Jl. Prof. Dr. Soemantri Brodjonegoro No. 1 Bandar Lampung Surel: ABSTRACT

Transkripsi

1 PENGARUH TINGKAT KONSENTRASI EKSTRAK Tagetes erecta L. DAN Lantana camara L. TERHADAP PERTUMBUHAN DAN SPORULASI Colletotrichum capsici (Syd.) Butl. et Bisby PENYEBAB ANTRAKNOSA PADA CABAI SECARA IN VITRO Wasis Sugiyem 1), Efri 2) dan Ivayani 2) 1) Mahasiswa Jurusan Agroteknologi Fakultas Pertanian Universitas Lampung 2) Dosen Jurusan Agroteknologi Fakultas Pertanian Universitas Lampung Jl. Prof. Dr. Soemantri Brodjonegoro No. 1 Bandar Lampung Surel: wasis.sugiyem2306@gmail.com ABSTRACT Anthracnose on chilli caused by Colletotrichum capsici (Syd.). Generally, it can controlled by using synthetic fungicides which can caused negative impacts. Natural fungicide could be one of alternative way to control anthracnose. Leaf extract of Tagetes erecta and Lantana camara potentially control anthracnose as natural fungicide. This research was aimed to learned the ability of T. erecta and L. camara leaf extract fraction, effect of its concentration level, and determine its optimum concentration levels to pressing growth and sporulation of C. capcisi with in vitro. The Research using completely randomized design (CRD) nested with 5 treatment (0.00 g/100 ml; 0.05 g/100 ml; 0.10 g/100 ml; 0.15 g/100 ml; and 0.20 g/100 ml) and 5 replications. Differences in median tested using orthogonal polynomials at level 5%. Results showed that L. camara leaf extract fraction was better than T. erecta leaf extract fraction in pressing growth and sporulation of C. capcisi. Level 0.00 to 0.20 g/100 ml of T. erecta and L. camara leaf extract fraction at give a different effect in pressing growth and sporulation of C. capcisi. Level of inhibition does not depend on the concentration level of T. erecta and L. camara leaf extract fraction. Keywords: Colletotrichum capsici, Lantana camara, natural fungicide, Tagetes erecta. ABSTRAK Colletotrichum capsici (Syd.) merupakan salah satu penyebab penyakit antraknosa pada cabai. Pengendalian antraknosa umumnya menggunakan fungisida sintetik yang dapat menimbulkan dampak negatif. Sebagai salah satu alternatif untuk mengendalikan antraknosa yaitu dengan penggunaan fungisida nabati. Ekstrak daun Tagetes erecta dan Lantana camara berpotensi sebagai fungisida nabati untuk mengendalikan antraknosa. Tujuan penelitian untuk mempelajari tingkat kemampuan antara fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara, mempelajari pengaruh tingkat konsentrasi, dan mengetahui tingkat konsentrasi optimum fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara untuk menekan pertumbuhan dan sporulasi C. capsici secara in vitro. Perlakuan dirancang dalam Rancangan Acak Lengkap (RAL) Tersarang. Perlakuan yang diberikan terdiri dari lima taraf konsentrasi, yaitu 0,00 g/100 ml, 0,05 g/100 ml, 0,10 g/100 ml, 0,15 g/100 ml, dan 0,20 g/100 ml dan diulang lima kali. Perbedaan nilai tengah diuji dengan uji polinomial ortogonal pada taraf 5 %. Hasil penelitian menunjukkan bahwa fraksi ekstrak daun L. camara lebih besar pengaruhnya dalam menekan pertumbuhan dan sporulasi C. capsici dibandingkan dengan ekstrak T. erecta. Tingkat konsentrasi 0,00 239

