Laporan praktikum biomedik 3 BM 506 METABOLISMEGLUKOSA, UREA DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTOFOTOMETER) Kelompok : Melya susanti Sunarti Hari/tanggal

dokumen-dokumen yang mirip
METABOLISMEGLUKOSA, UREA DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTOFOTOMETER)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI) Meutia Atika Faradilla ( )

METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM BIOMEDIK IV. : Metabolisme Glukosa, Urea dan Trigliserida (Teknik Spektrofotometri)

LAPORAN PRAKTIKUM III PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRATIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, dan TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI) Yunita Wannur Azah

METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM BIOMEDIK IV

1. Dapat mengerti prinsip-prinsip dasar mengenai teknik spektrofotometri (yaitu prinsip dasar

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN PROTEIN (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI) Yuliandriani Wannur ( )

LAPORAN PRAKTIKUM Metabolisme Glukosa, Urea dan Trigliserida (Teknik Spektrofotometri)

LAPORAN PRAKTIKUM IV METABOLISME GLUKOSA, UREA DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM 04 METABOLISME & SPEKTROFOTOMETRI

Tourniquet Swab alkohol Tempat pembuangan yang tajam Jarum EDTA Tempat pembuangan yang kena darah

Laporan Praktikum Biomedik 3 BM 506 Metabolisme Glukosa, Urea Dan Trigliserida (Teknik Spektofotometer)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN PROTEIN (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI) BINAYANTI NAINGGOLAN ( )

METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

Praktikum metabolisme glukosa, urea dan trigliserida (Tehnik Spektrofotometri)

METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME I (GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA) DAN SPEKTROFOTOMETRI

BM 506 KETRAMPILAN DASAR LABORATORIUM LAPORAN PRAKTIKUM PRAKTIKUM 04 METABOLISME GLUKOSA, TRIGELISERIDA DAN UREA

METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA

METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME DAN SPEKTROFOTOMETRI

LAPORAN PRAKTIKUM 4. Metabolisme Glukosa, Urea dan Triglisireda (Teknik Spektrofotometri)

Laporan Praktikum Biomedik 3 BM 506 Metabolisme Glukosa, Urea Dan Trigliserida (Teknik Spektofotometri)

LAPORAN PRAKTIKUM 3 METABOLISME GLUKOSA TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI SISKA MULYANI (NIM: ) HARI/TANGGAL PRAKTIKUM : KAMIS / 4 Agustus 2016

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME DAN SPEKTROFOTOMETRI

LAPORAN PRAKTIKUM 4 METABOLISME GLUKOSA, UREA DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETER) Hari/Tanggal : Kamis/11 Oktober 2012 :

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, TRIGLISERIDA, DAN UREA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN PROTEIN (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTOFOTOMETRI)

Laporan Praktikum METABOLISME GLUKOSA, UREA DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

Metabolisme Glukosa, Urea dan Trigliserida (Teknik Spektrofotometri)

LAPORAN PRAKTIKUM 4 BM 506 METABOLISME GLUKOSA,UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEHNIK SPEKTROFOTOMETRI)

Hasil Praktikum dan Kesimpulan. Tabel 1a: Urea - Data untuk kaliberasi Doubling Dilution. Konsentrasi Stok Urea = 100 mg/dl

METABOLISME GLUKOSA, UREA DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTOFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM 3 METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, UREA, TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME GLUKOSA, TRIGLISERIDA, DAN UREA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

Urea - data untuk kalibrasi doubling dilution

Soal Latihan UTS Mata Kuliah Ketrampilan Dasar Laboratorium Biomedik 2011

Hasil Doubling Delution Glukosa

PENENTUAN KADAR PROTEIN SECARA SPEKTROFOTOMETRI

LAPORAN PRAKTIKUM 03 METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA DENGAN TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI

LAPORAN PRAKTIKUM 03 METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA DENGAN TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI

Nilai Absorbance Larutan Urea (Doubling Dilution)

LAPORAN PRAKTIKUM 3 METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

MEMBANDINGKAN METABOLISME TRIGLISERIDA ANTARA KONSUMSI MIE AYAM DAN LONTONG PECAL

METABOLISME GLUKOSA, UREA, DAN PROTEIN (TEKNIK SPEKTROFOTOMETRI)

