Molekul, Vol. 6. No. 2. Nopember, 2011: AMOBILISASI PROTEASE DARI Bacillus sp. BT 1 MENGGUNAKAN POLIAKRILAMIDA. Zusfahair* dan Amin Fatoni

dokumen-dokumen yang mirip
I. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan April - Juli 2012 di Laboratorium. Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Lampung.

III. METODE. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Januari - April 2015 di Laboratorium

III. METODE PENELITIAN. Penelitian dilakukan di Laboratorium Biokimia dan Laboratorium Instrumentasi

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan Juli 2012 sampai bulan Desember 2012 di

BAB III METODE PENELITIAN. adalah Bacillus subtilis dan Bacillus cereus yang diperoleh di Laboratorium

METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan April 2012 sampai dengan bulan Juni 2012 di

III. METODE. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Januari-April 2015 di Laboratorium

BAB III METODE PENELITIAN. Biologi dan Laboratorium Biokimia, Departemen Kimia Fakultas Sains dan

LAMPIRAN. Lampiran 1. Foto Lokasi Pengambilan Sampel Air Panas Pacet Mojokerto

BAB III BAHAN, ALAT DAN METODA

III. BAHAN DAN METODE

BAB III METODE PENELITIAN. Pendidikan Biologi FPMIPA UPI dan protease Bacillus pumilus yang diperoleh

BAB III METODE PENELITIAN. A. Waktu dan Tempat Penelitian. Penelitian dilaksanakan pada bulan Maret-November 2012 di

METODE PENELITIAN. Penelitian ini telah dilakukan pada bulan Januari-Mei 2015 di Laboratorium

Lampiran 1 Prosedur uji aktivitas protease (Walter 1984, modifikasi)

4 Hasil dan Pembahasan

METODELOGI PENELITIAN. Penelitian ini akan dilakukan pada bulan Mei-November 2013 di Laboraturium

III. METODELOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Mei-November 2013 di Laboratorium

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Mikrobiologi Jurusan Biologi

PENGUJIAN STABILITAS ENZIM BROMELIN YANG DIISOLASI DARI BONGGOL NANAS SERTA IMOBILISASI MENGGUNAKAN KAPPA KARAGENAN

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB III METODE PENELITIAN. lengkap (RAL) pola faktorial yang terdiri dari 2 faktor. Faktor pertama adalah variasi

III. METODE PENELITIAN

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN. Enzim α-amilase dari Bacillus Subtilis ITBCCB148 diperoleh dengan

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Percobaan yang dilakukan pada penelitian ini yaitu penggunaan amonium

BAB III METODE PENELITIAN

III. METODE KERJA. Penelitian ini telah dilakukan di Laboratorium Mikrobiologi Fakultas

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan Juni-November Penelitian ini

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini akan dilakukan pada bulan Juli sampai September 2012,

BAB III METODE PENELITIAN. adalah variasi jenis kapang yaitu Penicillium sp. dan Trichoderma sp. dan

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN. 1. Hasil pengukuran Nilai OD pada Media NB. Tabel 1. Pengukuran Nilai OD pada Media NB. Waktu OD (Optical Density)

BAB III METODE PENELITIAN. variasi suhu yang terdiri dari tiga taraf yaitu 40 C, 50 C, dan 60 C. Faktor kedua

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Bahan Pertumbuhan dan Peremajaan Isolat Pengamatan Morfologi Isolat B. thuringiensis

BAB III METODE PENELITIAN. Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini, antara lain: waterbath,

III. METODE. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Februari - Mei 2015 di Laboratorium

III. METODE PENELITIAN. Penelitian dilaksanakan pada Desember 2014 Mei 2015 di. Laboratorium Mikrobiologi FMIPA Universitas Lampung.

BAB III METODE PENELITIAN. Jurusan Biologi Fakultas Sains dan Teknologi Universitas Islam Negeri Maulana

III. METODE PENELITIAN. Waktu penelitian dilakukan pada bulan Februari Oktober. penelitian dilakukan di Laboratorium Biokimia Universitas Lampung.