2 0,20 g/100 ml fraksi ekstrak T. erecta dan L. camara memberikan pengaruh yang berbeda dalam menekan pertumbuhan dan sporulasi C. capsici. Semakin tinggi tingkat konsentrasi tidak selalu diikuti oleh tingginya tingkat penghambatan. Kata kunci: Colletotrichum capsici, fungisida nabati, Lantana camara, Tagetes erecta. PENDAHULUAN Cabai merupakan salah satu komoditas sayuran penting dan bernilai ekonomi tinggi di Indonesia (Syukur et. al., 2009). Menurut Balai Pengkajian Teknologi Pertanian (BPTP) Jambi (2010) dengan banyaknya kandungan gizi dan vitamin dalam cabai, cabai banyak digunakan untuk keperluan rumah tangga dan industri makanan. Seperti halnya budidaya tanaman hortikultura pada umumnya, budidaya tanaman cabai tidak terlepas dari gangguan Organisme Pengganggu Tanaman (OPT). Menurut Semangun (2004) menyebutkan bahwa salah satu penyebab penyakit antraknosa adalah Colletotrichum capsici yang merupakan salah satu penyakit utama cabai. Antraknosa dapat menghilangkan hasil buah cabai mencapai 100% jika pengendalian yang diterapkan kurang tepat (Gunawan, 2006). Suryotomo (2006) menambahkan bahwa kerugian hasil selama satu minggu dalam transportasi dan penyimpanan akibat antraknosa mencapai lebih dari 25%. Salah satu alternatif untuk mengendalikan penyakit antraknosa yaitu dengan menggunakan fungisida nabati karena mudah terurai dan tidak merusak lingkungan. Fungisida nabati dapat dibuat dari daun tumbuhan. Penelitian yang dilakukan oleh Satryawibowo (2015) menyebutkan bahwa penggunaan 1000 ppm (0,10 g/100 ml) ekstrak daun T. erecta (Tagetes) dan L. camara (Saliara) dengan pelarut metanol memberikan pengaruh yang lebih besar dalam menghambat pertumbuhan dan sporulasi C. capsici dibandingkan pelarut air, etil asetat, dan n-heksana secara in vitro. Hasil 240

3 penelitian tersebut membuktikan adanya potensi T. erecta dan L. camara sebagai fungisida nabati untuk C. capsici. Namun belum diketahui tingkat konsentrasi optimum untuk menekan C. capsici. Oleh sebab itu, penelitian ini menguji beberapa konsentrasi di bawah dan di atas 1000 ppm. Tujuan penelitian untuk (1) mempelajari tingkat kemampuan antara fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara, (2) mempelajari pengaruh tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara, dan (3) mengetahui tingkat konsentrasi optimum fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara untuk menekan pertumbuhan dan sporulasi C. capsici secara in vitro. BAHAN DAN METODE Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tanaman Fakultas Pertanian Universitas Lampung pada September 2014 sampai dengan April Bahan-bahan yang digunakan yaitu akuades, alkohol 70%, arang aktif, biakan C. capsici, daun L. camara asal Lampung Selatan, daun T. erecta asal Lampung Barat, klorok 1%, media PSA (potato succrose agar), metanol teknis, dan surfaktan (bahan aktif alkilaril poliglikol eter 360 g/l). Alat yang digunakan yaitu alumunium foil, autoklaf, ayakan tepung, blender, bor gabus, botol (volume 140 ml), bunsen, cawan petri (diameter 9 cm), gelas ukur (volume 10 ml), haemocytometer, jarum ose, kaca preparat, kain sifon, labu erlenmeyer (volume 1000 ml), LAF (laminar air flow), mikropipet (volume 100 µl 1000 µl), mikroskop majemuk, mistar, nampan plastik, paralon 3 ukuran ( 4 inci, 2 inci, dan 1 inci ), pinset, plastik tahan panas, plastik wrap, rotamixer, spatula, dan tisu. Perlakuan disusun dalam Rancangan Acak Lengkap (RAL) Tersarang. Konsentrasi tersarang pada ekstrak tanaman uji. Ekstrak tanaman uji (T) terdiri dari: 241