MEDAN, 15 DESEMBER Oleh : ERNAWATI SEMBIRING DORRA RIBTA ALAM MARA IMAM TAUFIQ SIREGAR

BAB IV ANALISIS DENGAN SPEKTROFOTOMETER

HASIL PRAKTIKUM METABOLISME II Perbedaan Kadar Trigliserida Pada Pria Dan Wanita Setelah Mengkonsumsi Kuning Telur

BAB IV HASIL PENGAMATAN

: Kirana patrolina sihombing

LAPORAN PRAKTIKUM TEKNIK DASAR KULTUR JARINGAN

: Kirana patrolina sihombing

laporan praktikum penentuan kadar protein metode biuret

PENDAHULUAN. Gambar 1 Ilustrasi hukum Lambert Beer (Sabrina 2012) Absorbsi sinar oleh larutan mengikuti hukum lambert Beer, yaitu:

LAPORAN PRAKTIKUM METABOLISME II EFEK SUSU KEDELAI TERHADAP PENURUNAN KADAR TRIGLISERIDA DARAH

1. Tujuan Menentukan kadar kafein dalam sample Dapat menggunakan spektofotometer uv dengan benar

Jumlah point = 75 (10 poin per soal 5 min, 5 poin per soal 2 min dan 20 poin per soal 10min )

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Waktu pelaksanaan penelitian pada bulan Juni 2013.

LAPORAN PRAKTIKUM TEKNIK DASAR : PIPET, TIMBANGAN, PEMBUATAN LARUTAN

Spektrofotometer UV /VIS

Penentuan Kadar Teofilin dalam Sediaan Tablet Bronsolvan dengan Metode Standar Adisi menggunakan Spektrofotometer UV-Visible

LAPORAN PRAKTIKUM BIOKIMIA. Penentuan Kadar Glukosa Darah

BAB III METODE PENELITIAN. Jenis penelitian ini adalah penelitian Deskriptif Analitik yang berdasarkan

TUGAS II REGULER C AKADEMI ANALIS KESEHATAN NASIONAL SURAKARTA TAHUN AKADEMIK 2011/2012

Hukum Dasar dalam Spektrofotometri UV-Vis Instrumen Spektrofotometri Uv Vis

A. Judul B. Tujuan C. Dasar Teori

PERCOBAAN 1 PENENTUAN PANJANG GELOMBANG MAKSIMUM SENYAWA BAHAN PEWARNA

Grafik Serapan Standar McFarland Scale pada Panjang Gelombang 500nm

LAPORAN PRAKTIKUM TEKNIK DASAR : PIPET, TIMBANGAN, PEMBUATAN LARUTAN

Laporan Praktikum 3. Praktikum 3 : ph meter, Persiapan larutan penyangga, Pengenceran stok glukosa. Oleh : Rebecca Rumesty L dan Jimmy

LAPORAN PRAKTIKUM TEKNIK DASAR : PIPET, TIMBANGAN, PEMBUATAN LARUTAN

BAB II TINJAUAN PUSTAKA. absorbansi dengan cara melewatkan cahaya dengan panjang gelombang tertentu

Spektrofotometri uv & vis

LAPORAN PRAKTIKUM 2 PH METER, PERSIAPAN LARUTAN PENYANGGA

LAPORAN PRAKTIKUM TEHNIK DASAR : PENGGUNAAN PIPET, TIMBANGAN DAN PEMBUATAN LARUTAN

ACARA IV PERCOBAAN DASAR ALAT SPEKTROFOTOMETER SERAPAN ATOM

BAB V METODOLOGI. 1.1 Alat dan bahan yang digunakan Alat yang digunakan. 1. Spektrofotometri Visible. 2. Magnetic Stirer. 3.

