. Hasil penelitian menunjukkan pertumbuhan harian dan puncak pertumbuhan Dunaliella salina

Transkripsi

1 Bimafika, 0,, -00 PENGARUH PENGGUNAAN MEDIA F DAN MEDIA WALNEY TERHADAP PERTUMBUHAN FITOPLANKTON (Dunaliella salina) Alwi Smith* Staf Pengajar Fakultas Kegur dan Ilmu Pendidikan Universitas Pattimura Diterima -0-0; Terbit 0--0 ABSTRACT. Hasil penelitian menunjukkan pertumbuhan harian dan puncak pertumbuhan Dunaliella salina berpengaruh sangat nyata ( P < 0.0) dengan penggunaan media yang berbeda. Puncak pertumbuhan Dunaliella salina yaitu :.66 0 cell/ml (MF), 6 0 cell/ml (MW), dan 0 cell/ml (MO). Pada pola pertumbuhan rata-rata perlak MW memberikan hasil tertinggi ( cell/ml). Diikuti perlak MF ( cell/ml) dan perlak MO memberikan hasil terendah (. 0 cell/ml). Dalam penelitian ini ditemukan bahwa perlak dengan media MW (Walney) memberikan hasil terbaik untuk pertumbuhan Dunaliella salina. Keywords: Dunaliella salina, pertumbuhan, Media F dan Media Walney Untuk perairan di Maluku, plankton memgang oeranan penting sebagai dasar kehidupan yang menentukan kesuburan perairan. Plankton adalah jasad renik yang hidup bebas, terapung dan pergerakannya tergantung pada pergerakan arus, karena organisme ini tidak dapat aktif melawan pergerakan air (Odum dalam Latuihamallo, 98:). Sedangkan menurut Newel (dalam Latuihamallo, 98:) plankton didefinisikan sebagai organisme yang umumnya renik dalam air dengan kemamp berenang rendah sehingga pergerakannya dipengaruhi oleh gerakan air. Plankton terbagi atas dua yaitu fitoplankton dan zooplankton. Dari segi biologi, fitoplankton mempunyai peranan penting dalam jenjang makanan. Di laut, fitoplankton merupakan produsen utama dan dasar mata rantai dalam ekosistem perairan laut (Sumich dalam dalam Latuihamallo, 98:) sebab akan dimanfaatkan organisme lain sehingga akan terbentuk rantai makanan. Fitoplankton dapat dimanfaatkan langsung sebagai pakan organisme budidaya non fish dan sebagai pakan zooplankton. Selain itu, fitoplankton juga berfungsi sebagai penstabil lingkungan dalam media pemeliharaan larva serta penunjang budidaya ikan, industri kosmetik dan kesehatan (Cotteau dalam Anonim, 00:). Kegiatan budidaya non fish pada saat ini mulai berkembang untuk mendukung hal ini penyediaan pakan mutlak diperlukan baik berupa pakan alami maupun pakan buatan, pakan yang ada harus cukup tersedia, kebutuhan larva akan asam amino esensial yang sangat menentukan tingkat kelulusan hidup larva yang dipelihara pada unit-unit pembenihan. Disinilah fitoplankton berperan sebagai mata rantai dalam kehidupan perairan. Salah satu divisi pertumbuhan yang belum banyak diketahui masyarakat adalah divisi Clorophyta, terutama klas chlorophyceae yaitu Dunaliella salina. Di Negara-negara besar seperti Australia, Amerika dan Israel fitoplankton jenis Dunaliella salina telah dibudidayakan secara besar-besaran untuk menghasilkan -karoten (Isnansetyo dan Kurniastuty, 995: 8). Dunaliella salina dipilih untuk dikultur karena sifat hidupnya yang terhadap kisaran Korespondensi

