KARAKTERISASI BAKTERI PENYEBAB PENYAKIT HAWAR DAUN EDAMAME DI JEMBER

dokumen-dokumen yang mirip
BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Bahan dan Alat Metode Penelitian Pra-pengamatan atau survei

KARAKTERISTIK PENYEBAB PENYAKIT LAYU BAKTERI PADA TANAMAN TEMBAKAU DI PROBOLINGGO

BAHAN DAN METODE. Tempat dan Waktu

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu . Bahan dan Alat Metode Penelitian Survei Buah Pepaya Sakit

III. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Juli sampai dengan Desember 2014.

BAHAN DAN METODE. Pengambilan sampel tanaman nanas dilakukan di lahan perkebunan PT. Great

Gambar 1 Tanaman uji hasil meriklon (A) anggrek Phalaenopsis, (B) bunga Phalaenopsis yang berwarna putih

LAMPIRAN. Universitas Sumatera Utara

HASIL DAN PEMBAHASAN

III. BAHAN DAN METODE

III. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Bioteknologi Fakultas Pertanian

BAB III METODE PENELITIAN. Rancangan penelitian yang digunakan adalah rancangan penelitian

EKSPLORASI Pseudomonad fluorescens DARI PERAKARAN GULMA PUTRI MALU (Mimosa invisa)

II. METODELOGI PENELITIAN

III. METODOLOGIPENELITIAN

HASIL DAN PEMBAHASAN Isolasi dan Inokulasi Penyebab Busuk Lunak Karakterisasi Bakteri Penyebab Busuk Lunak Uji Gram

BAB III METODE PENELITIAN

BAHAN DAN METODE. Metode Penelitian

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan Januari sampai bulan April 2014.

Penelitian ini dilakukan di laboratorium Mikrobiologi Pangan Universitas Katolik Soegijapranata pada Agustus 2013 hingga Januari 2014.

Sampel air panas. Pengenceran 10-1

KAJIAN MIKROBA RIZOSFER DI KAWASAN PERTANIAN ORGANIK KEBUN PERCOBAAN CANGAR PENDAHULUAN

BAHAN DAN METODE Tempat dan waktu penelitian Bahan dan Alat Isolasi dan Uji Reaksi Hipersensitif Bakteri Penghasil Siderofor

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian ini merupakan penelitian eksplorasi yang dilakukan dengan cara

HASIL DAN PEMBAHASAN

ABSTRAK DAN EXECUTIVE SUMMARY PENELITIAN DISERTASI DOKTOR

II. METODELOGI PENELITIAN

UJI LOPAT BAKTERI PATOGEN DARI BEBERAPA TANAMAN

BAHAN DAN METODE. Tabel 1 Kombinasi perlakuan yang dilakukan di lapangan

Uji Kosser Sitrat Hidrolisis Lemak Uji Oksidase dan Katalase Hidrolisis Gelatin Motilitas Hidrolisis Kasein Uji H2S Uji Indol Reduksi Nitrat

MATERI DAN METODE. Kasim Riau yang beralamat di Jl. HR. Soebrantas KM 15 Panam, Pekanbaru.

Teknik Identifikasi Bakteri

II. METODOLOGI 2.1 Persiapan Wadah dan Ikan Uji 2.2 Persiapan Pakan Uji

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian ini merupakan penelitian Deskriptif karena tujuan dari

LAPORAN PRAKTIKUM MIKROBIOLOGI DASAR. Pengecatan Gram dan Pengujian KOH Pada Bakteri OLEH :

Ni Made Laksmi Ernawati Fakultas Pertanian Universitas Mataram

BAB III METODA PENELITIAN

BAB 5. HASIL DAN PEMBAHASAN. Percobaan 1 : Isolasi dan identifikasi bakteri penambat nitrogen nonsimbiotik

BAB III METODE PENELITIAN. Jenis penelitian ini adalah penelitian deskriptif. Tempat penelitian di laboratorium lab. Mikrobiologi, Lantai II di kampus

BAB III METODE PENELITIAN. deskriptif. Data yang diperoleh disajikan secara deskriptif kualitatif meliputi

BAB III METODE PENELITIAN. Biologi dan Laboratorium Biokimia, Departemen Kimia Fakultas Sains dan

BAB III METODE PENELITIAN. kentang varietas Granola Kembang yang diambil dari Desa Sumberbrantas,

Isolasi, Karakterisasi dan Uji Potensi Bakteri Penghasil Enzim Termostabil Air Panas Kerinci

III. BAHAN DAN METODE

III. METODE PENELITIAN. dilaksanakan pada bulan Maret Mei Penelitian dilaksanakan di

LAMPIRAN. Universitas Sumatera Utara

II. METODE PENELITIAN

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini merupakan penelitian observasional laboratorik untuk mengetahui

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan Januari-Maret 2014 di Laboratorium

BAB III BAHAN DAN METODE. Penelitian dilakukan dari 2 Juni dan 20 Juni 2014, di Balai Laboraturium