4 ekstrak daun saliara (T1) dan tagetes (T2). Konsentrasi (P) terdiri dari: 0,00 g/100 ml (0 ppm) (P0), 0,05 g/100 ml (500 ppm) (P1), 0,10 g/100 ml (100 ppm) (P2), 0,15 g/100 ml (150 ppm) (P3), dan 0,20 g/100 ml (2000 ppm) (P4). Setiap perlakuan diulang sebanyak 5 kali sehingga diperoleh 50 satuan percobaan. Data pengamatan dianalisis ragam dan jika perlakuan menunjukkan pengaruh yang nyata maka dilanjutkan dengan uji polinomial ortogonal pada taraf 5%. Pembuatan Fraksi Ekstrak Daun Tanaman Uji. Pembuatan ekstrak daun T. erecta dilakukan menggunakan alat fraksinasi sederhana (Gambar 1). Ekstrak daun T. erecta dibuat dari daun yang segar. Tahap pertama pembuatan ekstrak daun T. erecta yaitu 200 g daun T. erecta dicuci dengan air bersih kemudian dikeringanginkan ±20 menit. Tahap kedua, daun dihaluskan menggunakan blender dengan penambahan air 1000 ml. Tahap ketiga, memasukkan daun yang sudah halus ke dalam alat fraksinasi, hasil ekstraksi ditampung dalam nampan. Setelah tetesan hasil ekstrak daun tersebut berhenti menetes (± 24 jam) dilanjutkan dengan memasukkan metanol teknis 1000 ml ke dalam alat fraksinasi tersebut dan hasil fraksinasi ditampung dengan nampan. Setelah diperoleh ekstrak daun T. erecta, ekstrak dikeringanginkan (± 13 hari) kemudian dikeruk, dimasukkan ke dalam cawan, dan ditimbang untuk disimpan sebelum menyiapkan media uji. Dari 200 g daun yang diekstrak diperoleh 3 g formula. Pembuatan fraksi ekstrak daun L. camara sama seperti tahapan pembuatan fraksi ekstrak T. erecta. Penyiapan Media PSA (Potato Succrose Agar) dan Media Uji. PSA sebanyak 1 liter dibuat dengan 200 g kentang, 20 g gula pasir, dan 20 g agar batang. Air rebusan semua bahan dimasukkan ke dalam tabung erlenmeyer. Setelah itu, media PSA disterilisasi menggunakan autoklaf dengan suhu 121ºC dan tekanan 1 atm selama ± 20 menit. Media 242

5 yang telah steril dibagi ke dalam 5 botol (volume 140 ml), setiap botol diisi media sebanyak 100 ml. Botol pertama yang berisi 100 ml media (TP0), botol kedua ditambahkan ekstrak tumbuhan uji sebanyak 0,05 g (TP1), botol ketiga ditambahkan ekstrak tumbuhan uji sebanyak 0,10 g (TP2), botol keempat ditambahkan ekstrak tumbuhan uji sebanyak 0,15 g (TP3), dan botol keempat ditambahkan ekstrak tumbuhan uji sebanyak 0,20 g (TP4). Kemudian masing-masing botol ditambahkan larutan surfaktan 0,002% (2 ml surfaktan/ 1000 ml akuades) sebanyak 50 µl. Pencampuran ekstrak tanaman uji ke dalam media PSA ketika media bersuhu ±40ºC. Penyiapan Isolat C. capsici. Penyiapan isolat C. capsici dilakukan dengan menginokulasi bagian buah cabai yang bergejala antraknosa. Buah cabai dipotong kecil antara bagian yang sehat dan yang bergejala dengan ukuran ±5 mm. Potongan tersebut kemudian didesinfeksi dalam klorok 1 % selama 30 detik lalu dibilas dengan akuades dan dikeringanginkan di atas tisu. Kemudian potongan tersebut diinokulasi dalam media PSA dan diinkubasikan dengan suhu kamar selama 7 hari. Jamur yang tumbuh kemudian dimurnikan dan diidentifikasi lagi untuk memastikan bahwa jamur yang dimurnikan benar C. capsici. Identifikasi mengacu pada literatur yang disusun Barnet & Hunter (1987); Semangun (2004). Uji Penghambatan Pertumbuhan C. capsici. Uji penghambatan yang digunakan dalam percobaan ini adalah teknik makanan beracun (poisoned food technique). Pengujian dilakukan dengan menginokulasikan biakan C. capsici dalam media yang telah dicampur dengan ekstrak tanaman uji. Pengamatan. Pengamatan dilakukan terhadap dua variabel, yaitu diameter koloni dan kerapatan spora C. capsici. Pengukuran dilakukan pada hari ke 2 sampai ada salah satu 243

