringent, untuk mengobati demam dan menghentikan diare, diabetes, batuk dan sakit kepala. Selain itu, bubuk daun digunakan untuk lidah pecahpecah dan jus daun digunakan dalam mandi dan lotion. 2 Tahap pertama yaitu preparasi sampel, daun salam dan daun jambu air dikeringkan dengan cara diangin-anginkan. Daun salam dan daun jambu air menjadi kering dalam jangka waktu 7 hari. Pengeringan daun salam dan daun jambu air bertujuan untuk menghilangkan kadar air yang banyak terkandung dalam daun segar. Pengeringan merupakan proses pengurangan kadar air sampai batas terbaik, yaitu 8-10%, karena pada tingkat kadar air tersebut, sampel terhindar dari pencemaran yang disebabkan oleh jamur, bakteri dan insekstisida. 3 Pengeringan dilakukan pada suhu kamar agar senyawa-senyawa metabolit sekunder yang ada pada daun tidak rusak akibat suhu yang tinggi. Daun salam dan daun jambu air (Syzygium samarangense (BL.) Merr et. Perry) yang telah kering dihaluskan dengan cara diblender tanpa pelarut. Penghalusan daun menjadi serbuk bertujuan untuk memperluas permukaan 2 Tina Pater,dkk, Syzygium Samarangense: A Review On Morphology, Phytochemistry & Pharmacological Aspects, Asian Journal of Biochemical and Pharmaceutical Research (Issue 4, Vol. 1, 2011), hlm. 157-156 3 Gerlinda Ridwina, Perbandingan Metode Pengukuran Aktivitas Antioksidan dari Ekstrak Etanol dan Minyak Atsiri Lempuyang Gajah, Skripsi,(Bogor : Institut Pertanian Bogor, 2008), hlm. 5 48

sehingga difusi sampel dengan pelarut pada saat ekstraksi dapat berjalan dengan optimal. Sampel yang telah halus dibawa ke laboratorium kimia Fakultas Tarbiyah dan Keguruan. Sampel disimpan di dalam wadah kedap udara dan kedap cahaya untuk menjaga mutu sampel dan mencegah kerusakan. 2. Ekstraksi Sampel Daun salam (Syzygium polyantum (Wight) Walp) dan daun jambu air (Syzygium samarangense (BL.) Merr et. Perry) diekstraksi dengan metode maserasi. Metode ini dipilih karena ekstraksi cara dingin dapat mencegah terurainya metabolit yang tidak tahan pemanasan. Ekstraksi dilakukan secara bertingkat dengan pelarut n-heksana dan metanol. Pelarut yang pertama kali digunakan adalah n-heksana yang bersifat non polar dengan tujuan untuk menghilangkan lemak dan mengekstraksi senyawa-senyawa yang bersifat non polar seperti asam lemak, sterol, kumarin dan beberapa terpenoid. Metanol yang bersifat polar digunakan untuk mengekstrak senyawa polar seperti flavonoid, glokosida, tannin dan beberapa alkaloid. 4 Tahap pertama, sampel daun salam (Syzygium polyantum (Wight) Walp) sebanyak 75 gram dimaserasi 4 J.B.Harbone, Metode Fitokimia penuntun cara modern menganalisis tumbuhan, (Bandung : Penerbit ITB, 2006), hlm. 71 49

dengan n-heksana sebanyak 500 ml selama 24 jam dan diaduk beberapa kali. Hal ini dilakukan agar pelarut yang digunakan berdifusi ke dalam sel untuk melarutkan senyawa yang terkandung didalamnya dan larutan melewati dinding sel serta bercampur dengan cairan di sekitarnya sehingga terbentuk kesetimbangan. 5 Ekstraksi dilakukan sebanyak 2 kali dan filtrat yang diperleh ditampung dan diuapkan dengan penguap putar pada suhu 50 0 C hingga n-heksana menguap seluruhnya. Penggunaan vakum memungkinkan pelarut dapat menguap pada suhu rendah sehingga senyawa yang terkandung dalam ekstrak tidak rusak. Ekstrak n-heksana selanjutnya dikeringkan dalam oven dengan suhu 50 0 C. Residu dari maserasi n-heksana dikeringkan dan dimaserasi lagi menggunakan pelarut metanol sebanyak 500 ml selama 24 jam dan diaduk beberapa kali. Hal ini dilakukan agar pelarut yang digunakan berdifusi ke dalam sel untuk melarutkan senyawa yang terkandung didalamnya dan larutan melewati dinding sel serta bercampur dengan cairan di sekitarnya sehingga terbentuk kesetimbangan. 6 Ekstraksi dilakukan sebanyak 2 kali dan filtrat yang diperleh ditampung 5 Dewi Murni,Isolasi Uji Aktivitas Antioksidan dan Toksisitas Menggunakan Artema salina Leach dari Fraksi Aktif Ekstrak Metanol Daun Asa Tungga (Lithocarpus Celebicus (Miq) Rehder), Skripsi, (Jakarta: Universitas Indonesia, 2012), hlm.50 hlm.50 6 Dewi Murni,Isolasi Uji Aktivitas Antioksidan dan Toksisitas,.., 50