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan dari bulan Juli sampai bulan September 2010 di

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan dari bulan Juli 2014 sampai dengan bulan September

3 Metodologi Percobaan

KONVERSI PENISILIN MENJADI 6-APA OLEH ENZIM PENISILIN ASILASE YANG DIAMOBILKAN DENGAN K-KARAGENAN DAN KITIN

4 HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB 1 PENDAHULUAN. 1.1 Latar Belakang

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitianini dilaksanakandaribulanagustus - Desember 2015 di

III. METODE PERCOBAAN. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Februari sampai April 2014 di

Lampiran 1 Metode pengujian aktivitas protease (Walter 1984)

PEMANFAATAN KULIT BATANG UBI KAYU SEBAGAI SUMBER ENZIM PEROKSIDASE UNTUK PENURUNAN KADAR FENOL

LACTOBACILLUS BULGARICUS SEBAGAI PROBIOTIK GUNA PENINGKATAN KUALITAS AMPAS TAHU UNTUK PAKAN CACING TANAH

BAB III BAHAN DAN CARA KERJA. Penelitian dilakukan di Laboratorium Teknologi Bioindustri, Pusat

PENGARUH PENAMBAHAN ION LOGAM Ca 2+ TERHADAP AKTIVITAS ENZIM PAPAIN. THE ADDITION EFFECT OF THE METAL IONS Ca 2+ ON THE PAPAIN ACTIVITIES

Sampel air panas. Pengenceran 10-1

BAB III METODE PENELITIAN. yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan 4 perlakuan dan

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini telah dilaksanakan pada bulan Maret Agustus 2015 di

3 Metode Penelitian Alat

II. MATERI DAN METODE PENELITIAN. 1. Materi Penelitian, Lokasi dan Waktu Penelitian

Metode Pengukuran Spektrofotometri (Bergmeyer et al. 1974) Pembuatan Media Heterotrof Media Heterotrof Padat. Pengaruh ph, Suhu, Konsentrasi dan

BAB III METODE PENELITIAN. dengan mengadakan manipulasi terhadap objek penelitian serta adanya kontrol

BAB IV. HASIL PENELITIAN

BAB III METODE PENELITIAN. mengujikan kemampuan Bacillus mycoides dalam memfermentasi onggok untuk

4 Hasil dan Pembahasan

ANALISIS PROTEIN. Free Powerpoint Templates. Analisis Zat Gizi Teti Estiasih Page 1

II. MATERI DAN METODE PENELITIAN. 1. Materi Penelitian, Lokasi dan Waktu Penelitian

KARAKTERISASI AKTIVITAS ENZIM BROMELIN DARI KULIT NANAS (Ananas comosus (L) Merr) YANG DIAMOBILISASI DENGAN SILIKA GEL DAN CMC

I. PENDAHULUAN. Enzim merupakan biokatalis yang banyak digunakan dalam industri, karena enzim

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan Agustus-Desember 2015 di Laboratorium

BAB V. PEMBAHASAN. 5.1 Amobilisasi Sel Lactobacillus acidophilus FNCC116. Amobilisasi sel..., Ofa Suzanti Betha, FMIPA UI, 2009

METODE PENELITIAN. Penelitian ini di laksanakan di Laboratorium Mikrobiologi Jurusan Biologi

PENGARUH KONSENTRASI SUMBER KARBON DAN NITROGEN TERHADAP PRODUKSI PROTEASE ALKALI DARI Bacillus sp. M TERMOFILIK

3. METODOLOGI PENELITIAN

MATERI DAN METODE PENELITIAN

BAB III METODE PENELITIAN. terdiri atas 5 perlakuan dengan 3 ulangan yang terdiri dari:

PRODUKSI ENZIM AMILASE

MATERI DAN METODE Lokasi dan Waktu Materi Prosedur Karakterisasi Isolat L. plantarum dan Bakteri Indikator

OPTIMALISASI PRODUKSI ENZIM SELULASE BAKTERI SELULOLITIK DENGAN MEMANFAATKAN LIMBAH AMPAS TEBU SEBAGAI SUBSTRAT

AMOBILISASI ENZIM PENISILIN ASILASE DARI E. coli B1O4 DENGAN POLIAKRILAMIDA

bio.unsoed.ac.id III. METODE PENELITIAN A. Materi, lokasi, dan waktu penelitian 1. Materi penelitian 1.1. Alat

Y ij = µ + B i + ε ij

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan dari bulan Maret sampai bulan Agustus 2013 di

III. METODOLOGI PENELITIAN

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini sudah dilaksanakan dari bulan Februari sampai bulan Juli 2013 di

PENGARUH AKTIVATOR SISTEIN DAN NATRIUM KLORIDA TERHADAP AKTIVITAS PAPAIN

METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan dari bulan Oktober sampai Februari 2014, dengan

METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Januari sampai Juni 2014 bertempat di

Analisis kadar protein

III METODE PENELITIAN

Air Panas. Isolat Murni Bakteri. Isolat Bakteri Selulolitik. Isolat Terpilih Bakteri Selulolitik. Kuantitatif

THE ADDITION EFFECT OF THE METAL ION K + ON THE PAPAIN ENZYME ACTIVITIES

LAMPIRAN Lampiran 1: Komposisi dan Penyiapan Media Skim Milk Agar, Komposisi Media Feather Meal Agar, Komposisi Media Garam Cair.