II. METODELOGI PENELITIAN

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan dengan menggunakan metode descriptive analitic

Pseudomonas fluorescence Bacillus cereus Klebsiella cloacae (Enterobacter cloacae) MATERI DAN METODE Lokasi dan Waktu Penelitian

VIII. AKTIVITAS BAKTERI NITROGEN

BAB III METODE PENELITIAN

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini akan dilakukan pada bulan Juli sampai September 2012,

BAB III METODE PENELITIAN. Populasi yang diamati pada penelitian ini diperoleh dari penelitian

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Botani, Jurusan Biologi, Fakultas

BAB III METODE PENELITIAN. Rancangan penelitian yang digunakan adalah rancangan penelitian

EKSPLORASI BAKTERI PATOGEN PADA BEBERAPA SPESIES TANAMAN KANTONG SEMAR (Nepenthes sp.)

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Wawancara Pengamatan dan Pengambilan Contoh

III. MATERI DAN METODE

PETUNJUK PRAKTIKUM MIKROBIOLOGI DASAR (TPP 1207) Disusun oleh : Dosen Pengampu

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian dilakukan di Laboratorium Mikrobiologi Analis Kesehatan

BAB III METODE PENELITIAN. Jenis penelitian ini adalah deskriptif.

BAB III BAHAN DAN METODE

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian yang digunakan adalah penelitian deskripsi eksploratif untuk

HASIL DAN PEMBAHASAN

METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan dari Bulan April sampai dengan Juni 2013, di

BAHAN DAN METODE Waktu dan Tempat Bahan dan Alat Metode Penelitian Penyediaan Isolat Fusarium sp. dan Bakteri Aktivator

LAMPIRAN. Universitas Sumatera Utara

BAHAN DAN METODE. Pertanian Universitas Sumatera Utara, Medan dengan ketinggian tempat + 25

II. METODOLOGI PENELITIAN. Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Udayana,

BAB III METODE PENELITIAN

Koloni bakteri endofit

MATERI DAN METODE. Pekanbaru. Penelitian ini telah dilaksanakan pada bulan Mei sampai September

bio.unsoed.ac.id III. METODE PENELITIAN

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. unit perinatologi di Rumah Sakit Abdoel Moeloek dengan melakukan uji coliform pada

III. METODOLOGI PENELITIAN. Pengambilan sampel dilakukan di pasar di sekitar kota Bandar Lampung,

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penyiapan Tanaman Uji Pemeliharaan dan Penyiapan Suspensi Bakteri Endofit dan PGPR

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Botani, Fakultas Matematika dan Ilmu

Keragaman Bakteri Endofit Pada Kultivar Nanas (Ananas comosus (L.) Merr) Leor Dan Duri Di Kabupaten Subang

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Mei sampai Oktober 2014, di

SKRINING BAKTERI ANTAGONIS RALSTONIA SP., PENYEBAB PENYAKIT LAYU BAKTERI PISANG DI LAMPUNG

III. BAHAN DAN METODE. Sampel tanah diambil dari daerah di sekitar risosfer tanaman nanas di PT. Great

Reaksi BIOKIMIA PADA UJI BAKTERIOLOGI. No UJI BIOKIMIA KETERENGAN. 1. Uji fermentasi karbohidrat

Air Panas. Isolat Murni Bakteri. Isolat Bakteri Selulolitik. Isolat Terpilih Bakteri Selulolitik. Kuantitatif

BAB III METODE PENELITIAN. mengetahui mikroorganisme yang terdapat pada tangan tenaga medis dan

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Bahan dan Alat Metode Penelitian Penyiapan tanaman uji

BAHAN DAN METODE. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Jurusan Proteksi

IV. KULTIVASI MIKROBA

METODOLOGI PENELITIAN

Sampel air kolam, usus ikan nila dan endapan air kolam ikan. Seleksi BAL potensial (uji antagonis)

HASIL. Karakteristik, Morfologi dan Fisiologi Bakteri Nitrat Amonifikasi Disimilatif

Haris Dianto Darwindra BAB VI PEMBAHASAN

BAB III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Mikrobiologi Jurusan Biologi

III. METODE PERCOBAAN. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Februari sampai April 2014 di

LAPORAN PRAKTIKUM MIKROBIOLOGI DASAR ISOLASI MIKROORGANISME. Disusun Oleh: Rifki Muhammad Iqbal ( ) Biologi 3 B Kelompok 6

LAMPIRAN. Lampiran 1. Alur Kerja Isolasi Bakteri Endofit dari Batang dan Akar Tanaman Dara metode Radu & Kqueen (2002) yang dimodifikasi

Lampiran 1 Komposisi media pertumbuhan bakteri

Transkripsi:

10 Rachmi Masnilah et al., Karakteristik Bakteri Penyebab Penyakit Hawar... PERTANIAN KARAKTERISASI BAKTERI PENYEBAB PENYAKIT HAWAR DAUN EDAMAME DI JEMBER Characterization of Bacterial Blight Pathogen on Edamame Soybean in Jember Rachmi Masnilah 1*, Abd Latif Abadi 2, Tutung Hadi Astono 2, Luqman Qurata Aini 2 1 Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Jember 2 Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya *Email: rachmimasnilah@gmail.com ABSTRACT One among important diseases in Edamame soybean is bacterial leaf bligh. The disease is relatively new and causes significant loss of soybean yield. This research was aim to know the characterize the pathogen of bacterial blight in Jember. Survey was one in several soybean field in Jember and the plant sample was culture on King's B medium to grow the pathogen. Identification was done through pysiological and biochemistry assay. The result showed that the pathogen of bacterial blight disease on Edamame soybean di Jember (Panti, Sukorambi, Wirolegi, Ajung, and Sumbersari) was Pseudomonas syringae pv. glycinea with properties as Gram negative, produce fluorescent pigment on King's B medium, grew on 20-40 O C, ph range of 4.5-8.5, tolerant on 0.5-2% NaCl and also pathogenic and virulent on Edamame while reinoculated to Edamame. Keywords: Edamame; bacterial leaf blight; soybean ABSTRAK Salah satu penyakit penting pada kedelai khususnya edamame ialah hawar daun bakteri, penyakit ini merupakan penyakit yang relatif baru dan menyebabkan kerugian yang cukup signifikan. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui karakteristik bakteri penyebab penyakit hawar daun edamame di daerah Jember. Penelitian diawali dengan pengamatan gejala di lapangan di beberapa lokasi di daerah Jember. Bagian tanaman yang sakit dibawa ke laboratorium, selanjutnya dilakukan isolasi pada medium King B. Identifikasi dilakukan dengan serangkaian pengujian fisiologi dan biokimia. Berdasarkan pengujian yang telah dilakukan disimpulkan bahwa bakteri penyebab penyakit hawar daun edamame di Jember (Panti, Sukorambi, Wirolegi, Ajung, dan Sumbersari) ialah Pseudomonas syringae pv. glycinea yang bersifat gram negatif, mampu membentuk pigmen fluoresen pada medium king B, mampu tumbuh baik pada kisaran suhu 20-40 0 C, mempunyai kisaran ph 4,5-8,5, toleran pada kandungan NaCl 0,5-2%, serta bersifat patogenik dan virulen pada tanaman edamame. Keywords: edamame; hawar daun; kedelai How to citate: Masnilah R, AL Abadi, TH Astono, LQ Aini. 2013. Karakterisasi bakteri penyebab penyakit hawar daun edamame di Jember. Berkala Ilmiah Pertanian 1(1): 10-14. PENDAHULUAN Penyakit hawar daun bakteri merupakan penyakit baru pada edamame, penyakit ini muncul sejak tahun 2003 dan menyebabkan kerugian yang cukup signifikan dalam budidaya edamame. Pada saat ini penyakit hawar daun bakteri sedang berkembang pada pertanaman kedelai khususnya edamame di Jember. PT Mitra Tani 27 Jember (komunikasi pribadi) mengemukakan bahwa hampir seluruh sentra pertanaman edamame di Jember terinfeksi bakteri tersebut, sehingga dapat menyebabkan kerugian dan penurunan produksi edamame. Untuk mengatasi masalah penyakit tanaman perlu dilakukan upaya pengendalian yang tepat, sehingga diperlukan identifikasi penyebab penyakit tersebut agar pengendalian yang dilakukan dapat tepat sasaran, efektif dan efisien. Sampai sekarang ini, identifikasi bakteri hawar daun kedelai yang pernah dilakukan di Indonesia hanya terbatas pada benih baik secara fenotipik (Asrul, 2007) maupun secara serologi (Suryadi dan Machmud, 2006). Untuk itu perlu dilakukan identifikasi pada tanaman yang terinfeksi bakteri hawar daun secara fenotipik. Identifikasi bakteri pathogen secara fenotipik penting untuk mendapatkan gambaran tentang bakteri pathogen seperti morfologi sel dan koloni maupun karakter fisiologi dan biokimia (Schaad, 2001). Identifikasi secara fenotipik ini masih diperlukan untuk mendapatkan informasi yang cepat tentang penyakit tersebut sehingga metode pengendalian yang memadai dapat di rekomendasikan (Lelliott dan Stead, 1987). Berdasarkan hal tersebut, maka sebagai langkah awal perlu dilakukan karakterisasi bakteri penyebab penyakit hawar daun edamame di Jember. BAHAN DAN METODE Survei Pengamatan gejala dan Pengambilan Sampel Tanaman Sakit. Survei dilakukan di daerah sentra edamame di daerah Jember. Penentuan lokaisi survei dan pengambilan sampel dilakukan secara purposive (berdasarkan kriteria tertentu) dengan metode stratifikasi (penstrataan) di wilayah kabupaten Jember yang mewakili daerah sentra tanaman edamame. Gejala yang diamati adalah pada daun terdapat bercak tembus cahaya, berwarna coklat tua dikelilingi oleh halo klorotik dan kebasah-basahan. Pengambilan sampel tanaman edamame yang terinfeksi bakteri hawar daun dilakukan dengan mencabut tanaman yang menunjukkan gejala beserta tanah disekitar perakaran dan dimasukkan dalam kantong plastik dan disimpan dalam termos es dan segera dibawa ke Laboratorium. Apabila tidak langsung diuji disimpan pada suhu 4 o C. Isolasi dan Identifikasi Penyebab Penyakit Hawar Daun Bakteri pada Edamame. Isolasi dilakukan dengan cara mengambil daun dari tanaman sakit yang diduga terinfeksi bakteri hawar daun dengan cara memotong bagian daun yang menunjukkan gejala hawar pada batas bagian tanaman yang sakit dan yang sehat. Kemudian potongan-potongan tersebut dicuci dengan air steril, didesinfeksi dengan alkohol 70% dan dibilas dengan air steil 3 kali. Potongan tersebut dilembabkan pada cawan petri yang dilapisi kertas saring steril dan diinkubasikan 24-4 jam. Massa bakteri yang muncul pada potongan daun yang dilembabkan digoreskan pada medium Kings B dalam cawan petri dengan menggunakan jarum ose yang kemudian diinkubasikan dalam suhu ruang selama 24 jam. Setelah terjadi petumbuhan dilakukan pemurnian dengan cara mengisolasi kembali bakteri pada medium Kings B hingga bakteri yang tumbuh benar-benar isolat murni. Pengujian Gram. Gelas obyek dibersihkan dengan alcohol 70% dan dikeringanginkan di atas Bunsen. Isolat bakteri yang telah berumur 24 jam