dan diuapkan dengan penguap putar pada suhu 50 0 C hingga metanol menguap seluruhnya. Penggunaan vakum memungkinkan pelarut dapat menguap pada suhu rendah sehingga senyawa yang terkandung dalam ekstrak tidak rusak. Ekstrak metanol selanjutnya dikeringkan dalam oven dengan suhu 50 0 C. Ekstraksi daun jambu air (Syzygium samarangense (BL.) Merr et. Perry) dilakukan dengan cara yang sama seperti pada daun salam. Hasil akhir diperoleh 4 ekstrak sampel, yaitu ekstrak n-heksana daun salam, ekstrak metanol daun salam, ekstrak n-heksana daun jambu air dan ekstrak metanol daun jambu air. Hasil kualitatif ekstraksi dapa dilihat pada Tabel 4.1. Tabel 4.1 Hasil ekstraksi secara kualitatif No Sampel Pelarut Warna Ekstrak 1 n-heksana Coklat kekuningan Daun Salam 2 Metanol Hijau Pekat 3 n-heksana Coklat Kekuningan Daun Jambu Air 4 Metanol Hijau Pekat 3. Uji Aktivitas Antioksidan Antioksidan adalah senyawa yang dapat menghambat reaksi radikal bebas dalam tubuh. Keberadaan senyawa antioksidan ini dalam suatu bahan dapat dideteksi dengan melakukan uji aktivitas antioksidan. Uji aktivitas antioksidan 51

pada ekstrak kasar daun salam dan daun jambu air dilakukan dengan menggunakan metode uji DPPH. Metode uji DPPH merupakan salah satu metode yang paling banyak digunakan untuk memperkirakan efisiensi kinerja dari substansi yang berperan sebagai antioksidan. Metode pengujian ini berdasarkan pada kemampuan substansi antioksidan tersebut dalam menetralisir radikal bebas. Radikal bebas yang digunakan adalah 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH). Radikal bebas DPPH merupakan radikal sintetik yang stabil pada suhu kamar dan larut dalam pelarut polar seperti metanol. Sifat stabil ini dikarenakan radikal bebas ini memiliki satu elektron yang didelokalisasi dari molekul utuhnya, sehingga molekul tersebut tidak reaktif sebagaimana radikal bebas lain. Delokalisasi ini akan memberikan sebuah warna ungu gelap dengan absorbansi maksimum pada 517 nm dalam larutan etanol ataupun metanol. 7 Metode uji aktivitas antioksidan dengan menggunakan radikal bebas DPPH dipilih karena metode ini sederhana, mudah, cepat, peka dan hanya memerlukan sedikit sampel, akan tetapi jumlah pelarut pengencer yang diperlukan dalam pengujian ini cukup banyak. Pelarut yang digunakan adalah 7 Philip Molyneux, The use of the stable free radical diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) for estimating antioxidant activity, Songklanakarin J. Sci. Technol, (Vol. 26 No. 2 Mar.-Apr. 2004), hlm. 212 52