BAB I PENDAHULUAN. lingkungan yang semakin tinggi serta adanya tekanan dari para ahli dan pecinta

III. BAHAN DAN METODE

3. METODOLOGI 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian 3.2. Alat dan Bahan 3.3 Metode Penelitian

BAB I PENDAHULUAN. Beberapa populasi mikroorganisme yang terdapat di dalam tanah memiliki

BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN. selulosa dan lignin yang terdapat pada dinding sel tumbuhan. Oleh karena

BAB III METODE PENELITIAN. menggunakan campuran bakteri (Pseudomonas aeruginosa dan Pseudomonas

DAFTAR LAMPIRAN. Lampiran 1. Alur Kerja Subkultur Bakteri Penghasil Biosurfaktan dari Laut dalam Mendegradasi Glifosat

ISOLASI DAN PENGUJIAN AKTIVITAS ENZIM α AMILASE DARI Aspergillus niger DENGAN MENGGUNAKAN MEDIA CAMPURAN ONGGOK DAN DEDAK

UJI KUALITATIF ETANOL YANG DIPRODUKSI SECARA ENZAMATIS MENGGUNAKAN Z. MOBILIS PERMEABEL

3 METODOLOGI 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian 3.2 Bahan dan Alat Penelitian 3.3 Metode Penelitian

Rizki Wulandari, Silvera devi, Andi Dahliaty

Transkripsi:

AMOBILISASI PROTEASE DARI Bacillus sp. BT 1 MENGGUNAKAN POLIAKRILAMIDA Zusfahair* dan Amin Fatoni Program Studi Kimia Jurusan MIPA Fakultas Sains dan Teknik Universitas Jenderal Soedirman Purwokerto Jl. Soeparno 62, Karangwangkal, Purwokerto jawa Tengah 53123 e-mail: zusfahair@gmail.com ABSTRAK Penggunaan protease pada umumnya, dalam bentuk enzim bebas yang hanya sekali pakai, sehingga biaya produksi yang melibatkan enzim ini menjadi mahal. Amobilisasi enzim dapat mengatasi masalah ini, yang memungkinkan penggunaan enzim berulang kali. Dalam penelitian ini, protease dari Bacillus sp. BT 1, yang diperoleh dari sumber air panas, diamobilisasi dengan jebakan menggunakan poliakrilamida. Ekstrak kasar dalam bentuk enzim protease bebas dan enzim amobil dikarakterisasi termasuk suhu optimum, ph optimum, waktu inkubasi dan stabilitas enzim amobil pada penggunaan berulang. Aktivitas protease diukur dengan menggunakan metode Kunitz yang modifikasi. Hasil penelitian menunjukkan waktu produksi optimum protease adalah 36 jam yang berada pada akhir fase eksponensial pertumbuhan bakteri. Amobilisasi ekstrak kasar protease Bacillus sp BT 1 dapat menjebak 47,18% dari protease. Suhu optimum protease bebas 60 o C dan meningkat menjadi 70 o C pada penggunaan protease amobil. Protease bebas dan protease amobil memiliki ph optimum yang sama yaitu 11. Protease amobil tidak kehilangan aktivitas secara signifikan sampai empat kali penggunaan. Kata kunci: imobilisasi, protease, poliakrilamida PROTEASE IMMOBILIZATION FROM Bacillus sp. BT 1 USING POLYACRYLAMIDE ABSTRACT The use of proteases in general, in the free enzyme form that only disposable, so the cost of production that involve this enzyme forms to be expensive. Enzyme immobilization can overcome this problem, which allows the use of the enzyme repeatedly. in this study, protease from Bacillus sp. BT 1, which is obtained from a hot spring, was immobilized by entrapment using polyacrylamide. crude extract in the form of protease-free enzyme and immobilized enzyme was characterized include the optimum temperature, optimum ph, incubation time and stability of the immobilized enzyme with repeated usage. Protease activity was measured using a modified Kunitz method. The results showed optimum protease production time was 36 hours which was at the end of exponential phase bacterial growth. Immobilization of crude extract protease from Bacillus sp. BT 1 can trap 47.18% of the protease. The optimum temperature of free protease was 60 o C and increased to 70 o C on the use of immobilized proteases. Protease free and 84