11 Rachmi Masnilah et al., Karakteristik Bakteri Penyebab Penyakit Hawar... diambil sau ose dan diletakkan pada gelas obyek yang telah ditetesi dengan KOH 3% diaduk dan dicampur dengan hingga rata. Setelah rata jarum ose diangkat perlahan-lahan. Apabila bakteri tersebut lengket atau terangkat maka bakteri tersebut bereaksi positif dan termasuk Gram negative dan jika tidak lengket maka tergolong dalam Gram positif reaksi negative (Lelliot dan Stead, 1987). Reduksi Hidrogen Peroksidase (Katalase). Biakan bakteri digoreskan pada gelas benda, kemudian ditetesii dengan H 2 O 2 3%. Terjadinya gelembung udara menunjukkan bahwa bakteri mereduksi H 2 O 2 (Lelliot dan Stead, 1987). Pengujian Oksidatif Fermentatif (OF). Menyiapkan medium Oksidatif-Fermentatif sebanyak 2 tabung reaksi untuk setiap isolate masing-masing 5 ml. Satu ose bakteri ditusukkan pada 2 medium tersebut, untuk tabung 1 ditutupi dengan minyak parafin dan tabung 2 tidak ditutupi dengan minyak parafin, kemudian masing-masing tabung diinkubasikan selama 7-14 har dan diamati dengan melihat perubahan warna dari hijau menjadi kuning baik pada tabung yang ditutupi parafin maupun yang tidak ditutupi parafin. Apabila seluruh media berwarna kuning maka bersifat oksidatif fermentative (Lelliot dan Stead, 1987). Hidrolisis Pati. Isolat bakteri yang berumur 24 jam ditumbuhkan pada medium pati, kemudian diinkubasi selama 3-5 hari. Setelah lima hari, medium ditetesi dengan reagen iodium pati. Reaksi positif terjadi apabila di sekitar koloni bakteri yang tumbuh menjadi bening, apabila negatif di sekitar koloni bakteri menjadi gelap/ berwarna biru tua (Lelliot dan Stead, 1987). Pencairan Gelatin. Pengujian dilakukan dengan menginokulasikan bakteri uji yang berumur 24-48 jam pada medium gelatin dalam tabung reaksi. Perlakuan diinkubasikan dalam suhu ruang selama 2-5 hari, kemudian sebelum dilakukan pengamatan diinkubasikan terlebih dahulu pada suhu 4 o C selama 2 jam dalam lemari pendingin. Medium yang tetap cair menunjukkan reaksi positif yang membuktikan bahwa bakteri dapat menghidrolis gelatin (Klement, 1990). Produksi Indol. Produksi dilakukan dengan menumbuhkan bakteri pada medium indol yang kemudian diinkubasikan selama 2-7 hari. Pengamatan dilakukan dengan meneteskan larutan iodin pada perlakuan, jika terdapat cincin merah pada permukaan medium menandakan reaksi positif (Klement, 1990). Reduksi Nitrat, Bakteri ditumbuhkan pada medium nitrat dalam tabung reaksi selama 72 jam kemudian ditambahkan 1 ml reagen nitrat dan diinkubasikan selama 24 jam pada suhu ruangan. Terjadinya perubahan warna merah menunjukkan bahwa bakteri dapat mereduksi nitrat (Klement, 1990). Pembentukan Asam. Pada pengujian pembentukan asam dari karbohidrat, senyawa karbohidrat disterilisasi secara terpisah dari medium, yaitu glukosa, sukrosa, dekstrosa, manitol dan sorbitol dengan kadar 10%. Sebanyak 4,5 ml medium dalam tabung reaksi ditambahkan 0,5 ml karbohidrat 1%, kemudian suspensi bakteri ditusukkan ke dalam tabung reaksi. Asam yang berbentuk ditunjukkan dengan perubahan warna medium dari hijau menjadi kuning. Pengamatan dilakukan 