metanol. metanol dipilih sebagai pelarut karena metanol dapat melarutkan kristal DPPH dan juga memiliki sifat yang dapat melarutkan komponen non polar di dalamnya. 8 Hal ini mengingat ketiga ekstrak yang diuji memiliki tingkat kepolaran yang berbeda-beda. Uji aktivitas antioksidan dilakukan secara kuantitatif dengan menggunakan spektrofotometer uv-vis. Larutan pembanding yang digunakan adalah Vitamin C. Hasil uji dilaporkan sebagai IC 50. IC 50 merupakan salah satu parameter yang biasa digunakan untuk menginterpretasikan hasil dari pengujian DPPH. Nilai IC 50 ini dapat didefinisikan sebagai konsentrasi substrat yang dapat menyebabkan berkurangnya 50% aktivitas DPPH. Semakin kecil nilai IC 50 berarti aktivitas antioksidannya semakin tinggi. 9 Langkah pertama yang dilakukan pada uji antioksidan adalah pembuatan larutan DPPH dengan konsentrasi 100 µg/ml, perhitungan dapat dilihat pada Lampiran.2. Larutan DPPH 100 µg/ml diambil sebanyak 1 ml dan ditambah 3 ml metanol p.a dan diinkubasi pada suhu 37 0 C selama 30 menit, kemudian dilakukan optimasi panjang gelombang DPPH. Pengukuran dilakukan pada panjang gelombang optimum karena kepekaannya maksimal sehingga hukum Lambert-Beer akan terpenuhi. Panjang gelombang optimum dari DPPH 8 Philip Molyneux, The use of the stable free radical, hlm. 215 9 Philip Molyneux, The use of the stable free radical, hlm. 214 53

berdasarkan penelusuran literarur berkisar antara 515-520 nm. Optimasi panjang gelombang dilakukan karena peralatan yang digunakan berbeda dengan literatur yang dapat menyebabkan perbedaan serapan maksimum. Perbedaan panjang gelombang diatas 320 nm tidak lebih dari ± 2 nm dari panjang gelombang yang ditentukan. 10 Hasil pegukuran absorbasi optimum DPPH diperoleh pada panjang gelombang 515 nm. B. Analisis Data Pengukuran absorbansi beberapa sampel dilakukan pada konsentrasi 25 ppm, 50 ppm, 75 ppm dan 100 ppm dengan pengulangan 2 kali. Data hasil pengukuran absorbansi masingmasing sampel dapat di lihat pada Lampiran.3. Suatu senyawa dapat dikatakan memiliki aktivitas antioksidan apabila senyawa tersebut mampu mendonorkan atom hidrogennya pada radikal DPPH yang ditandai dengan perubahan warna ungu menjadi kuning pucat. Reaksi yang terjadi antara DPPH dan senyawa antioksidan adalah seperti dalam Gambar 4.1. 10 Dewi Murni, Isolasi Uji Aktivitas Antioksidan dan Toksisitas,..,hlm.58 54

Gambar 4.1 Reaksi antara DPPH dengan antioksidan membentuk DPPH-H Penangkapan atom hidrogen mengakibatkan ikatan rangkap terkonjugasi pada DPPH berkurang sehingga terjadi penurunan intensitas warna dan penurunan absorbansi. Hal ini dapat terjadi apabila adanya penangkapan satu elektron oleh zat antioksidan yang menyebabkan tidak adanya kesempatan elektron tersebut untuk beresonansi. Resonansi senyawa DPPH dapat dilihat pada Gambar 4.2. Gambar 4.2 Resonansi pada struktur DPPH 55

Besarnya aktivitas antioksidan ditandai dengan nilai IC 50, yaitu konsentrasi larutan sampel yang dibutuhkan untuk menghambat 50% radikal bebas DPPH. Hasil aktivitas antioksidan dari ekstrak kasar beberapa sampel dibandingkan dengan aktivitas antioksidan Vitamin C. Vitamin C digunakan sebagai pembanding karena Vitamin C merupakan salah satu antioksidan yang umum digunakan. Data hasil pengukuran aktivitas antioksidan dari beberapa sampel dapat dilihat pada Tabel 4.2 berikut ini. N o Konsentrasi (ppm) Tabel 4.2. Persen inhibisi dan IC 50 dari ekstrak daun salam, daun jambu air dan Vitamin C Daun Salam Daun jambu Air Vitamin C N-heksana Metanol N-heksana Metanol %P 1 %P 2 %P 1 %P 2 %P 1 %P 2 %P 1 %P 2 %P 1 %P 2 1 25 1.03 0.51 3.60 4.37 1.80 1.28 9.70 5.45 56.67 54.84 2 50 20.82 18.17 20.82 21.08 5.65 4.62 34.84 31.81 86.67 85.45 3 75 43.70 43.19 61.70 63.75 8.74 9.76 66.67 76.96 - - 4 100 47.04 46.53 73.52 73.00 12.59 13.11 90.91 89.70 - - IC 50 3.86 3.90 2.90 2.88 14.56 13.04 2.48 2.47 0.78 0.84 Rata-rata IC 50 3.88 2.89 13.80 2.47 0.81 Keterangan : %P 1 = persentase inhibisi pengujian ke-1 %P 2 = persentase inhibisi pengujian ke-2 Tabel 4.2 menunjukkan bahwa rata-rata nilai IC 50 berturutturut dari yang terkecil yaitu, Vitamin C (0.81 µg/ml), ekstrak metanol daun jambu air (2.475 µg/ml), ekstrak metanol daun salam (2.89 µg/ml), ekstrak n-heksana daun salam (3.88 µg/ml) dan ekstrak n-heksana daun jambu air (13.8 µg/ml). Semakin kecil nilai IC 50 berarti aktivitas antioksidannya semakin tinggi. Suatu senyawa dikatakan sebagai antioksidan sangat kuat apabila nilai IC 50 kurang dari 50 µg/ml, kuat apabila 56