Amobilisasi protease dari Bacillus sp. BT 1... (Zusfahair dan Amin Fatoni) immobilized proteases have the same optimum ph of 11. Immobilized protease did not lose its activity significantly until four times usage. Keywords: Immobilized, Protease, Polyacrylamide PENDAHULUAN Salah satu alasan pemanfaatan enzim di berbagai proses industri adalah karena sifat enzim yang memiliki efisiensi tinggi, spesifik, dan kerja yang selektif serta reaksi tanpa menghasilkan produk samping. Enzim yang banyak digunakan salah satunya adalah protease. Penggunaan enzim protease dalam berbagai bidang industri antara lain dalam pengolahan pangan, penyamakan kulit, deterjen, dan pengolahan limbah cair (Moon dan Parulekur, 1993). Produksi enzim memerlukan biaya yang cukup tinggi, padahal penggunaan enzim hanya terbatas sekali pakai saja, sehingga setiap mulai pengolahan atau analisis lagi harus menggunakan enzim baru karena enzim yang telah dipakai di dalam larutan sulit untuk dipisahkan dan dipergunakan lagi. Menurut Soehartono (1989) dan Winarno (1995), selama enzim belum mengalami kerusakan struktur, enzim masih dapat dipakai secara berulang-ulang. Kekurangan-kekurangan tersebut dapat diatasi dengan teknologi enzim yaitu membuat enzim amobil (Immobilized enzyme). Amobilisasi enzim dapat dilakukan dengan beberapa metode, salah satu metode yang sering digunakan adalah metode penjebakan enzim dalam kisi semipermeabel menggunakan poliakrilamida. Enzim amobil dengan bahan pendukung poliakrilamida relatif lebih stabil dibandingkan bahan pendukung lain seperti Ca-alginat dan Kapa-karagenan. Poliakrilamida sebagai media pendukung akan menjebak enzim dalam keadaan bebas dan tidak terikat pada bahan pendukung sehingga secara relatif fungsi katalitik dan struktur alami molekul enzim tidak mengalami perubahan sehingga enzim tetap dapat berfungsi. Berdasarkan hal tersebut, maka tujuan penelitian ini adalah melakukan amobilisasi terhadap protease dari Bacillus sp. BT 1 menggunakan poliakrilamida dengan harapan dapat meningkatkan efisiensi pemakaiannya terutama di bidang industri. METODE PENELITIAN Alat dan Bahan Alat-alat yang digunakan adalah alat-alat gelas yang umum digunakan di Laboratorium Biokimia. Bahan yang digunakan: isolat bakteri Bacillus sp. BT 1 koleksi Laboratorium Biokimia yang diisolasi dari sumber air panas Pancuran Pitu Baturraden, medium NB (Nutrient Broth), medium NA (Nutrient Agar), medium SMA (Skim Milk Agar), Trichloro Acetic Acid (TCA), substrat kasein, pereaksi dan larutan standar Lowry, standar tirosin, bis-akrilamid, TEMED (tetrametiletilendiamin), ammonium peroksodisulfat, alkohol 70%, dan akuades. Medium inokulum dan medium produksi (Glukosa monohidrat 5,5 g; KH 2 PO 4.3H 2 O 1,3 g; pepton 5 g; MgSO 4.7H 2 O 0,2 g; dan akuades 1000 ml) Prosedur Kerja Penelitian ini dilakukan dengan langkahlangkah sebagai berikut: 1. Pembuatan inokulum Inokulum dibuat dengan cara memindahkan bakteri Bacillus sp. BT 1 dari medium pertumbuhan menggunakan 85