2 A. Smith / Bimafika, 0,, -00 salinitas yang lebar, selain itu dapat digunakan untuk pakan zooplankton (Artemia, Brankialus) dan teripang. Spesies ini merupakan jenis lokal yang diperoleh dari telu Ambon bagian dalam dan telah berhasil diisolasi dan dikultur pada Balai Budidaya Laut Provinsi Maluku. Menurut (Mujiman dalam Makatipu, 99 : ) untuk kultur fitoplankton penggunaan media memegang peranan penting untuk media dapat digunakan air laut yang telah disaring dan disterilkan dimana unsur-unsur haranya diperkaya atau menggunakan media buatan yang diramu secara khusus, karena fitoplankton dikembangkan menurut dimensi volume sedangkan tumbuhan tingkat tinggi hingga saat ini masih dikembangkan dalam dimensi luas, dengan demikian penggunaan media tumbuh akan memberikan efisiensi bagi pengembangan fitoplankton. Mikroalga memperoleh nutrient dari air media di sekitarnya dengan jalan mengabsorbsi zat hara melalui membrane sel (Ukeles dalam Makatipu, 99 : ). Selain sebagai media tumbuh juga berperan sebagai pensuplai nutrisi baik makro nutrient. Unsur makro dibutuhkan untuk pertumbuhan dalam jumlah yang besar terdiri dari C, H, O, N, P, K, S dan Mg. Unsur mikro dibutuhkan oleh organisme dan jumlah sedikit dan berfungsi sebagai katalis atau untuk menjalankan fungsi khusus sebagai materi penyusun/pengatur tekanan osmotic. Kelompok ini terdiri atas Si, Zn, Cu, Mn, Co, Fe, Bo, Mo, Cl dan beberapa vitamin antara lain B, B, B (Okeles dalam Makatipu, 995 : 58). Menurut Round (Makatipu, 995 : 58) unsur P, N, S sebagai pembentuk protein, K berperan dalam metabolisme, Mg berperan dalam pembentukan butir-butir klorofil sedang fe perlu diberikan karena selain untuk pembentukan klorofil juga merupakan unsur yang penting dalam pernapasan. Bagi fitoplankton keberadaan vitamin cukup penting, karena berfungsi sebagai salah satu katalisator enzim pada proses metabolism. Memang tidak bisa dipungkiri bahwa hamper sebagian besar masyarakat belum mengetahui tentang cara kultur, ciri, manfaat dari fitoplankton maupun penggunaan media mana yang baik agar menghasilkan Dunaliella salina yang lebih banyak (dilihat berdasarkan kepadatan) untuk digunakan dalam kultur fitoplankton pada skala laboratorium. Diduga dengan perlak menggunakan beberapa media yang berbeda akan memberikan perbedaan terhadap pertumbuhan kepadatan fitoplankton (Dunaliella salina) dan diperoleh media yang terbaik. Hipotesis tersebut dapat ditulis sebagai berikut: H 0 Penggunaan media F dan media walney tidak berpengaruh terhadap pertumbuhan Dunaliella salina H Penggunaan media F dan media walney berpengaruh terhadap pertumbuhan Dunaliella salina Metode Penelitian Penelitian ini adalah tipe penelitian eksperimen guna melihat pengaruh penggunaan media terhadap pertumbuhan dan kepadatan Dunaliella salina (fitoplankton). Penelitian ini dilakukan pada Laboratorium Balai Budidaya Laut Provinsi Maluku. Mulai dilaksanakan pada Tanaggal Maret 8 April 006. Variabel dalam penelitian ini adalah variabel bebas: media F dan media walney, variabel terikat: pertumbuhan Dunaliella salina. Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini antara lain, pipet untuk mengambil dan memindahkan objek/inoculum dari biakan murni ke Erlenmeyer, Erlenmeyer, Cawan petri, Jarum Osse, Pemanas Bunsen, Autoclave, Mikroskop, Hemacytometer, Hand couter, Beaker Glass, thermometer, Plankton net, kertas lakmus, selang aerasi, batu timah, batu aerasi, Hand Refraktometer, dan Digital lux meter. Bahan-bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah: a. Fitoplankton (Dunaliella salina) sebagai objek. b. Media F Komposisi media F terdiri dari: Larutan I: - NaNO = 8. gram - NaH PO = 5. gram - FeCl 6H O =.5 gram - Na SiO 9H O = 5 gram Larutan II: Larutan mikro elemen: - CuSO 5H O = 0.98 gram - ZnSO H O =.0 gram - CoCl 6H O =.00 gram - MnCl H O = 8.00 gram - NaMoO H O = 0.6 gram Larutan III - Vitamin B dan B Campur larutan I, larutan II ke dalam liter air (gunakan ml media untuk liter aquades). Campurkan macam larutan 9