nilai IC 50 antara 50-100 µg/ml, sedang apabila nilai IC 50 berkisar antara 100-150 µg/ml, dan lemah apabila nilai IC 50 berkisar antara 150-200 µg/ml. 11 Sampel yang diuji memiliki nilai IC 50 kurang dari 50 µg/ml, sehingga dapat disimpulkan bahwa sampel tersebut memiliki potensi antioksidan yang sangat kuat. Antioksidan pada daun salam dan daun jambu jika dibandingkan dengan Vitamin C, Antioksidan pada Vitamin C lebih kuat, akan tetapi Vitamin C bersifat antioksidan pada konsentri kurang dari 50 ppm. Pada konsentrasi lebih dari 50 ppm, Vitamin C bersifat pro-oksidan. Radikal askorbat yang terbentuk setelah menetralkan radikal bebas, akan mengalami transfer elektron dan membentuk askorbat dianion. Selanjutnya setelah mengalami auto-oksidasi, askorbat dianion tersebut akan menjadi radikal askorbat dan radikal anion superoksida. 12 Reaksi kimianya sebagai berikut : Asc 2- + O 2 Asc - - + O 2 Reaksi tersebut menunjukkan bahwa vitamin C menghasilkan anion superoksida meskipun jumlahnya sangat rendah. Pada konsentrasi yang semakin tinggi maka anion 11 Azwin Apriandi, Aktivitas Antioksidan dan Komponen Bioaktif,,hlm.43 12 Dedy Winarto, Pemanfaatan Vitamin C dan E Sebagai Antioksidan Untuk Memperbaiki Kuantitas dan Kualitas Spermatozoa (16 Maret 2013),dalam (www.universitas Muhammadiyah Purworejo/Artikel), diakses pada tanggal 18 Agustus 2014 Pukul 10.16. 57

superoksida yang dihasilkan semakin meningkat sehingga bersifat pro oksidan. Nilai aktivitas antioksidan Sampel dan Vitamin C dapat dilihat pada Gambar 4.3. *Keterangan: Semakin kecil nilai IC 50 maka semakin besar aktivitas antioksidannya. Gambar 4.1. Nilai IC 50 beberapa sampel Nilai IC 50 tertinggi pada sampel adalah pada ekstrak metanol daun jambu air. Nilai aktivitas antioksidan pada pelarut metanol lebih tinggi dibanding dengan pelarut n-heksana karena metabolit sekunder cenderung larut dalam pelarut polar seperti senyawa flavonoid, fenolik. Metabolit sekunder yang larut dalam senyawa non polar adalah senyawa terpen. Perbedaan hasil dari nilai IC 50 daun salam dan daun jambu dianalisis secara statistik menggunakan uji ANAVA dua jalur dengan SPSS. Hasil uji ANAVA menunjukkan bahwa nilai IC 50 daun salam dan daun jambu air berbeeda secara signifikan (p 58