jarum ose secara aseptis ke dalam 20 ml medium untuk inokulum dan diinkubasi dengan shaker incubator selama 1 x 24 jam pada suhu 40 o C dan ph 8. 2. Penentuan waktu produksi optimum ekstrak kasar protease dan kurva pertumbuhan bakteri Inokulum sebanyak 10% dimasukkan ke dalam 1000 ml medium produksi dan diinkubasi suhu 40 o C. Pengukuran waktu produksi optimum enzim protease dan kurva pertumbuhan isolat bakteri Bacillus sp. BT 1 dilakukan pada jam ke 6, 12, 18, 24, 30, 36, 42, dan 48. Waktu produksi optimum enzim dapat diketahui dengan mengukur aktivitas ekstrak kasar enzim protease menggunakan metode Kunitz yang dimodifikasi. Kurva pertumbuhan bakteri Bacillus sp. BT 1 dibuat dengan mengukur tingkat kekeruhan (optical density) medium produksi menggunakan spektrofotometer UV-Visible pada panjang gelombang 600 nm. Waktu produksi optimum yang diperoleh merupakan parameter untuk memproduksi enzim protease. 3. Produksi protease Produksi protease dilakukan dengan cara memindahkan 10 ml biakan bakteri Bacillus sp. BT 1 dari medium inokulum ke dalam 100 ml medium produksi. Medium produksi selanjutnya diinkubasi dengan shaker incubator selama waktu produksi optimum pada suhu suhu 40 o C. 4. Ekstraksi protease Bakteri hasil biakan pada medium produksi dipanen dengan cara sentrifugasi pada kecepatan 10.000 rpm selama 10 menit pada suhu 4 o C, sehingga diperoleh endapan dan supernatan. Supernatan yang diperoleh adalah ekstrak kasar protease ekstraseluler. Sebagian ekstrak kasar protease selanjutnya diamobilisasi menggunakan poliakrilamida untuk selanjutnya dilakukan karakterisasi meliputi suhu dan ph optimum. 5. Amobilisasi enzim (Alexander dan Griffiths, 1993) Enzim yang tidak diamobilisasi disebut enzim bebas. Amobilisasi enzim dilakukan menggunakan metode penjebakan dengan bahan pendukung poliakrilamida. Ekstrak kasar protease sebanyak 1 ml dimasukkan ke dalam cawan petri kecil, ditambahkan 4 ml bisakrilamid, 2 ml TEMED (0,23 μl/100 ml), dan 0,05 gr ammonium peroksodisulfat. Dilakukan pengadukan selama penambahan campuran dengan cara menggoyangkan cawan secara perlahan. Reaksi polimerisasi dibiarkan terjadi pada suhu dingin dan tertutup, tidak terkena udara maupun cahaya (sekitar 10 menit). Gel poliakrilamida yang terbentuk dipotong kecil-kecil (3x2x2 mm), kemudian dicuci dengan buffer yang sama dua kali untuk menghilangkan enzim yang tidak terjerap. Enzim amobil dan buffer pencucinya dilakukan uji aktivitas dan kadar protein untuk mengetahui efektivitas amobilisasi. Enzim yang telah diamobilisasi disebut enzim amobil. Enzim amobil juga dilakukan karakterisasi untuk mengetahui suhu dan ph optimum. 6. Uji Aktivitas protease Aktivitas proteolitik protease diukur menggunakan metode Kunitz yang dimodifikasi. Sebanyak 2 ml substrat kasein (0,1 b/v) dalam buffer yang disesuaikan diprainkubasi pada suhu 40 o C selama 5 menit. Reaksi enzim dimulai dengan menambahkan 0,2 ml larutan enzim untuk enzim bebas dan 0,5 gr untuk enzim amobil ke dalam substrat dan diinkubasi pada suhu 40 o C selama 30 menit. Reaksi dihentikan dengan menambahkan 3 ml larutan TCA dalam keadaan dingin. Campuran uji 86