3 A. Smith / Bimafika, 0,, -00 dan tambahkan 900nml aquades dan 00 ml vitamin, media siap digunakan. c. Media Walney Komposisi media walney antara lain: Larutan I - NaNO = 00 gram - Na EDTA = 5 gram - H BO =.6 gram - NaH PO. H O = 0 gram - FeCl. 6H O =. gram - MnCl. H O = 0.6 gram Larutan II Larutan mikro elemen: - CuSO 5H O = 0.98 gram - ZnSO H O =.0 gram - CoCl 6H O =.00 gram - NaMoO H O = 0.6 gram Larutan III - Vitamin B dan B Campur larutan I, larutan II ke dalam liter air (gunakan ml media untuk liter aquades). Campurkan macam larutan dan tambahkan 900nml aquades dan 00 ml vitamin, media siap digunakan.. Tahap Pengambilan Sampel a. Fitoplankton ditangkap dengan menggunakan plankton net, dengan diameter mulut cm, panjang 00 cm, dan ukuran mata jarring 0.08 mm (80 mikron), kemudian dimasukkan ke dalam wadah Erlenmeyer, plankton yang diperoleh kemudian diperiksa dengan bant mikroskop (untuk proses identifikasi dan pemilihan jenis fitoplankton) dan dipilih jenis Dunaliella salina. b. Fitoplankton (Dunaliella salina) dibiarkan pada media agar untuk mendapatkan buakan murni.. Tahap Pengamatan di Laboratorium a. Sterilisasi Kultur skala laboratorium merupakan kultur fitoplankton yang murni dan mono spesies, pada tahap ini kesterilan atal, media kultur, dan tempat kultur sangat dibutuhkan. Sterilisasi dilakuakn terhadap alat-alat di laboratorium, seperti Erlenmeyer, cawan petri dan lainnya. Alat dibersihkan dengan sabun, bilas, rendam dengan larutan HCl selama jam, bilas dan sterilkan di dalam autoclave dengan suhu o C dan tekanan kg/cm selama 5 menit. b. Tahap pembuatan media - Tahap pertama pembuatan media adalah pembuatan media stok larutan seperti tercantum dalam bahan. - Tutup permukaan fles (Erlenmeyer) dengan alumunium foil dan ikat rapat dengan karet gelang. - Masukkan air media (Media F dan walney), ke dalam masing-masing Erlenmeyer (000 ml), tutup permukaan fles dengan alumunium foil dan ikat rapat dengan karet gelang. - Masukkan semua fles (Erlenmeyer) yang berisi media ke dalam autoclave untuk disterilkan selama 5 menit. - Pada tiap-tiap fles/erlenmeyer yang berisi media diberikan larutan vitamin ( ltr media dimasukkan 0.5 ml larutan vitamin). - Masukkan Dunaliella salina yang sebelumnya telah diinokulasikan pada media agar sebanyak 00 ml ke dalam masing-masing Erlenmeyer yang berisi 900 ml, hingga volume mencapai 000 ml. - Beri selang dan batu serasi, tutup dengan kapas dilapisi kain kasa dan alumunium foil. - Letakkan di rak kultur dan diberi lampu 0 watt (suhu 0 o C) Pengamatan dilakukan setiap hari setelah fitoplankton (Dunaliella salina) dimasukkan ke dalam media. Sebagai parameter pertumbuhan adalah bertambahnya jumlah fitoplankton (kepadatan) yang dihasilkan dan faktor pendukung yang turut diamati setiap hari dalam penelitan ini adalh ph, salinitas, intensitas cahaya dan suhu.. Perungan Kepadatan dan Pertumbuhan a. Perungan kepadatan dilakukan di bawah mikroskop dengan menggunakan haemacytometer dan hand counter dari awal masa kultur hingga akhir masa kultur setiap hari secara berkala untuk mengetahui masa puncak fitoplankton yang dikultur diung dengan rumus: N n 0 sel/ml Dimana: N = Jumlah sel fitoplankton/ml n = Jumlah sel pada stok haemacytometer b. Laju Pertumbuhan rata-rata adalah besarnya laju pertumbuhan yang diukur 9