7 sampai 14 hari setelah inokulasi (Schaad, 1988). Uji Produksi Levan. Bakteri ditumbuhkan dalam cawan petri yang berisi 5-10 ml nutrient agar (NA) yang telah ditambahkan 5% sukrosa. Kemudian diinkubasikan pada suuhu ruangan selama 2 hari. Bakteri yang membentuk levan sukrosa akan memperlihatkan koloni yang transparan sampai buram, bercahaya, berlendir (mukoid) dengan bentuk cembung yang jelas (Kerr, 1980; Fahy dan Hayward, 1983). Pengujian Pembusukan Kentang. Bakteri diinokulasikan pada kentang yang telah didisinfeksi menggunakan alkohol 70% yang kemudian dibilas dengan air steril 3 kali, kentang tersebut diletakkan dalam cawan Petri yang telah diberi kertas saring. Inkubasi selama 2-3 hari, reaksi positif ditunjukkan dengan terjadinya pembusukan pada kentang yang diinokulasikan bakteri (Lelliot dan Stead, 1987). Pengujian Arginin Dehidrolase. Bakteri ditumbuhkan pada medium yang mengandung L-arginin pada dua tabung reaksi yang berbeda yaitu yang satu ditutup minyak parafin dan yang lainnya tanpa minyak parafin. Pada tabung yang diuji selanjutnya ditusukkan kultur bakteri yang berumur 24 jam. Selanjutnya kultur diinkubasikan pada suhu 27 0 C selama 3 sampai 7 hari untuk melihat reaksinya. Reaksi yang positif ditandai dengan terjadinya perubahan warna media menjadi lebih merah pada tabung yang ditutup minyak parafin, sedangkan yang kontrol tetap berwarna merah jambu (Lelliot dan Stead, 1987). Pengujian Hipersensitif (HR) pada daun Tembakau. Pengujian reaksi hipersensitif dilakukan dengan cara membuat suspensi bakteri dari biakan yang telah diinkunbasikan 48 jam, kemudian membuat seri pengenceran hingga 10 7 sel/ml. Hasil dari pengenceran tersebut diinfiltrasikan pada permukaan bawah daun tembakau yang berumur sedang. Reaksi positif terlihat jika pada bagian yang diinfiltrasi supensi bakteri terjadi nekrosis (Klement, 1990). Pengujian Pengaruh Suhu. Menginokulasikan bakteri berumur 24 jam pada medium Ayers, kemudian diinkubasikan pada suhu 5 0 C, 20 0 C, 25 0 C, 40 0 C, 44 0 C. Setelah ditumbuhkan selama 48 jam keempat tabung dikocok dan kekeruhannya dibandingkan. Pengujian Pengaruh ph. Mempersiapkan biakan bakteri berumur 24 jam, lalu menginokulasikan pada tabung yang berisi medium ayers dengan ph 4; 4,5; 6; 7; dan 8,5, kemudian diinkubasikan selama 48 jam dan dilihat derajat kekeruhannya untuk melihat pertumbuhan bakteri. Pengujian Pengaruh Garam. Menginokulasikan biakan bakteri berumur 24 jam pada medium Ayers dengan dengan konsentrasi NaCl 0,5%, 1,5%, 2%, dan 2,5%, kemudian diinkubasikan selama 48 jam untuk melihat pertumbuhan bakteri dengan melihat kekeruhan pada medium (Lelliot dan Stead, 1987). Uji virulensi. menggunakan tanaman edamame yang diinokulasi dengan metode pelukaan pada daun dengan menggunakan jarum, kemudian suspensi isolat bakteri hawar daun disemprotkan pada daun tersebut. Isolat yang virulen dipilih untuk diidentifikasi secara molekuler dan dipakai dalam pengujian selanjutnya dalam skrening di laboratorium dan di rumah kaca. Gambar 1. Gejala Penyakit Hawar Daun Edamame: (a) pada daun; (b) pada tangkai daun; (c) pada polong