Amobilisasi protease dari Bacillus sp. BT 1... (Zusfahair dan Amin Fatoni) dibiarkan mengendap selama 30 menit, kemudian disentrifugasi pada kecepatan 6000 rpm, 4 o C selama 15 menit. Peptida terlarut dalam supernatan hasil hidrólisis diukur absorbansinya pada panjang gelombang 280 nm. Larutan kontrol dibuat dengan cara yang sama, tetapi larutan TCA ditambahkan terlebih dahulu, dilanjutkan dengan penambahan larutan enzim. Fuad, dkk. (2004) menyatakan bahwa satu unit aktivitas protease (U) didefinisikan sebagai jumlah enzim yang diperlukan untuk menghasilkan g tirosin/menit ml enzim larutan enzim dari substrat kasein pada kondisi pengujian tersebut. 7. Penentuan kadar protein Penetapan kadar protein enzim dilakukan dengan metode Lowry. Larutan standar protein (BSA) dengan konsentrasi 100-600 g/ml dalam buffer Tris-HCl ph 8 disiapkan dan masing-masing sebanyak 0,5 ml dimasukkan ke dalam tabung reaksi yang berbeda dan larutan enzim, kemudian ditambah dengan pereaksi C. Setiap tabung reaksi dibiarkan pada suhu kamar selama 10 menit, kemudian ditambahkan 0,5 ml pereaksi E dan dikocok. Larutan dibiarkan selama 30 menit. Warna yang terbentuk diukur serapannya dengan spektrofotometer UV-Vis pada panjang gelombang 750 nm. 8. Karakterisasi ekstrak kasar enzim protease bebas dan enzim amobil Penetapan suhu optimum enzim Prosedur kerja penetapan suhu optimum enzim sama seperti pada uji aktivitas, tetapi dengan variasi suhu mulai 40-75 o C untuk enzim bebas dan 50-80 o C untuk enzim amobil pada ph 8. Penetapan ph optimum enzim Prosedur kerja penetapan ph optimum enzim sama seperti pada penetapan suhu optimum, tetapi dengan variasi ph. Variasi ph yang dilakukan adalah 8-12 masing-masing untuk enzim bebas dan enzim amobil. Buffer yang digunakan untuk ph 8 dan 9 adalah buffer Tris-HCl, untuk ph 10 dan 11 digunakan buffer NaHCO 3 dalam NaOH, sedangkan untuk ph 12 digunakan buffer Na 2 HPO 4.2H 2 O. Penetapan waktu inkubasi enzim amobil Prosedur kerja penetapan waktu inkubasi sama seperti uji aktivitas, uji dilakukan pada suhu dan ph optimum dengan variasi waktu inkubasi yaitu 30, 60, 90, dan 120 menit. Penentuan stabilitas enzim amobil Enzim amobil diselidiki tingkat kestabilan aktivitasnya terhadap pemakaian berulang. Enzim amobil dilakukan uji aktivitas pada suhu optimum, ph optimum, dan waktu inkubasi dari enzim amobil. Pemakaian berulang dilakukan sampai terlihat penurunan aktivitas. HASIL DAN PEMBAHASAN Penentuan waktu produksi optimum ekstrak kasar protease dan kurva pertumbuhan bakteri Waktu produksi optimum diperoleh ketika enzim protease yang dihasilkan mencapai aktivitas maksimum. Waktu produksi optimum enzim dapat diketahui dengan mengukur aktivitas ekstrak kasar enzim protease menggunakan metode Kunitz yang dimodifikasi. Metode Kunitz didasarkan atas kemampuan enzim untuk menguraikan substrat kasein menjadi peptida asam amino dalam hal ini tirosin dan mengukur serapannya pada panjang gelombang 280 nm (Fuad dkk., 2004). Kurva penentuan waktu produksi optimum dan pertumbuhan bakteri 87

Bacillus sp. BT 1 dapat dilihat pada Gambar 1. Gambar 1 menunjukkan aktivitas enzim protease yang diproduksi oleh Bacillus sp. BT 1 terus meningkat setelah diinkubasi selama 30 jam dan mencapai optimum pada waktu inkubasi 36 jam dengan nilai aktivitas sebesar 0,3886 U/mL dan terjadi pada fase eksponensial (log). Berdasarkan penelitian yang dilakukan Kusumadi (1998) mengenai mikroorganisme penghasil enzim protease pada suhu tinggi yang diisolasi dari Gunung Tangkuban Perahu dan daerah Dieng diperoleh waktu inkubasi optimum adalah 36 jam. Amobilisasi enzim protease Enzim yang telah dijebak dengan poliakrilamida dipotong kecil-kecil dan dicuci dengan buffer, enzim amobil dan buffer pencucinya dilakukan uji aktivitas dan kadar protein untuk mengetahui efektivitas amobilisasi (Tabel 1). Enzim yang terjebak dalam poliakrilamida adalah sebesar 47,18%, sedangkan aktivitas ekstrak kasar (EK) amobil adalah sebesar 0,722 U/mL. Karakterisasi Enzim Protease Bebas dan Amobil Penentuan suhu optimum Penentuan suhu optimum EK bebas dan amobil dari Bacillus sp. BT 1 dilakukan dengan menginkubasi enzim pada berbagai variasi suhu. Aktivitas EK bebas dan amobil dapat dilihat pada Gambar 2. Gambar 1. Aktivitas protease dan kekeruhan (OD) dari Bacillus sp. BT 1 Tabel 1. Data efektivitas amobilisasi Fraksi Kadar Protein % Kadar Aktivitas (µg/ml) Protein (U/mL) EK Bebas 836,038 100 1,862 Buffer EK Amobil 441,604 52,82 0,999 EK Amobil 394,434 47,18 0,722 88