A. Judul Percobaan : Penentuan Kadar Glukosa Darah. B. Mulai Percobaan : Senin, 11 November 2013 C. Selesai Percobaan : Senin, 11 November 2013

LAPORAN PRAKTIKUM TEKNIK DASAR : PIPET, TIMBANGAN, PEMBUATAN LARUTAN

ANALISIS DUA KOMPONEN TANPA PEMISAHAN

Laporan Praktikum 3. ph Meter dan Persiapan Larutan Penyangga

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Pelaksanaan penelitian ini dilakukan pada bulan Juni 2013 dan

Laporan Praktikum ph Meter, Persiapan Larutan Penyangga

III. METODOLOGI PERCOBAAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan Januari 2015 sampai Juni 2015 di

BAKTERI PRAKTIKUM KULTUR JARINGAN

GAMBARAN KADAR TRIGLISERIDA (METODE GPO- PAP) PADA SAMPEL SERUM DAN PLASMA EDTA

BAB III METODE PENELITIAN

LAPORAN PRAKTIKUM 03 ph METER DAN PERSIAPAN LARUTAN PENYANGGA

Lampiran 1. Prosedur Pengukuran Kadar Kolesterol dan Trigliserida Darah Itik Cihateup. a. Menyiapkan itik Cihateup yang akan diambil darahnya.

BAB III METODOLOGI PENELITIAN. Jenis penelitian yang digunakan adalah penelitian eksperimen.

III. METODOLOGI PENELITIAN. Penelitian ini dilakukan pada bulan Juni-November Penelitian ini

Transkripsi:

Laporan praktikum biomedik 3 BM 506 METABOLISMEGLUKOSA, UREA DAN TRIGLISERIDA (TEKNIK SPEKTOFOTOMETER) Kelompok : Melya susanti Sunarti Hari/tanggal : Selasa, 17 maret 2015 TUJUAN PRAKTIKUM i) Mengerti prinsip prinsip dasar teknik spektofotometri (yaitu prinsip dasar alatnya, kuvet, standard, blanko, serta Hukum Beer-Lambert dll). ii) Latihan pembuatan dan penggunaan larutan stok glukosa dan urea iii) Memperoleh data kadar glukosa, trigliserida dan urea darah iv) Latihan pembuatan dan interpretasi grafik v) Persiapan untuk praktikum Metabolisme II untuk mendesain dan melakukan percobaan yang berdasarkan teknik-teknik pratikum ini I. PRINSIP DASAR SPEKTROFOTOMETRI Spektrofotometri adalah suatu metode analisis yang berdasarkan pada pengukuran serapan sinar monokromatis oleh suatu lajur larutan berwarna pada panjang gelombang yang spesifik dengan menggunakan monokromator prisma atau kisi difraksi dan detector vacuum phototube atau tabung foton hampa.metode ini berhubungan dengan penggunaan Hukum Lambert,dimana konsentrasi dari suatu cairan/larutan mempengaruhi banyaknya cahaya yang melewati suatu larutan.alat yang digunakan adalah spektrofotometer, yaitu sutu alat yang digunakan untuk menentukan suatu senyawa baik secara kuantitatif maupun kualitatif dengan mengukur transmitan ataupun absorban dari suatu zat cair serta fungsi dari konsentrasi. II. LATIHAN PEMBUATAN LARUTAN STOK Larutan stok glukosa: 50 ml larutan glukosa 1, 5 g/l (150mg / dl) Jumlah bubuk glokosa yang di butuhkan 0,075g Larutan stok urea: 10 ml larutan urea 1,0g/L (100mg / dl) Jumlah bubuk urea yang di butuhkan 0,01g

ALAT DAN BAHAN 1. Glukosa 4. Gelas beker 2. Urea 5. Tabung reaksi 3. Air Cara Kerja 1. Timbang kadar glukosa sebanyak 0,075 g didalam wadah ( gelas beker) menggunakan timbangan digital 2. Tambahkan aquades sebanyak 49, 925 ml, kemudian di aduk sampai semua glukosa larut 3. Cara yang sama untuk pemebuatan larutan stok urea, urea yang dibutuhkan 0,01gr ditambahkan aquades sampai 10ml Larutan stok ini akan digunakan dalam praktikum pengenceran untuk kurva kalibrasi III. PENGENCERAN UNTUK KURVA KALIBRASI UREA DAN GLUKOSA DENGAN MENGGUNAKAN LARUTAN STOK Alat dan bahan: 1. Larutan stok (urea dan glukosa) 4. Pipet mohr 2. Aquades 5. Rak/ tempat tabung reaksi 3. Tabung reaksi 6. pengaduk 4. Spektrofotometer Cara Kerja: 1 1. Membuat perhitungan untuk menentukan jumlah larutan stok yang dipakai agar didapatkan konsentrasi pengenceran yang diminta sesuai penuntun. 2. Lakukan pengenceran berdasarkan perhitungan yang sudah dibuat Pada praktikum ini memakai larutan stok glukosa dan urea yang sudah di siapkan sebelumnya, pengenceran dilakukan dalam beberapa konsentrasi 80mg/dl standar glukosa dilarutkan hingga 10 ml dengan H2O V1. N1 = V2.N2 x. 150 = 10. 80 x = 800/150; x = 5, 3334 ml Dibutuhkan 5,334 ml larutan stok glukosa dan 4,666 ml Aquades