4 A. Smith / Bimafika, 0,, -00 dari awal penelitian hingga hari dimana Dunaliella salina mencapai titik tertinggi. Laju pertumbuhan rata-rata dapat diung dengan rumus Fohh (dalam Sururi, 005 : 6). ln Wt ln W0 K t Dimana: K = Pertumbuhan rata-rata W = Jumlah puncak populasi t W = Jumlah populasi pada awal 0 t = waktu Perungan kepadatan/pertumbuhan puncak Dunaliella salina dilakukan setiap hari dan data yang digunakan adalah data saat jumlah populasi Dunaliella salina berada pada titik tertinggi (maksimal) selama penelitian. Analisa data hasil penelitian ini akan dianalisis dengan menggunakan uji F (farina) dengan menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan (tiga) ulangan, dengan taraf kepercayaan Untuk mencari perbedaan antara perlak dengan kriteria penerimaan hipotesis sebagai berikut: terima 0 F dan tolak H 0 jika F F. H tabel jika Hasil Penelitian Data yang diperoleh dari penelitian yang dilakukan adalah meliputi pola pertumbuhan harian, puncak pertumbuhan dan laju pertumbuhan spesifik Dunaliella salina.. Pola Pertumbuhan Harian Dunaliella salina Data hasil pengamatan pertumbuhan harian Dunaliella salina selama awal masa kultur hari 0 dapat dilihat pada analisa ragan Tabel berikut: Tabel. Analisa Ragan Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke 0 Sumber db JK KT F F tabel tn 9 Acak Total Keterangan: tn = tidak nyata Dari Tabel di atasdapat diketahui bahwa F perlak pada Hari ke 0 hasilnya tidak nyata. Pada pengamatan pertumbuhan Dunaliella salina hari ke dapat dilihat pada analisa ragam di Tabel. Tabel. Analisa Ragan Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumber d JK KT F F tabel b 5 ua n t n 9 Acak Total Keterangan: tn = tidak nyata Dari Tabel di atasdapat diketahui bahwa F. hal ini menunjukkan perlak dengan media yang berbeda tidak berpengaruh terhadap pertumbuhan Dunaliella salina pada hari ke. Tabel. Analisa Ragan Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total Tabel di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke analisis Tabel. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total

5 A. Smith / Bimafika, 0,, -00 Tabel di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke analisis Tabel 5. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total Tabel 5 di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke analisis Tabel 6. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke 5 Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total Tabel 6 di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke 5 analisis Tabel. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke 6 Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total Tabel di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke 6 analisis Tabel 8. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total Tabel 8 di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke analisis Tabel 9. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke 8 Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total Tabel 9 di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke 8 analisis Tabel Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke 9 Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total

6 A. Smith / Bimafika, 0,, -00 Tabel 0 di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke 9 analisis Tabel. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke 0 Sumb d JK KT F F tabel ** Acak Total Tabel di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke 0 analisis Tabel. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumbe d JK KT F F tabel r b ** Acak Total Tabel di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke analisis Tabel. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumbe d JK KT F F tabel r b ** Acak Total Tabel di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke analisis Tabel. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumbe d JK KT F F tabel r b 5 u an ** 9 Acak Total Tabel di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke analisis Tabel 5. Analisa Ragam Data Pertumbuhan Dunaliella salina pada Hari ke Sumber d JK KT F F tabel b 5 u an ** 9 Acak Total Tabel 5 di atas menunjukkan bahwa F hal ini berarti pada hari ke analisis. Puncak Pertumbuhan Dunaliella salina Hasil pengamatan terhadap puncak pertumbuhan Dunaliella salina selama penelitian ini diperoleh perlak yang mempunyai puncak pertumbuhan tertinggi adalah perlak MW ( 6 0 ) kemudian diikuti perlak MF (.66 0 ) dan perlak MO ( 0 ). 9

7 A. Smith / Bimafika, 0,, -00 Tabel 6. Analisa Ragam Data Puncak Pertumbuhan Dunaliella salina Sumb d JK KT F Hit F Tab ** Galat Total F Tabel 6 di atas menunjukkan bahwa. Hal ini berarti perlak dengan pemberian media F dan media walney memberikan pengaruh yang sangat berbeda nyata ( P 0. 0) terhadap puncak pertumbuhan Dunaliella salina.. Laju Pertumbuhan Rata-rata Dunaliella salina Hasil pengamatan terhadap laju pertumbuhan rata-rata Dunaliella salina selama penelitian, menunjukkan perlak yang memberikan hasil tertinggi adalah perlak MW ( 6 0 ) kemudian diikuti perlak MF (.66 0 ) dan perlak MO ( 0 ). Pembahasan hasil penelitian yaitu tentang pola pertumbuhan harian Dunaliella salina, puncak pertumbuhan dan pertumbuhan rata-rata. Pertumbuhan makhluk hidup antara lain dipengaruhi oleh jenis, kualitas dan ktitas dari makanan/nutrisi yang mereka makan (Sururi, 005: ). Untuk penelitian ini Dunaliella salina yang diamati menggunakan media F dan walney didasarkan pada dugaan apakah ada pengaruh penggunaan media yang berbeda terhadap pertumbuhan Dunaliella salina. Jumlah Dunaliella salina yang banyak dapat dilihatdari hasil penelitian yang telah diperoleh tampak bahwa perlak B mempunyai laju pertumbuhan yang baik jika dibandingkan dengan perlak yang lain. Laju pertumbuhan bagi Dunaliella salina bukan dipengaruhi pertambahan berat, melainkan oleh pertambahan jumlah individu. Pertambahan jumlah Dunaliella salina mempengaruhi laju pertumbuhan Dunaliella salina pada setiap sat waktu di setiap perlak. Terlihat dari grafik bahwa Dunaliella salina umumnya sudah mulai tumbuh sejak hari pengamatan, dan densitas puncaknya dicapai antara hari ke 6 sampai ke 8. Pertambahan Dunaliella salina yang dikultur selama penelitian telah berkembang biak dengan memanfaatkan nutrisi yang ada pada ketiga media baik media MF (F), MW (walney) maupun media MO (kontrol). Pada media F, pertumbuhan Dunaliella salina diawali dengan fase persiapan, dimana pertumbuhan sel yang relatif kecil (.) hasil analisa ragam hari ke, diperoleh F F. tabel Hal ini berarti perlak dengan pemberian media yang berbeda pada hari ke hasilnya tidak nyata (tidak ada perbedaan). Diikuti fase eksponensial pada hari ke sampai hari ke 8, yang ditunjukkan denagn kepadatan/densitas yang tinggi pada hari ke 8 (.66 0 cell/ml). Pada fase kedua ini Dunaliella salina mengalami pembiakan secara cepat dan menghasilkan peningkatan sel secara eksponensial. Selama fase ini terjadi aktivitas metabolism sel yang tinggi hal ini dapat dilihat dari densitas sel yang dihasilkan/milinya, hingga terjadi pembelahan sel dengan laju pertumbuhan sel yang maksimal. Menurut Malole (990:) pembelahan sel yang terjadi pada kultur sel adalah tipe pembelahan mitosis, dimana masing-masing anak sel memperoleh kromosom sel induk (diploid) karena menjelang pembelahan kromosom sel induk memiliki dua kali