6 diameter koloni jamur mencapai 9 cm (memenuhi cawan) dari semua perlakuan. Kerapatan spora dihitung menggunakan alat haemocytometer. Kerapatan spora pada kotak sedang dihitung dengan menggunakan rumus Sudibyo (1994) dalam Majid et.al. (2014): K = T x 2,5 105 N Keterangan: K : kerapatan spora per ml larutan T : jumlah total spora dalam kotak sampel yang diamati (kotak sedang) N : jumlah kotak sampel yang diamati 2, : konstanta (faktor koreksi penggunaan kotak sampel skala sedang pada haemocytometer) HASIL DAN PEMBAHASAN Hasil penelitian menunjukkan bahwa ekstrak daun T. erecta dan L. camara dengan pelarut metanol mampu menghambat pertumbuhan dan sporulasi C. capsici secara in vitro (Tabel 1 dan 2). Pada tingkat konsentrasi 0,05 0,20 g/100 ml fraksi ekstrak T. erecta dan L. camara mampu menghambat pertumbuhan koloni dan menekan jumlah spora/ml C. capsici. Hal ini diduga karena adanya senyawa antijamur yang tersari dalam fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara dengan pelarut metanol. Menurut Akhter et al. (2015) melaporkan bahwa daun T. erecta yang diekstrak dengan metanol mengandung alkaloid, flavonoid, gula, saponin, protein, dan asam amino. Bhakta et al. (2009) menyebutkan ekstrak metanol daun L. camara mengandung fenol, flavonoid, dan proantosianidin. Wahyuni et al. (2014) menyebutkan bahwa alkaloid, saponin, dan flavonoid yang terkandung dalam ekstrak metanol daun Premna serratifolia bersifat menghambat pertumbuhan jamur Diplodia sp. Berdasarkan hasil 244

7 tersebut maka diduga senyawa alkaloid, saponin, dan flavonoid ekstrak daun T. erecta dan L. camara yang berperan dalam penghambatan pertumbuhan C. capsici. Dari hasil penelitian menunjukkan bahwa daya hambat T. erecta dan L. camara terhadap pertumbuhan C. capsici berbeda. Hal ini dapat terlihat dari diameter koloni C. capsici dengan perlakuan fraksi ekstrak daun L. camara lebih kecil dibandingkan perlakuan fraksi ekstrak daun T. erecta (Tabel 1). Perbedaan daya hambat tersebut diduga karena perbedaan kandungan senyawa yang dimiliki masing-masing jenis tumbuhan. Perlakuan ekstrak daun T. erecta dengan berbagai tingkat konsentrasi memberikan pengaruh penghambatan pertumbuhan C. capsici yang nyata dan pengaruhnya membentuk pola kuadratik (Gambar 2) pada hari kedua sampai dengan hari keempat. Namun pada hari kelima sampai dengan hari kesembilan setelah inkubasi menunjukkan pengaruh yang tidak nyata. Dari pola kuadratik tersebut menunjukkan pada tingkat konsentrasi 0,00 0,10 g/100 ml diameter koloni C. capsici semakin kecil. Namun, pada tingkat konsentrasi 0,15 0,20 g/100 ml diameter koloni C. capsici semakin naik. Berdasarkan kejadian tersebut pengaruh penghambatan yang besar tidak selalu dari tingkat konsentrasi ekstrak tumbuhan yang semakin tinggi. Suharjo dan Aeny (2011) menyebutkan bahwa ekstrak tumbuhan memiliki batasan tingkat konsentrasi optimum untuk memberikan efek penekanan terhadap jamur patogen. Selain itu, besarnya koloni C. capsici pada perlakuan fraksi ekstrak T. erecta dipicu oleh senyawa primer (gula dan protein) yang terkandung dalam daun T. erecta. Hasil uji lanjut polinomial ortogonal tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun L. camara terhadap pertumbuhan C. capsici membentuk pola linear (Gambar 3). Pola linear menunjukkan bahwa semakin tinggi tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun L. 245