Perhitungan pengenceran yang lain dirangkum dalam tabel pengenceran larutan standar Data hasil perhitungan untuk pengenceran Pengenceran Larutan Standar glukosa Nomor Larutan Jumlah zat Jumlah Volume akhir standar terlarut pelarut I 80mg/dl 5,3334 ml 4,666 ml 10 ml II 90mg/dl 6 ml 4 ml 10 ml III 100mg/dl 6,667 ml 3,333 ml 10 ml IV 110mg/dl 7,33 ml 2,667 ml 10 ml V 120mg/dl 8 ml 2ml 10 ml 3. Menyiapkan larutan diatas untuk selanjutnya dianalisa dengan spektrofotometer a. Siapkan 7 buah kuvet di dalam wadah kuvet, 1 kuvet untuk blank, 1 kuvet untuk standar, 5 kuvet untuk sampel Banyak Kuvet Yang Disiapkan Untuk Spektrofotometri Jenis reagen blanko standar sampel Reagen glukosa 1000µl 1000µl 1000µl Larutan standar - 10µl - 80mg/dl - - 10µl 90mg/dl - - 10µl 100mg/dl 10µl 110mg/dl 10µl 120mg/dl 10µl b. Hidupkan spektrofotometer, kuvet yang pertama kali dimasukkan adalah kuvet blanko, tekan autozero, kmudian akan muncul nilai absorbansi nol pada layar spektrofotometer c. Kemudian ukur larutan standar d. Setelah itu masukkan kuvet sampael 100mg/dl, catat panjang gelombang yang menunjukkan absorbansi larutan.

e. Kemudian baru diukur tiap sampel yang akan diukur absorbansinya secara bergantian, f. Print hasil pengukuran absorbansi tiap larutan yang akan dianalisa Hasil Persiapan Gelombang Maksimal Glukosa Didapatkan λ = 479nm pada konsentrasi 100mg/dl, panjang gelombang ini dpakai untuk mengukur absorbansi larutan standar yang lain, yang hasilnya terdapat pada table dibawah dan niali absorbansi 100mg/dl pada λ = 479nm yaitu 0,535 dipakai sebagai absorbansi standar. Tabel 1a: Hasil Pengukuran Absorbansi Pengenceran Untuk Kurva Kalibrasi dengan λ = 479nm Mg/dl Konsentrasi Absorbansi 80 35,70 0,191 90 39,43 0,211 100 100 0,5355trtyg 110 58,88 0,315 120 42,24 0,226 blanko - - standar - 0,535 Konsentrasi stok glukosa = 150mg/dl Untuk mendapatkan konsentrasi glukosa dipaki rumus Konsentrasi 80mg/dl = 0,191/0,535 x 100 = 35, 70