12 Rachmi Masnilah et al., Karakteristik Bakteri Penyebab Penyakit Hawar... HASIL DAN PEMBAHASAN Berdasarkan hasil survey dan pengamatan lapangan di beberapa lokasi di Jember (Panti, Sukorambi, Wirolegi, Ajung, dan Sumbersari), semua contoh tanaman sakit yang diamati menunjukkan gejala yang hampir sama. Gejala berupa daun-daun yang tampak terdapat bercak tembus cahaya, berwarna coklat tua dikelilingi oleh halo klorotik dan kebasahbasahan. Gejala dapat terjadi pada batang, tangkai daun dan polong (Gambar 1). Hal ini sesuai dengan pendapat Semangun, (1993) dan Alvarez et.al (1995) bahwa hawar daun bakteri sering terjadi pada daun berupa bercak kebasahan pada sisi bawah daun, bercak berwarna coklat, tembus cahaya dan dikelilingi warna kuning sampai oranye. Pada batang yang sakit terdapat bercak persegi panjang dan berwarna gelap, pada polong dan benih terdapat bercak berwarna abu-abu sampai coklat, berminyak dan kemudian mengering. Gambar 2. Morfologi Koloni Bakteri Hawar Daun Edamame pada medium King B (a) isolat Psg 28; (b) isolat Psg 32 Isolat bakteri yang ditumbuhkan pada medium King B menunjukkan adanya persamaan karakteristik pertumbuhan koloni, yaitu koloni berbentuk bulat, halus, bening dengan tepi dan memproduksi pigmen fluoresen, hal ini terlihat saat biakan bakteri disinari lampu ultra violet (UV) menghasilkan warna hijau berpendar sehingga digolongkan sebagai bakteri pendar fluor ( Tabel 1 dan Gambar 2) Menurut Schaad (1988), Adanya pigmen fluoresen setelah bakteri ditumbuhkan pada medium King B menunjukkan bahwa bakteri termasuk golongan Pseudomonas fluorescens. Berdasarkan uji fisiologi isolat bakteri hawar daun edamame memberikan reaksi negatif pada pengujian gram, hidrolisis pati, fermentatif, pencairan gelatin, pembusukan kentang dan arginine dehidrolase. Untuk uji fisiologis yang menghasilkan reaksi positif ialah oksidatif, katalase, reduksi nitrat, produksi levan, produksi indol dan hipersensitifitas pada tembakau. Hasil uji tersaji pada Tabel 2. Isolat bakteri hawar daun edamame asal Jember bersifat gram negatif karena terbentuknya lendir lengket dari campuran koloni dan KOH 3% yang dapat terangkat lebih dari 1 cm oleh jarum ose (Gambar 3). Menurut Lelliot dan Stead (1987) dan Schaad (1988) bakteri hawar daun edamame yang disebabkan oleh Pseudomonas syringae pv.glycinea bersifat gram negatif (Tabel 2). Lelliot dan Stead (1987) menyatakan bahwa kebanyakan bakteri pathogen bersifat gram negatif. Isolat bakteri bereaksi positif pada uji katalase yang dibuktikan dengan timbulnya gelembung-gelembung udara dari campuran koloni bakteri dengan H2O2 3% (Gambar 3). Lelliot dan Stead (1987) menunjukkan bahwa P. syringae bereaksi positif pada uji katalase. Menurut Lay (1994) timbulnya gelembung-gelembung udara pada uji katalase membuktikan bahwa bakteri menghasilkan enzim katalase sehingga mampu mengubah hydrogen peroksida menjadi air dan oksigen. Tabel 1. Karakteristik Morfologi Koloni Bakteri Penyebab Penyakit Hawar Daun Edamame (P.syringae pv glycinea). No Asal Isolat Tipe Koloni pada Medium King B Kode Isolat 1 Ajung bulat, halus, bening dengan tepi 2 Wirolegi bulat, halus, bening dengan tepi 3 Sumbersari bulat, halus, bening dengan tepi 4 Sumbersari bulat, halus, bening dengan tepi 5 Sukorambi bulat, halus, bening dengan tepi 6 Sukorambi bulat, halus, bening dengan tepi 7 Panti bulat, halus, bening dengan tepi 8 Panti bulat, halus, bening dengan tepi Pendar flour Psg 8 Pendar flour Psg 12 Pendar flour Psg 13 Pendar flour Psg 14 Pendar flour Psg 25 Pendar flour Psg 26 Pendar flour Psg 28 Pendar flour Psg 32 Isolat bakteri bereaksi positif pada uji oksidatif dan bereaksi negatif pada uji fermentatif. Reaksi positif ditandai dengan perubahan warna hijau menjadi kuning yang dimulai dari permukaan media yang tidak tertutup minyak paraffin setelah masa inkubasi 7-14 hari (Gambar 3). Hasil uji tersebut sesuai dengan deskripsi Lelliot dan Stead (1987) dan Asrul (2007) pada Tabel 2 bahwa P. syringae pv. glycinea bereaksi positif pada uji oksidatif dan bereaksi negatif pada uji fermentatif. Reaksi positif pada uji oksidatif membuktikan bahwa P. syringae pv. glycinea membutuhkan oksigen untuk tumbuh dan memproduksi asam dalam kondisi aerob, sehingga bakteri termasuk dalam golongan bakteri aerobic (Fahy dan Haywar, 1983). Isolat bakteri menunjukkan reaksi negatif pada uji hidrolisis pati yang dicirikan dengan warna hitam pada area yang ditumbuhi bakteri setelah ditetesi reagen iodium pati (Gambar 3). Menurut Lelliod dan Stead (1987) pada Tabel 2 bakteri P. syringae pv. glycinea bereaksi negatif pada uji hidrolisis pati. Menurut Lay (1994) reaksi negatif tersebut menunjukkan bahwa P. syringae pv. glycinea tidak dapat menghidrolisis pati menjadi maltose dan gukosa karena tidak mampu menghasilkan enzim amylase. Isolat bakteri bereaksi positifif pada uji pencairan gelatin yang ditandai dengan mencairnya media yang ditumbuhi bakteri setelah inkubasi selama 2-5 hari dan 2 jam dalam lemari pendingin sebelum pengamatan. Lay (1994) mengatakan bahwa reaksi positif menujukkan bakteri P. syringae pv. glycinea mampu mendekomposisi gelatin yang terkandung pada media tersebut. Isolat bakteri yang diuji bereaksi positif pada uji reduksi nitrat yang ditandai dengan timbulnya warna merah setelah ditetesi reagen A+B. Isolat ini terbukti bereaksi positif sesuai dengan P. syringae yang diidentifikasi oleh Asrul (2007) (Tabel 2). Menurut Fahy dan Hayward (1983) terbentuknya warna merah tersebut mengindikasikan adanya nitrit yang Gambar 3. Hasil Pengujian Fisiologi Bakteri Hawar Daun Edamame: (a) Uji gram; (b) Uji katalase; (c) Uji oksidatif-fermentatif; (d) Uji hidrolisis pati; (e) Uji hipersensitif pada daun tembakau