8 camara maka semakin kecil diameter koloni C. capsici. Hasil penelitian ini umum terjadi dengan dugaan bahwa semakin tinggi tingkat konsentrasi maka semakin banyak senyawa dalam fraksi ekstrak tumbuhan. Hasil uji lanjut dengan polinomial ortogonal, aplikasi ekstrak T. erecta dan L. camara terhadap sporulasi C. capsici dengan berbagai tingkat konsentrasi memiliki pola yang sama yaitu linear (Gambar 4 dan 5). Pola linear tersebut menunjukkan bahwa semakin tinggi tingkat konsentrasi maka sporulasi C. capsici semakin terhambat. Menurut Achmad dan Suryana (2009) menyebutkan bahwa senyawa yang diduga berperan dalam penghambatan spora Rhizoctonia sp. yaitu minyak atsiri yang terkandung dalam daun Piper betle L. Selain itu, saponin (Suprapta, 1998 dalam Wahyuni et. al., 2014) dilaporkan mampu menekan pembentukan spora. Hasil analisis korelasi linear antar pertumbuhan dan sporulasi C. capsici dengan perlakuan fraksi ekstrak T. erecta tidak berkorelasi (r = 0,38 tn ), sedangkan perlakuan fraksi ekstrak L. camara menunjukkan korelasi positif (r = 0,58*). Menurut Susilo (2014) hubungan keeratan antar variabel pengamatan disebut kuat jika nilai R 2 (koefisien determinasi) sama dengan 1. Hal ini diduga karena adanya perbedaan mekanisme kerja dari masing-masing senyawa yang terkandung pada masing-masing tumbuhan. Hal ini memperkuat dugaan bahwa besarnya diameter koloni C. capsici tidak selalu diikuti dengan meningkatnya jumlah spora/ml. Berdasarkan hasil penelitian yang dilakukan fraksi ekstrak daun T. erecta memberikan pengaruh yang lebih besar dalam menekan sporulasi dibandingkan pertumbuhan koloni C. capsici. Sedangkan pada perlakuan fraksi ekstrak daun L. camara memberikan pengaruh yang besar dalam menekan pertumbuhan dan sporulasi C. capsici. 246

9 Berdasarkan penjelasan dan pendugaan yang dilakukan, fraksi ekstrak daun L. camara menunjukkan pengaruh yang lebih besar dibandingkan fraksi ekstrak daun T. erecta dalam menghambat pertumbuhan dan sporulasi C. capsici. Tingkat konsentrasi 0,05 0,20 g/100 ml memberikan pengaruh dalam penghambatan pertumbuhan dan sporulasi C. capsici meskipun belum memberikan hasil yang maksimum. KESIMPULAN Simpulan dari penelitian ini adalah: (1) fraksi ekstrak daun L. camara lebih baik dalam menghambat pertumbuhan dan sporulasi C. capsici dibandingkan fraksi ekstrak daun T. erecta, (2) tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara memiliki pengaruh yang berbeda terhadap pertumbuhan dan sporulasi C. capsici secara in vitro, (3) pengaruh tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun T. erecta terhadap pertumbuhan C. capsici secara in vitro memiliki pola kuadratik (Y = 17,14 x2 3,208 x + 4,420), sedangkan terhadap sporulasi memiliki pola linear (Y = -22,46 x + 6,068), (4) pengaruh tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun L. camara terhadap pertumbuhan C. capsici secara in vitro memiliki pola linear (Y = -12,47 x + 8,764) dan sporulasi C. capsici juga memiliki pola linear (Y = -37,56 x + 6,132). (5) semakin tinggi tingkat konsentrasi ekstrak tumbuhan tidak selalu diikuti dengan kemampuan penghambatan yang semakin besar. DAFTAR PUSTAKA Achmad & Suryana, I Pengujian aktivitas ekstrak daun sirih (Piper betle Linn.) terhadap Rhizoctonia sp. secara in vitro. Bul. Littro. 20(1) : Akhter S, Islam Md T, & Hossain Md T Proximate analysis, phytochemical screening and antioxidant activity of Tagetes erecta leaves. World Journal of Pharmaceutical Research 4(5):