lipat jumlah normal pada fase ini perlak mencapai puncak pertumbuhan. Fase pasca eksponensial/logaritmik terjadi mulai hari ke 9 sampai dengan hari ke dengan densitas/kepadatan populasi yang turun drastis. Hingga pada hari ke dan fase kematian terjadi, dimana laju kematian masih cepat dari laju reproduksi, dan jumlah sel menurun secara geometrik. Dunaliella salina yang tumbuh dalam media walney adalah yang tertinggi pertumbuhannya, yaitu mencapai densitas maksimum rata-rata, yaitu antara hari ke 6, dan 8. Dengan jumlah sel pada hari ke 6 adalah sel/ml. Hari ke 85 0 sel/ml dan hari ke sel/ml. pada media ini fase persiapan (istirahat) terjadi setelah penambahan inoculum ke dalam media kultur.kepadatan hanya sedikit mengalami perubahan, dari hari ke 0 ( 6 0 ) ke hari (. 0 ). Pada fase ini sel mengalami penyesuaian terhadap lingkungan kultur dan 98

8 A. Smith / Bimafika, 0,, -00 memasuki periode pertumbuhan lambat (Lag Periode) selama - jam (Malole, 990:). Fase eksponensialnya teroutus pada hari ke 8, dan mulai memasuki fase stasioner pad hari ke 9. Media MO sebagai kontrol, yang hanya berisi air laut memberikan pola pertumbuhan Dunaliella salina yang sangat baik. Jika dibandingkan dengan kedua media terdahulu. Walaupun waktu yang dibutuhkan untuk menumbuhkan Dunaliella salina pada fase lag hasilnya relatif sama. kepadatan maksimum yang dicapai pada fase eksponensial lebih cepat dicapai media MO yaitu pada hari ke, karena habisnya nutrisi yang bisa dikonsumsi Dunaliella salina pada perlak ini menyebabkan tingkat mortalitas yang tinggi bahkan mencapai fase kematian (death phase), tetapi jumlah sel maksimum yang mampu ditumbuhkan relatif sangat kecil ( 0 sel/ml) hari pertama, kedua dan keempat merupakan waktu dimana Dunaliella salina tumbuh dengan cepat pada media ini. Jumlah sel Dunaliella salina terbanyak yang mampu tumbuh pada media walney dapat dipastikan berhubungan dengan nutrisi, jumlah dan kemamp Dunaliella salina mengabsorbsi zat yang terkandung media, sehingga menunjang proses pertumbuhan yang lebih baik. Pada F ketidakmamp Dunaliella salina mengabsorbsi zat yang dikandung media F menyebabkan tingkat pertumbuhan yang rendah. Fase akhir dari pertumbuhan yang dilewati adalah fase kematian dimana laju kematian lebih cepat dari laju reproduksi. Penurunan kepadatan sel sebagai parameter pertumbuhannya ditanda dengan perubahan kondisi optimum yang dipengaruhi oleh temperature =, intensitas cahaya, ph air dan jumlah hara yang ada (Isnansetyo dan Kurniastuty, 995). Hal ini dapat diamati secara visual dengan memperhatikan warna media air kultur secara cermat (Kadek, et all, dalam Aninim, 00: 5). Pada perlak MF warna media kultur yang pada awalnya berwarna bening pada akhir kultur berubah warna menjadi hijau pucat, coklat kekuningan, pada media MW warna media kultur yang awalnya berwarna bening pada akhir kultur berubah menjadi hijau, pucat kekuningan, dan pada media MO awalnya bening pada akhir kultur berubah menjadi putih suram. Dari hasil pengujian statistik (RAL) terhadap punck kepadatan sel Dunaliella salina (dari ke ulangan) pada ketiga media menghasilkan nilai F Hit =.99; F tab 0.05= ; F tab 0.0=. Nilai ini menunjukkan bahwa jenis media berpengaruh sangat nyata pada pertumbuhan populasi Dunaliella salina. Dunaliella salina di dalam media walney mencapai puncak lebih cepat hari dan bertahan lama, serta kepadatan maksimalnya lebih tinggi, sedangkan di dalam media F puncak kepadatan dicapai lebih lama dengan kepadatan yang lebih rendah. Perbedaan sangat nyata terjadi