13 Rachmi Masnilah et al., Karakteristik Bakteri Penyebab Penyakit Hawar... dihasilkan dari kemampuan bakteri mereduksi nitrat. Reaksi positif ditunjukkan isolat bakteri pada uji indol dengan terbentuknya lapisan merah pada permukaan media setelah ditetesi reagen kovacs. Reaksi positif tersebut membuktikan bahwa bakteri mampu menghasilkan enzim triptofan untuk memecah asam amino triptofan menjadi indol serta asam piruvat dan NH4+ (Lay, 1994). Tabel 2. Karakteristik Sifat Fisiologis dan Biokimia Bakteri Penyebab Penyakit Hawar Daun Edamame (P. syringae pv glycinea) Isolat asal Jember dibandingkan dengan karakteristik dari Lelliot dan Stead (1987); Schaad (1988); Schaad (2001) dan Asrul (2007). No Jenis Penguian Isolat Asal Jember Karakteristik P. syringae pv. glycinea Lelliot dan Stead (1987) Schaad (1988) Schaad (2001) Asrul (2007) 1 Gram - - - - - 2 Katalase + + 3 Pigmen fluoresen + + + + + 4 Oksidatif + + + Fermentatif - - - - - 5 Hidrolisis pati - - 6 Pencairan gelatin + + 7 Pemanfaatan sumber karbon - sucrose + V+ + - glucose + + - dekstrose + - manitol + V+ + - sorbitol + - +D 8 Reduksi nitrat + + 9 Indol + 10 Levan Sukrose + + + + + 11 Pembusukan Kentang - - - - - 12 Arginin dehidrolase - - - - - 13 Hipersensitif pada daun tembakau 14 Suhu (c) 15 NaCl (%) 16 ph media 5-20 + 25 + + + + + + 40 + + 44-0,5 + + 1,5 + + 2 + + 2,5 - - 4 - - 4,5 + + 6 + + 7 + + 8,5 + + (+) = reaksi positif; (-) = reaksi negatif, (V+)= 21-79% strain positif, (+D)= 80% strain mengalami perlambatan positif. Isolat bakteri menunjukkan reaksi positif pada uji pembentukan levan yang dicirikan dengan koloni yang tampak bersinar, berlendir dan cembung. Hasil tersebut sesuai dengan P. syringae pv. glycinea yang ditunjukkan oleh Schaad (1988), Schaad (2001) dan Asrul (2007) pada Tabel 2. Isolat bakteri hawar daun edamame asal Jember terbukti menunjukkan reaksi negatif pada uji pembusukan kentang, hal ini menunjukkan bakteri tersebut tidak mampu menghasilkan enzim pektolitik untuk membusukkan kentang. Isolat bakteri juga terbukti menunjukkan reaksi negatif pada uji arginine dehidrolase dan positif pada uji hipersensitifitas pada daun tembakau sesuai deskripsi P. syringae pv. glycinea oleh Schaad (1988) dan Schaad (2001) pada Tabel 2. Reaksi positif ini ditunjukkan dengan munculnya gejala nekrotik setelah diinokulasi dengan suspensi bakteri (Gambar 3). Gejala tersebut muncul dalam waktu 24-48 jam, sesuai pernyataan Lelliot dan Stead (1987) bahwa reaksi positif akan muncul dalam waktu 24-48 jam. Dalam waktu 5-10 hari gejala nekrotik tampak semakin meluas. Reaksi hipersensitif menyebabkan hancurnya seluruh membrane seluler dari sel-sel yang berkontak dengan bakteri dan kemudian diikuti dengan pengeringan dan nekrosis jaringan daun yang terserang bakteri tersebut (Agrios, 2004). Adanya reaksi positif ini membuktikan bahwa bakteri yang diuji merupakan pathogen tanaman. Isolat bakteri yang diuji mampu membentuk asam pada medium yang mengandung karbohidrat sukrosa, glukosa dan dekstrosa, manitol serta sorbitol (Tabel 2). Isolat bakteri hawar daun edamame masih dapat tumbuh dengan baik pada suhu 40 0 C yang ditunjukkan dengan keruhnya media yang diinkubasikan selama 24 jam. Pada suhu 20 0 C dan 25C bakteri juga tumbuh dengan baik, kecuali pada suhu 5 0 C dan 44 0 C. Isolat bakteri tumbuh pada kisaran ph 4,5-8,5 dan tidak tumbuh pada ph dibawahnya yaitu pada ph 4,0. Hal tersebut menunjukkan bahwa bakteri mampu tumbuh pada ph sangat basa dan ph asam, tetapi tidak toleran pada ph sangat asam.isolat juga mampu tumbuh pada konsentrasi garam kurang dari 2%. Isolat bakteri terbukti bereaksi positif dapat menginfeksi tanaman edamame berdasarkan uji virulensi pada tanaman inang tersebut. Reaksi positif ditunjukkan dengan timbulnya gejala bercak nekrotik berwarna coklat yang dikelilingi dengan halo yang berwarna kuning sampai oranye dengan masa inkubasi bervariasi antara 3-5 hari setelah inokulasi. Berdasarkan pengujian sifat fiologisis dan biokimia tersebut maka isolat bakteri uji identik dengan P. syringae pv. glycinea. Bakteri penyebab penyakit hawar daun edamame dari beberapa lokasi di Jember (Ajung, Sukorambi, Wirolegi, Panti dan Sumbersari) ialah P. syringae pv. glycinea yang bersifat gram negatif, mampu membentuk pigmen fluoresen pada medium king B, mampu tumbuh baik pada kisaran suhu 20-40 0 C, mempunyai kisaran ph 4,5-8,5, toleran pada kandungan NaCl 0,5-2%, serta bersifat pathogen dan virulen pada tanaman edamame. UCAPAN TERIMA KASIH Ucapan terima kasih disampaikan kepada Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi, Kementerian Pendidikan dan Kebudayaan Republik Indonesia selaku penyandang dana selama studi pada Program Doktor Ilmu Pertanian Program Pascasarjana Fakultas Pertanian Universitas Brawijaya dan DP2M yang telah memberikan dana melalui penelitian disertasi doktor. DAFTAR PUSTAKA Alvarez E, Braun EJ, McGee DC 1995. New assays for detection of Pseudomonas syringae pv. glycinea in soybean seed. Plant Dis 79:12-14 Agrios GN. 2004. Plant Pathology. Fifth Edition. San Diego, California: Academic Press. Asrul. 2007. Deteksi patogen penyebab penyakit hawar daun bakteri dari benih kedelai. Agroland. 14(1): 18-23. Fahy, P.C. and A.C Hayward. 1983. Media and Methods for Isolation and Diagnostic Test. In Fahy, P.C. and G. J. Persley (Eds) Plant Bacterial Diseases : a Diagnostic Guide: 337-378. Australia: Academic Press.. Klement Z, K Rudolph, D C Sand. 1990. Methods in Phytobacteriology. Budapest: Academia Kiado.. Lay WB. 1994. Analisis Mikrobia di Laboratorium. Jakarta: Raja Grafindo Persada.