10 Barnett HL & Hunter BB Illustrated Genera Of Imperfect Fungi Fourth edition. Burgess Publishing Company. Minneapolis, Minnesota. 234 hlm. Bhakta D & Ganjewala D Effect of leaf positions on total phenolics, flavonoids and proanthocyanidins content and antioxidant activities in Lantana camara (L.). Journal of Scientific Research 1(2): Balai Pengkajian Teknologi Pertanian (BPTP) Jambi Budidaya Tanaman Sayuran. Balai Pengkajian Teknologi Pertanian Jambi. Jambi. 59 hlm. Gunawan OS Mikroba antagonis untuk pengendalian penyakit antraknos pada cabai merah. J.Hrt. 16(2): Majid M, Hasanuddin & Pinem M I Uji pengaruh beberapa herbisida terhadap Trichoderma sp secara in vitro. Jurnal Agroteknologi 2(4): Satryawibowo MWS Pengaruh Fraksi Ekstrak Daun Tagetes (Tagetes erecta), Saliara (Lantana camara), Dan Sirih Hijau (Piper betle L.) Terhadap Pertumbuhan Dan Sporulasi Colletotrichum capsici Secara In Vitro. Skripsi. Fakultas Pertanian. Universitas Lampung. Bandar Lampung. Semangun H Penyaki-Penyakit Tanaman Hortikultura Indonesia cetakan kelima. Gadjah Mada Press. Yogyakarta. 850 hlm. Suharjo R & Aeny TN Eksplorasi potensi gulma siam (Chromolaena odorata) sebagai biofungisida pengendali Phytophthora palmivora yang diisolasi dari buah kakao. J. HPT Tropika. 11(2): Suryotomo B Ketahanan alami beberapa genotipe cabai (Capsicum annuum L.) terhadap penyakit antraknosa. Jurnal Sains dan Teknologi Indonesia 8(1):1 6. Susilo FX Aplikasi Statistika Untuk Analisis Data Riset Proteksi Tanaman. Anugrah Utama Raharja (AURA). Bandar Lampung. 168 hlm. Syukur M, Sujiprihati S, Koswara J, & Widodo Ketahanan terhadap antraknosa yang disebabkan oleh Colletotrichum acutatum pada beberapa genotipe cabai (Capsicum annuum L.) dan korelasinya dengan kandungan kapsaicin dan peroksidase. J. Agron. Indonesia. 37(3): Wahyuni S, Mukarlina, & Yanti AH Aktivitas antifungi ekstrak metanol daun buas-buas (Premna serratifolia) terhadap jamur Diplodia sp. pada jeruk siam (Citrus nobilis var. microcarpa). Jurnal Protobiont 3(2):

11 Diameter Koloni C. capsici (cm) Seminar Nasional Sains & Teknologi VI LAMPIRAN Tabel 1. Pengaruh fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara terhadap diameter koloni C. capsici (cm). Ekstrak Pengamatan ke- Tumbuhan 2 hsi 3 hsi 4 hsi 5 hsi 6 hsi 7 hsi 8 hsi 9 hsi Tagetes erecta 2,23 3,27 4,36 5,68 6,63 7,66 8,24 8,73 Lantana camara 1,97 2,88 3,83 4,95 5,65 6,49 6,95 7,52 Signifikansi * * * * * * * * Keterangan : hsi (hari setelah inkubasi), * nyata pada taraf 5%. Tabel 2. Pengaruh fraksi ekstrak daun T. erecta dan L. camara terhadap kerapatan spora C. capsici. Perlakuan Rerata kerapatan spora (jumlah spora/ml) Tagetes erecta 3,82 10⁶ Lantana camara 2,38 10⁶ Signifikansi tn Keterangan : tn (tidak nyata pada taraf 5%) y = x x R² = Gambar 2. Pengaruh tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun T. erecta terhadap diameter koloni C. capsici pada hari keempat setelah inkubasi Konsentrasi Fraksi Ekstrak Daun T. erecta (g/100 ml) 249

12 Kerapatan Spora 10⁶ (jumlah spora/ml) Kerapatan Spora 10⁶ (jumlah spora/ml) Diameter Koloni C. capsici (cm) Seminar Nasional Sains & Teknologi VI y = x R² = Konsentrasi Fraksi Ekstrak Daun L. camara (g/100 ml) Gambar 3. Pengaruh tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun L. camara terhadap diameter koloni C. capsici pada hari kesembilan setelah inkubasi y = x R² = Konsentrasi Fraksi Ekstrak Daun T. erecta (g/100 ml) Gambar 4. Pengaruh tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun T. erecta terhadap kerapatan spora C. capsici pada hari ke-14 setelah inkubasi y = x R² = Konsentrasi Fraksi Ekstrak Daun L. camara (g/100 ml) Gambar 5. Pengaruh tingkat konsentrasi fraksi ekstrak daun L. camara terhadap kerapatan spora C. capsici pada hari ke-14 setelah inkubasi. 250