ABSORBANSI Gambar 1a: Hasil Kurva Kalibrasi Pengenceran Larutan Stok Glukosa 0.6 0.5 kurva kalibrasi pengenceran larutan stok glukosa 0.4 0.3 0.2 0.1 0 y = 0.0522x + 0.0637 R² = 0.3104 0 2 4 6 8 KONSENTRASI Series1 Linear (Series1) Kesimpulan grafik 1.a: 1. Dari grafik, terlihat bahwa kurva absorbansi dan konsentrasi tidak menunjukkan garis lurus, hal ini menunjukkan bahwa kurva tidak memenuhi hukum lambert beer dimana Nilai absorbani suatu larutan akan tinggi pada konsentrasi larutan yang tinggi.dan akan semakin rendah Nilai absorbansi pada konsentrasi larutan yang lebih kecil. 2. Dari kurva di atas hanya 1 nilai absorbansi yang membentuk garis linear yaitu larutan ke 4, hal ini menunjukkan pengenceran larutan ke-4 dilakukan dengan baik 3. Secara keseluruhan kurva diatas menunjukkan hasil yang tidak sesuai dengan yang diharapkan bisa terjadi karena pengenceran larutan yang tidak sesuai penuntun 4. Keasalahan dalam penenceran bisa karena pembuatan larutan stok yang tidak tepat atau tehnik pengenceran yang tidak teliti Hasil Persiapan Gelombang Maksimal Urea Didapatkan λ = 689,5nm pada konsentrasi 40mg/dl, panjang gelombang ini dpakai untuk mengukur absorbansi larutan standar yang lain. Nilai absorban larutan 40mg/dl pada panjang gelombang λ = 689,5nm dipakai sebagai absorban standar yaitu 0,144, konsentrasi yang didapatkan dipakai sebagai konsentrasi standar.

ABSORBANSI Tabel 1b: Hasil Pengukuran Absorbansi Pengenceran Untuk Kurva Kalibrasi Konsentrasi stok urea = 1,0mg/dl Mg/dl Konsentrasi Absorbansi 20 38,611 0,139 30 72,22 0,260 40 40 0,144 50 59,72 0,215 60 52,78 0,190 blanko - - standar - 0,144 Rumus untuk mendapatkan Nilai konsentrasi sampel Konsentrasi 20mg/dl= 0,139/0,144 x 40 = 38,611 Gambar 1b : Hasil Kurva Kalibrasi Pengenceran Urea 0.3 0.25 0.2 0.15 0.1 0.05 0 kurva kalibrasi larutan stok urea y = 0.0303x + 0.0518 R² = 0.4008 0 1 2 3 4 5 6 7 KONSENTRASI Series1 Linear (Series1) Kesimpulan gambar 1b: 1. Terlihat pada kurva tidak satupun Nilai absorbansi yang membentuk garis lurus, hal ini menunjukkan bahwa hasil praktikum tidak sesuai dengan hukum lambert beer, karena pada kurva tidak terlihat hubungan semakin tinggi konsentrasi suatu larutan akan menunjukkan Nilai absorbansi yang semakin besar

2. Kurva kalibrasi pada praktikum ini menunjukkan Nilai R=0,0317 jauh dari Nilai 1, bearti hasil praktikum ini tidak akurat 3. Hasil paraktikum yang tidak sesuai dengan hokum lambert beer bias karena kesalan dalam pengenceran, baik keslahan dalam membuat larutan stok, atau kesalan praktikan dalam melakukan pengenceran Protap pemeriksaan glukosa, protein dan urea menggunakan spektrofotomeri : GLUKOSA PROTEIN UREA volume reagensia kit 1000µl reagensia glukosa 1000µl reagensia 1000µl reagensia A, inkubasi pertama 1000µl reagensia B volume sampel atau standard 10µl 10µl 10µl konsentrasi standard 100mg/dl 200mg/dl 40mg/dl periode dan temperatur inkubasi 10 min @ 37 C 10 min @ 37 C 5 min @ 25 C ** 2X** periksa pada λ = 500nm 530nm 600nm Tabel 3a: Data Hasil Absorbansi Urea, Glukosa, Dan Trigliserida Dari Plasma Darah Praktikan Glukosa Urea Trigliserida kirana yunita kirana yunita Kirana yunita Absorban 0,225 pada - - 0,167 pada λ 0,313 0,241 λ = 500nm = 600 nm Absorban 0.197 pada λ = 479nm 0,311 pada λ = 689,5nm Kurva 1a 36,82 - - Kurva 1b - - 86,38 Rumus kit 90,36 - - 127,23 205,92 158,5 52