bila dibandingkan antara kedua media ini dengan media MO sebagai kontrol. Perbedaan ini terjadi terutama pada densitas maksimum sel yang jauh lebih rendah. Kesimpulan dan Saran Kesimpulan Dunaliella salina tumbuh lebih baik di dalam media MW (walney), hal ini dapat dilihat dari pertumbuhan perharinya yang menghasilkan densitas cell yang tinggi dibandingkan media MF (F) dan media MO (kontrol). Pertumbuhan Dunaliella salina, umumnya sudah terjadi setelah hari ke pengamatan, dan mencapai fase logaritmik dengan densitas sel puncak pada hari ke 6,,8. Saran Untuk pengembangan kultur fitoplankton terutama Dunaliella salina sebaiknya menggunakan MW (walney) karena mengingat setia jenis bentuk, dan sifat kehidupan tiap-tiap fitoplankton itu berbeda, sehingga penggunaan media tumbuh harus disesuaikan dengan sifat dari setiap fitoplankton yang akan diukur. DAFTAR PUSTAKA Anonim, 00. Standar Operasional Prosedur Divis Pakan Alami Lolal Budidaya Laut Ambon. Tidak Diterbitkan., 00. Budidaya Fitoplankton dan Zooplankton. Balai Budidaya Laut Lampung. Dirjen Perikanan Budidaya Dep. Kelautan dan perikanan. Hadi, Utomo. R.S., 99. Mikrobiologi Dasar dalam Praktek. Laboratorium Mikrobiologi Fak- MIPA, IPB, Jakarta: Gramedia Pustaka Utama. Isnansetyo A., kurniastuty, 995. Teknik Kultur Phytoplankton dan Zooplankton. Penerbit Kanisius, Yogyakarta. 99

9 A. Smith / Bimafika, 0,, -00 James W. Nybakken, 998. Biologi Laut Suatu Pendekatan Ekologis. Jakarta: Penerbit PT Gramedia. Kimbal. W.J., 99. Biologi Edisi ke 5 Jilid I. Penerbit Erlangga, Jakarta. Kurniastuti dan Julinasari Pertumbuhan Alga Dunaliella salina pada Media Kultur yang Berbeda dalam Skala Masal, dalam Buletin Budidaya Laut Nomor 9. Lampung: BBL. Latuihamallo, M. 98. Studi Ekologi Komunitas Zooplankton di Perairan Teluk Ambon, Skripsi Ambon: Fakultas Perikanan Universitas Pattimura. Malole, M.B.M., 990. Kultur Sel dan Jaringan Hewan. Depdikbud Dirjen Pendidikan TInggi Pusat antar Universitas Bioteknologi. IPB. Makatipu, P.C., S.A.P. Dwiyono dan Pradina, 995. Pola Pertumbuhan Navicula pada Media yang Berbeda. Perairan Maluku dan Sekitarnya. P.P Jakarta: LIPI. Makatipu, P.C., 99. Isolasi dan Penyediaan Jasad Oakan Navicula Secara Masal di Laboratorium. Majalah Ionwarta, Vo. XX: -. Jakarta: LIPI. Murni., L.G., 00. Peranan Pakan Alami dalam Menunjang Budidaya Laut. Makalah, Disampaikan pada Diklat Nasional Kimia Kelautan, Ambon: Universitas Pattimura. Nontji. A, 99. Pengantar Tentang Plankton serta Kisaran Kelimpahan Plankton Predominan di Sekitar Pulau Jawa dan Bali. Pusat Penelitian dan Pengembangan Oseanografi Jakarta:LIPI. Prawiroatmodjo. D, 99. Pendidikan Lingkungan Kelautan. Penerbit Rhineke Cipta. Redjeki dan Ismail, 99. Mikro Algae Sebagai Langkah Awal Budidaya Ikan Laut. Disampaikan salam Seminar Bioteknologi Mikro Alga. Bogor. 0- Februari 99. Salim Peter dan Yenni Salim, 995. Kamus Bahasa Indonesia Kontemporer. Jakarta: Modern English Press. Setioso. H, 998. Kamus Oceanografi. Jogjakarta: Gajah Mada University Press. Seipala, 980. Konsep-konsep Statistik dalam Penelitian. Fakultas Pertanian, Ambon: Universitas Pattimura. Suriawiria, U Pengantar Mikrobiologi Umum. Angkasa. Bandung. Sururi. A., 005. Pengaruh Pemberian Cholera sp pada Kepadatan Berbeda Terhadap Pertumbuhan Copipoda (Cyclops sp) dalam Skala Lab. Skripsi Fak-Perikanan dan Ilmu Kelautan Semarang: Universitas Diponegoro. Tjitrosoepomo. G, 989. Taksonomi Tumbuhan (Schyzophyta, Thalophyta, Bryophyta, Pterydophyta). Yogyakarta: Penerbit Gajah Mada University Press. 00