Amobilisasi protease dari Bacillus sp. BT 1... (Zusfahair dan Amin Fatoni) Gambar 2. Pengaruh variasi suhu terhadap aktivitas EK bebas dan amobil dari Bacillus sp. BT 1 Gambar 3. Pengaruh variasi ph terhadap aktivitas enzim protease bebas dan amobil dari Bacillus sp. BT 1 Berdasarkan Gambar 2 tampak bahwa mula-mula aktivitas enzim masih rendah dan terus meningkat seiring pertambahan suhu hingga mencapai suhu optimum. Suhu optimum EK bebas dari Bacillus sp. BT 1 adalah 60 o C dan suhu optimum EK amobilnya adalah 70 o C. Menurut Sadikin (2002), suhu yang sangat rendah menyebabkan kerja enzim terhenti secara reversibel, karena tidak terjadi benturan antara Enzim (E) dan Substrat (S) sehingga tidak terbentuk kompleks Enzim-Substrat (ES) dan menyebabkan tidak terbentuknya Produk (P). Suhu apabila dinaikkan perlahan maka benturan antara E dan S untuk membentuk kompleks ES semakin besar sehingga P yang dihasilkan semakin banyak hingga suhu optimum tercapai. Peningkatan suhu diatas suhu optimum 89

menyebabkan perubahan konformasi struktur molekul protein sehingga enzim kehilangan sifat alamiahnya atau terdenaturasi, akibatnya aktivitas enzim mengalami penurunan. Suhu optimum pada enzim amobil lebih besar dibandingkan enzim bebas, hal ini dikarenakan adanya tambahan energi yang dibutuhkan agar substrat dapat menembus halangan ruang yang disebabkan bahan penyangga. Menurut Soehartono (1989), proses amobilisasi meningkatkan daya tahan enzim terhadap suhu, karena pemakaian bahan penyangga dalam amobilisasi enzim akan melindungi enzim terhadap pengaruh denaturasi panas. Penentuan ph optimum Penentuan ph optimum dilakukan dengan mengukur aktivitas EK bebas dan amobil pada berbagai variasi ph substrat kasein dan dilakukan pada suhu optimum. Pengaruh variasi ph terhadap aktivitas EK bebas dan amobil dari Bacillus sp. BT 1 dapat dilihat pada Gambar 3. Berdasarkan Gambar 3 tampak bahwa EK bebas dan EK amobil dari Bacillus sp. BT 1 mempunyai ph optimum 11. Enzim berada pada struktur tiga dimensi yang tepat saat kondisi ph optimum, sehingga enzim dapat mengikat dan mengolah substrat dengan kecepatan tertinggi. Struktur tiga dimensi enzim mulai berubah pada kondisi di luar ph optimum, sehingga substrat tidak lagi berada pada posisi yang tepat pada bagian molekul enzim. Hal ini menyebabkan proses katalisis tidak berjalan optimum, sehingga aktivitas enzim berkurang (Sadikin, 2002). Aktivitas suatu enzim sangat dipengaruhi oleh konsentrasi ion hidrogen (keasaman dan kebasaan). Hal ini disebabkan residu asam amino yang terdapat pada pusat aktif enzim harus berada dalam keadaan ionisasi yang tepat agar menjadi aktif. Penentuan waktu inkubasi enzim amobil Penentuan waktu inkubasi bertujuan untuk mengetahui waktu inkubasi pada menit berapa enzim dapat bekerja maksimum menghasilkan produk tinggi. Kurva penentuan waktu inkubasi EK amobil dapat dilihat pada Gambar 4. Gambar 4 menunjukkan aktivitas EK amobil optimum pada waktu inkubasi 30 menit. aktivitas EK amobil semakin menurun sampai waktu inkubasi 120 menit hingga tersisa 7%. Waktu inkubasi yang terlalu lama membuat aktivitas enzim semakin menurun, hal ini dikarenakan enzim mengalami perubahan konformasi struktur molekul atau terdenaturasi, sehingga tidak terbentuk kompleks Enzim-Substrat dan menyebabkan tidak terbentuknya produk akibatnya aktivitas enzim mengalami penurunan. 90