14 Rachmi Masnilah et al., Karakteristik Bakteri Penyebab Penyakit Hawar... Lelliot, Stead. 1987. Methods for the Diagnosis of Bcaterial Diases of plants. Oxford: Blackwell Sci. Publ. Schaad NW. 1988. Laboratory Guide For Idetification of Plant Pathogenic bacteria. 2nd Edition. Minnesota: The American Phytopathological Society. Schaad NW, JB Jones, W Chun. 2001. Laboratory Guide For Idetification of Plant Pathogenic bacteria. Third Edition. Minnesota: The American Phytopathological Society. Semangun, H. 1993. Penyakit-penyakit tanaman Pangan di Indonesia. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press. Suryadi Y, M Machmud. 2006. Deteksi Pseudomonas syrngae pv. glycenia (Psg) menggunakan antibody poliklonal dan NCM-ELISA. Berita Biologi 8(1): 45-51. Sudarma MI. 2010. Seleksi dan Pemanfaatan Actinomycetes Sebagai Mikroba Antagonis yang Ramah Lingkungan Terhadap Fusarium oxysporum f.sp cubense Secara In Vitro. Fakultas Pertanian. Universitas Udayana Suwandi U. 1993. Skrining mikroorganisme penghasil antibiotika. Cermin Dunia Kedokteran 89(48):46-48