- Perhitungan Konsentrasi Glukosa Sesuia Kurva Kalibrasi sampel /absorban standar pada λ = 479nm x konsentrasi standar kit = 0,197/0,535x100 = 36,82mg/dl - Perhitungan Konsentrasi Glukosa Sesuai Kit Konsentrasi = absorban sampel/absorban standar pada λ = 500nm x konsentrasi standar kit = 0,225/0,249x100 = 90, 36 - Perhitungan Konsentrasi urea Sesuai Kurva Kalibrasi Konsentrasi = absorban sampel /absorban standar pada λ = 689,5nm x konsentrasi standar kit = 0,311/0,144 x40 = 86,38mg/dl - Perhitungan Konsentrasi Glukosa Sesuai Kit Konsentrasi = absorban sampel/absorban standar pada λ = 600nm x konsentrasi standar kit = 0,167/0,105 x80 = 127,23mg/dl IV. ABSORBANSI BERBAGAI PENGENCERAN GLUKOSA DENGAN DOUBLING DAN DESIMAL DILUTION Larutan glukosa yang sudah di encerkan dengan doubling dan decimal dilution di ukur absorbansinya dengan spektofometer pada λ = 479nm dan dicari konentrasinya menggunakan absorbansi standar pada λ = 479nm Tabel 4a: Data hasil pengenceran glukosa desimal dilution (Konsentrasi stok glukosa 150 mg/dl) Pengenceran Konsentrasi yang Konsentrasi yang di Absorbansi diprediksi dapat 0,1X 15 0,259 48,41 0,01X 1,5 0,221 41,30 0,001X 0,15 0,023 4,29 0,3X 5 0,119 22,24 0,03X 0,5 0,272 50,84 0,003X 0,05 0,189 35,32

ABSORBANSI Gambar 4a: Kurva Kalibrasi Decimal Dilution kurva kalibrasi desimal dilution glukosa pada λ = 479nm 0.3 0.2 y = 0.0175x + 0.0846 R² = 0.1183 0.1 0 0 1 2 3 4 5 6 7 8 KONSENTRASI Series1 Linear (Series1) Kesimpulan : 1. Kurva dari hasil praktikum ini tidak membentuk garis linear, tidak menunjukkan hubungan peninektan nilai absorbansi pada peningkatan konsentrasi suatu larutan 2. Kurva dari hasil praktikumini tidak sesuai dengan hukumlambert beer 3. Kesalan bisa pada praktikan yanga slah adalam melakukan pengenceran baik perhitungn maupun tehnik pengenceran yang tidak teliti,kesalahan pada proses menyiapkan larutan kedalam kuvet, atau pada proses pengukuran dengan spektofotometer yang lupa di blank sebelum mengukur larutan berikutnya. Tabel 4b. Data Hasil pengenceran glukosa doule dilution (Konsentrasi stok glukosa 150 mg/dl) Faktor Konsentrasi yang Absorbansi Konsentrasi yang diprediksi didapat 2 75 0,136 25,42 4 37.5 0,088 16,45 8 18.75 0,285 53,27 16 9.375 0,258 48,22 32 4,687 0,188 35,14 64 2.343 0,196 36,64 128 1.17 0,099 18,50

ABSORBAN Gambar 4b: kurva kalibrasi doubling dilution KURVA DOUBLING DILUTION PADA λ = 479nm 0.3 0.25 0.2 0.15 0.1 0.05 0 y = 0.0151x + 0.0884 R² = 0.1532 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 KONSENTRASI Series1 Linear (Series1) Kesimpulan: 1. Pada percobaan doubling dilution kurvanya juga tidak membentuk garis lurus yang berarti hasil percobaan ini tidak akurat. 2. Niali absorbansi yang terukur tidak menunjukkan hasil konsentrasi yang sesuai dengan prediksi, artinya hasil praktikum ini tidak sesuai dengan hukum lambert beer, Nilai absorbansi berbanding lurus dengan Nilai konsentrasi suatu larutan 3. Kesalahan pada pengenceran bisa merupakan penyebab kegagalan praktikum ini, bisa pada pembuatan larutan awal atau proses penghitungan pengenceran atau dalam pelaksanaan pengenceran misalnya praktikan kurang terampil dalam menggunakan pipet 4. Kesalahan dalam memeprsiapkan larutan dikuvet juga mungkin terjadi karena konsentrasi larutan yang ditambahkan sangatlah kecil 10µl, mungkin saja larutan yang sedikit ini tidak tercampur baik dengan larutan lainya tetapi tertinggal dipipet atau dinding kuvet