<0.05). Data hasil uji ANAVA dapat dilihat pada Tabel 4.3 berikut ini. Tabel 4.3. Hasil Uji ANAVA Source Type III Sum of Squares df Mean Square F Sig. F tabel Koreksi Model 174.408 a 3 58.136 201.119.000 6.59 Pelarut 75.830 1 75.830 262.329.000 7.71 Sampel 45.173 1 45.173 156.272.000 7.71 Pelarut * Sampel 53.406 1 53.406 184.756.000 7.71 Error 1.156 4.289 Total 441.100 8 Koreksi Total 175.564 7 a. R Squared =.993 (Adjusted R Squared =.988) Hasil koreksi model menunjukkan bahwa signifikasi < 0.05 dan F hit > F tabel, maka dapat disimpulkan faktor sampel dan faktor pelarut mempengaruhi nilai IC 50 dan model valid dengan korelasi yang kuat, terbukti dari nilai R 2 yang mendekati 1. Analisa pada pelarut menunjukkan bahwa signifikasi < 0.05 dan F hit > F tabel, maka dapat disimpulkan bahwa terdapat perbedaan secara signifikan antara pelarut n-heksana dan metanol. Nilai IC 50 pelarut n-heksana lebih tinggi dibanding pada pelarut metanol. Hal ini menunjukkan bahwa aktivitas antioksidan terbesar terdapat pada pelarut metanol, karena komponen bioaktif yang bersifat antioksidan yang terdapat pada daun salam dan daun jambu air cendrung bersifat polar. Pelarut metanol memiliki berat molekul yang rendah sehingga memudahkan pembentukan 59

ikatan hidrogen dan air pada jaringan sampel, sehingga banyak digunakan dalam proses isolasi senyawa organik bahan alam karena dapat melarutkan seluruh golongan metabolit sekunder. Analisa pada sampel menunjukkan bahwa signifikasi < 0.05 dan F hit > F tabel, maka dapat disimpulkan bahwa terdapat perbedaan secara signifikan antara aktivitas antioksidan daun salam dan daun jambu air. Secara keseluruhan aktivitas antioksidan pada daun salam lebih baik dibanding pada daun jambu air. Analisa interaksi antara sampel dengan pelarut menunjukkan bahwa signifikasi < 0.05 dan F hit > F tabel, maka dapat disimpulkan bahwa terdapat interaksi yang signifikan antara sampel dan pelarut yang digunakan. Jadi jenis pelarut yang digunakan mempunyai pengaruh yang berbeda pada aktivitas antioksidan daun salam dan daun jambu air. Data eror dari Tabel 4.3 menunjukkan nilai kemungkinan kesalahan, semakin kecil nilai mean kuadrat maka data semakin baik. Data ini, memiliki nilai eror sebesar 0.289. Aktivitas antioksidan yang paling tinggi, apabila dilihat satu persatu adalah pada ekstrak metanol daun jambu air yaitu sebesar 2.47 µg/ml. Nilai IC 50 dari paling rendah ke paling tinggi secara berturut-turut adalah Vitamin C, ekstrak metanol daun jambu air, ekstrak metanol daun salam, ekstrak n-heksana daun salam dan ekstrak n-heksana daun jambu air sebesar 0.81 µg/ml ; 2.47µg/mL; 2.89 µg/ml ; 3.87 µg/ml ; 13.75 µg/ml. 60

C. Keterbatasan Penelitian Penelitian yang dilakukan, tentunya memiliki banyak keterbatasan. Keterbatasan penelitian ini diantaranya: 1. Keterbatasan Objek Penelitian Penelitian ini hanya terbatas pada aktivitas antioksidan pada ekstrak kasar daun salam dan daun jambu air. Perlu dilakukan pengujian fitokimia dan pemisahan komponen bioaktifnya sehingga menjadi bahan senyawa murni. 2. Keterbatasan Tempat dan Waktu Penelitian Tempat dan waktu juga mempengaruhi pelaksanaan penelitian. Tempat yang digunakan yaitu Laboratorium Kimia IAIN Walisongo Semarang dan Laboratorium Kimia Universitas Semarang yang masih terbatas dalam alat dan bahan yang digunakan. Keterbatasan peralatan laboratorium memungkinkan hasil berbeda bila dilakukan pengujian kembali di tempat lain. 3. Keterbatasan Biaya Biaya merupakan salah satu faktor penunjang penelitian yang dilakukan oleh peneliti. Penelitian ini memerlukan biaya yang tidak sedikit sehingga apabila biaya minim bisa menjadi penghambat untuk proses penelitian. 61