Amobilisasi protease dari Bacillus sp. BT 1... (Zusfahair dan Amin Fatoni) Gambar 4. Penentuan waktu inkubasi EK amobil dari Bacillus sp. BT 1 Gambar 5. Stabilitas EK amobil terhadap pemakaian berulang dari Bacillus sp. BT 1 Uji pemakaian berulang enzim amobil. Uji pemakaian berulang EK amobil bertujuan untuk mengetahui stabilitas EK amobil terhadap pemakaian berulang. EK amobil diuji aktivitasnya pada suhu optimum, ph optimum dan waktu inkubasi. Penentuan stabilitas enzim terhadap uji pemakaian berulang dapat dilihat pada Gambar 5. Berdasarkan Gambar 5 tampak bahwa aktivitas EK amobil stabil pada pemakaian ke-1 hingga ke-4. Aktivitas EK amobil selanjutnya mengalami penurunan secara drastis. Hal ini menunjukkan bahwa amobilisasi enzim protease dengan poliakrilamida meningkatkan kestabilan untuk empat kali pemakaian berulang. Proses amobilisasi menyebabkan penurunan aktivitas enzim namun meningkatkan stabilitas enzim. Penghambatan reaksi enzimatis oleh pengaturan difusi dari pemindahan substrat dan produk merupakan salah satu kelemahan metode penjebakan enzim dalam gel. Pada enzim yang telah diamobilisasi, substrat dan produk dengan berat molekul tinggi sering sulit melewati pori-pori gel. Substrat yang mempunyai berat molekul tinggi akan sulit masuk ke dalam gel, begitu juga apabila produk yang dihasilkan 91

mempunyai berat molekul tinggi akan sulit keluar dari gel, sehingga aktivitasnya menjadi berkurang (Smith, 1990). Menurut Soehartono (1989), penurunan aktivitas enzim amobil kemungkinan disebabkan oleh matriks penyangga yang digunakan bersifat porous, sehingga enzim mudah keluar dari gel. Pengujian stabilitas enzim terhadap pemakaian berulang dilakukan oleh Hendri dan Aspita (2008). Enzim α-amilase yang diamobilisasi dengan polimer kitin stabil terhadap pemakaian berulang setelah pemakaian ke-6 dan mengalami penurunan aktivitas sebesar 88,56%. Najafi, et al., (2005) melakukan amobilisasi enzim protease yang diisolasi dari Pseudomonas aeruginosa PD100 dan uji pemakaian berulang stabil hingga pemakaian ke-6. KESIMPULAN Suhu optimum EK bebas adalah 60 o C dan meningkat menjadi 70 o C pada penggunaan EK amobil. EK bebas dan EK amobil memiliki ph optimum yang sama yaitu 11. Amobilisasi ekstrak kasar protease dengan poliakrilamida meningkatkan kestabilan untuk empat kali pemakaian berulang. UCAPAN TERIMAKASIH Penulis mengucapkan terimakasih kepada Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi atas bantuan dana penelitian melalui Program Hibah Bersaing. DAFTAR PUSTAKA Alexander, R.R. dan J. M Griffiths, 1993, Basic Biochemical Methods. Wiley-Liss, Inc. Fuad, A. M., Rini, dan R. M. Nisa, 2004, Produksi dan Karakterisasi Parsial Protease Alkali Termostabil Bacillus thermoglucosidasius AF- 01, Jurnal Mikrobiologi Indonesia, Vol.9, No.1, 29-35. Hendri, J dan Aspita L., 2008, Studi Pemanfaatan Polimer Kitin sebagai Media Pendukung Amobilisasi Enzim α-amilase, Prosiding Seminar Nasional Sains dan Teknologi-II 2, Universitas Lampung, Lampung. Kusumadi, G., 1998, Isolasi dan Pemilahan Mikroorganisme Penghasil Enzim Protease pada Suhu Tinggi, Skripsi (tidak dipublikasikan), IPB, Bogor. Moon, S. H. and S. J. Parulekur., 1993, Some Observation on Protease Producing in Continuous Suspention Cultures of Bacillus Firmus, Biotech. Bioenginering, Vol.41, 43-54. Najafi, M. F., Dileep D., and Deepti D., 2005, Potential Applications of Protease from Pseudomonas aeruginosa PD100, Chile Journal of Biotechnology, Vol.8, No.2. Sadikin, M., 2002, Biokimia Enzim, Penerbit Widya Medika, Jakarta. Smith, J. E., 1990, Prinsip Bioteknologi, PT Gramedia, Jakarta. Soehartono, M. T., 1989, Bioteknologi Enzim, Departemen Pendidikan dan Kebudayaan, Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi antar Universitas, Jakarta. Winarno, F. G., 1995, Enzim Pangan, Gramedia, Jakarta 92