ABSORBANSI Tabel 4c: Absorbansi Berbagai Pengenceran Glukosa Decimal Dilution pada λ = 500nm Pengenceran Absorbansi glukosa Konsentrasi glukosa 0,1X 0,306 122,89 0,01X 0,246 98,79 0,001X 0,023 9,24 0,3X 0,208 83,534 0,03X 0,218 87,55 0,003X 0,234 93,97 Untuk menghitung konsentrasi pengenceran glukosa Konsentrasi = absorban sampel/absorbansi standar x konsentrasi standar kit Glukosa diukur pada λ = 500nm, absorban standar = 0,249 Gambar 4c: kurva decimal dilution glukosa 150 100 kurva decimal dilution glukosa pada λ = 500nm y = 6.9991x + 42.857 R² = 0.1033 50 0 0 1 2 3 4 5 6 7 8 KONSENTRASI kurva kalibrasi decimal dilution glukosa Linear (kurva kalibrasi decimal dilution glukosa) Kesimpulan: 1. Pada grafik terlihat banyak Nilai absorbansi yang tidak membentuk garis linear, menunjukkan hasil praktikum ini tidak sesuai dengan hukum lambert beer, karena terlihat Nilai absorbansi yang rendah pada konsentrasi yang tinggi, dan Nilai absorbansi yang tinggi pada konsentrasi yang rendah 2. Hnaya 2 titik terakhir yang membentuk garis lurus, menunjukkan bahwa Nilai absorbansinya memenuhi hukum lambert beer, membentuk garis lurus, bisa karena proses pengenceran yang benar

ABSORBANSI 3. Secara keseluruhan kurva diatas menunjukkan hasil praktikum ini tidak sesuai dengan yang diharapkan, 4. Kesalah dalam pengenceran bias menyebabkan hasil yang tidak akurat, kesalhan ini meliputi perhitungan pengenceran yang salah atau ketrampilan praktikan dalam melakukan pengenceran yang tidak teliti Tabel 4d: Absorbansi Berbagai Pengenceran Glukosa double Dilution λ = 500nm Pengenceran absorbansi Konsentrasi Factor 2 0,215 86,345 Factor 4 0,203 81,526 Factor 8 0,262 105,22 Factor 16 0,317 127,309 Factor 32 0,243 97,59 Factor 64 0,242 97,189 Factor 128 0,114 45,78 Gambar 4d: kurva doubling dilution glukosa kurva doubling dilution λ = 500nm 150.00 100.00 50.00 - y = 5.2972x + 56.283 R² = 0.1062 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 KONSENTRASI kurva kalibrasi doubling dilution Linear (kurva kalibrasi doubling dilution) KESIMPULAN PERBANDINGAN NILAI ABSORBANSI GLUKOSA BERBAGAI PENGENCERAN DENGAN λ = 479nm maksimal) DAN λ = 500 nm SESUAI KIT berdasarka gambar 4a, 4b, 4c, 4d 1. Pengukuran absorbansi berbagai pengenceran glukosa dengan doubling dilution dan double dilution semua kurva tidak ada yang membentuk garis linear

2. Pengukuran absorbansi glukosa pada gelombang maksimal λ = 479nm untuk mendapatkan absorbansi maksimal dari suatu larutan glukosa. Dan diharapkan dapat menunjukkan konsentrasi glukosa yang akurat dari larutan. Ternyata pada praktikum ini hasil yang didapatkan juga tidak akurat karena kurva tidak membentuk garis linear, dan hasil tidak sesuai dengan hokum lambert beer 3. Pengukuran pada λ = 479nm ( maksimal) dan λ = 500 nm (ketentuan kit) hasilnya sama. Tidak sesuai dengan hukum lambert beer. Penurunan Nilai konsentrasi tidak diikuti penuruna Nilai absorbansi. 4. Nilai R pada absorbansi dengan memakai panjang gelombang maksimal lebih mendekati angka 1, bila di bandingkan dengan Nilai R pada pengukuran absorbansi dengan memakai panjang gelombang sesuai kit, artinya pengukuran dengan memkai panjang gelombang maksimal lebih bgaus dari pada memakai panjang gelombang sesuia kit. 5. Hasil yang tidak akurat bisa karena kasalahan dalam pembuatan larutan, pengenceran, kurang menghomogenkan larutan, proses mempersiapkan larutan dalam kuvet. Kesalahan ini bisa dari praktikan yang tidak teliti atau alat yang digunakan yang tidak akurat 6. Proses absorbansi juga dipengaruhi oleh diameter kuvet dan cahaya disekitar Tabel 5 Hasil pemeriksaan glukosa, trigliserida dan urea plasma mahasiswa detil 2 mhs (berapa lama sejak GLUKOSA TRIGLISERI UREA makan; rata-rata apa yg (λ : 500nm) DA (λ : 600nm) dimakan; jenis kelaminan; (λ : 500nm) umur) A kadar A kadar A kadar 1. Yunita Wannur azah Jenis kelamin : perempuan Usia : 28 tahun Makanan : makan ifumie Waktu : 1jam sebelum pemeriksaan - - 0,241 158,55 mg/dl 0,167 127,23 mg/dl

2. Kirana patrolina Jenis 0,225 90,36 0,313 205,92 - - kelamin : peremuan mg/dl mg/dl Usia : 32 tahun Makanan : makan nasi putih dengan ikan teri sambal+susu anlene Waktu : 3 jam sebelum pemeriksaan Kesimpulan: 1. Glukosa diukur pada (λ: 500nm), praktikan kirana menunjukkan hasil 90,36mg/dl. Nilai ini menunjukkan Nilai hipoglikemia karena Nilai glukosa untuk pemeriksaan random adalah 120-200mg/dl. Hal ini bisa terjadi karena pemeriksaan dilakukan setelah beberapa jam praktikan makan, sehingga glukosa yang dihasilkan dari metabolism karbohidrat sudah masuk kesel yang dibantu oleh insulin. Selain itu kadar glukosa dipengaruhi oleh pola makan, beasr porsi dan aktivitas mahasiswa tersebut dalam kesehariannya. Kesalahan lain yang mungkin menyebabkan perbedaan ini adalah proses pembuatan larutan kedalam kuvet dan juga homogenisasi larutan. 2. Kadar trigliserida yang diperoleh dari hasil pengukuran sampel adalah 158,55 mg/dl dan 205,92 mg/dl, perbedaan ini bisa terjadi Karena factor makanan yang dikonsumsi sebelumnya, usia dan Makanan yang dikonsumsi setiap harinya. Trigliserid adalah salah satu bentuk lemak yang diserap oleh usus setelah mengalami hidrolisis. Interpretasi hasil pemeriksaan laboratorium terhadap trigliserid (Normal < 150 mg/dl; Batas tinggi 150 199 mg/dl; Tinggi 200 mg/dl). Dari data di atas praktikan 1 ada pada Nilai konsentrasi trigliserida pada batas tinggi, dan praktikan 2 ada pada niali konsentrasi trigliserida yang tinggi. Nilai ini bisa dipengaruhi oleh kesalahan dalam pembuatan persiapan sampel yang akan diukur. 3. Kadar urea yang diperoleh 127, 23 mg/dl, kadar urea normal adalah pada kisaran 15 45 mg/dl. Dari hasil praktikum didapatkan Nilai kadar urea yang

sangat tinggi, jauh diatas kadar normal, Nilai ini kemungkinan besar salah karena secra klinis praktikan tidak menunjukkan gejala uremia. Nilai urea yang tinggi bisa disebakan kesalahn dalam pembuatan larutan yanga akan diukur. Amonia merupakan racun bagi sel-sel, sehingga harus dikeluarkan dari tubuh. Seorang dewasa biasanya mengeluarkannya sekitar 25 gram urea per hari. Setiap kondisi yang mengganggu penghapusan urea oleh ginjal dapat menyebabkan uremia, penumpukan urea dan limbah nitrogen lainnya dalam darah yang bisa berakibat fatal. Untuk membalikkan kondisi, baik penyebab gagal ginjal harus dihapus dengan menjalani dialisis darah untuk menghapus kotoran dari darah. SARAN 1. Alat praktikum yang digunakn agar lebih banyak lagi, missal spektofotometer, sehingga mahasiswa bisa balajr bagaimana cara memakai alatnya 2. Praktikum berikutnya agar lebih memahami materi praktikum dan cara kerjanya sehingga hasil yang didapatkan lebih bagus