TINJAUAN PUSTAKA. Klasifikasi Aglaonema sp.berdasarkan kedudukannya dalam taksonomi

Transkripsi

1 TINJAUAN PUSTAKA Botani Tanaman Sri Rejeki (Aglaonema sp.) Klasifikasi Aglaonema sp.berdasarkan kedudukannya dalam taksonomi tumbuhan sebagai berikut:kingdom : Plantae, Divisi: Spermatophyta, Sub-divisi: Angiospermae, Kelas: Monocotyledoneae, Ordo: Araceales, Famili: Araceae, Genus: Aglaonema, Spesies: Aglaonema sp. (Lawrence, 1959). Genus Aglaonema sp. terdiri dari 21 spesies asli yang terdapat di Asia Tenggara. Aglaonema sp. spesies liar melakukan penyebukan-terbuka. Jumlah kromosom dasar dari Aglaonema adalah 2n = 16, yang kemudian mengalami poliploidi pada berbagai kasus (Henny et al., 2015). Jumlah kromosom Aglaonema sp. bervariasi dari 2n=42 sampai 60 atau bahkan 120 tergantung spesiesnya (Budianto, 2010). Sebagaimana umumnya tanaman monokotil atau berbiji tunggal, aglaonema memiliki akar serabut yang berfungsi sebagai pencari pakan di dalam tanah dan menopang tanaman. Akar aglaonema berwarna putih dan gemuk (berair) jika tanaman dalam kodisi sehat. Namun, jika dalam keadaan sakit, akar tanaman akan berwarna cokelat dan kurus (Subono dan Andoko, 2005). Banyak orang mengira aglaonema tidak memiliki batang alias berbatang semu karena dari luar hanya kelihatan pelepah yang saling menutupi. Namun sebenarnya Aglaonema memiliki batang yang relatif pendek yang berwarna putih, hijau atau merah. Batang Aglaonema ini berbuku-buku cenderung berair dan tidak berkayu (Junaedhie, 2006). Umumnya aglaonema spesies atau alam mempunyai daun yang berwarna hijau dengan corak hijau kehitaman. Dengan munculnya aglaonema hibrida,

2 warna daun lebih bervariasi seperti putih, hijau muda, hijau tua, merah muda, merah, hingga kuning. Bentuk dan ukuran daun bermacam-macam tergantung dari jenisnya. Permukaan daun rata dan licin, tida berbulu. Tepi daun rata. Daun mempunyai tangkai dan pelepah yang memeluk dan menutupi batang sehingga secara umum batang tanaman tidak tampak(budianto, 2010). Bunga muncul di ketiak daun, bentuk bulir, berwarna putih. Bunga tertutup oleh seludang berwarna putih kehijauan. Bila tidak dilakukan penyilangan, bunga sebiknya dipetik agar zat hara yang terserap tidak dipergunakan untuk pertumbuhan bunga, tetapi untuk pembentukan daun. Pada umumnya, daun baru akan berukuran lebih kecil bila bunga dibiarkan tumbuh. Bunga aglaonema terdiri dari spata dan spadiks. Spata merupakan seludang bunga. Spata ini masih dalam posisi membungkus spadiks (bunga) sampai bunga tersebut terbuka. Tingkat atau derajat terbukanya spata juga berbeda-beda untuk setiap jenis.bunga jantan (staminate) terletak di posisi atas spadiks, sedangkan bunga betina (pistillate) terletakdi bagian bawah. Semua Aglaonema sp. mempunyai tipe bunga yang sama. Perbedaannya hanya pada bentuk dan ukuran spatha dan spadiks (Sudaryanto, 2007). Setelah penyerbukan berhasil, bakal buah akan menjadi buah-buah berbentuk lonjong seperti buah melinjo. Mula-mula buah Aglaoenema berwarna hijau, tetapi pada perkembangannya akan berubah menjadi putih, kuning dan setelah matang berwarna merah. Dari terbentuknya buah sampai matang memerlukan waktu sekitar empat bulan. Setelah matang dan berwarna merah, daging buah mudah dikupas dan bisa diperoleh biji berwarna coklat yang siap disemaikan menjadi tanaman baru (Subono dan Andoko, 2005).

3 Bila terjadi pembuahan, bunga akan berkembang menjadi buah. Pada mulanya, buah akan berwarna hijau dan semakin tua akan berubah menjadi merah. Kulit buah yang telah berwarna merah akan mudah dikupas di dalamnya terdapat biji yang berwarna coklat (Budianto, 2010). Syarat Tumbuh Iklim Aglaonema sp. berasal dari Asia dengan habitat asli hutan-hujan tropis. Di habitat aslinya ini aglaonema hidup di bawah naungan pepohonan hutan, sehingga hanya menerima sekitar 40% cahaya matahari. Hanya dengan 40% cahaya matahari yang diterimanya untuk proses fotosintesis, aglaonema justru tumbuh optimal dan daun-daunnya rimbun. Intesitas sinar matahari lebih dari 50% yang diterimanya dapat mengakibatkan daun-daunnya berwarna kusam, bahkan terbakar dan akhirnya mati (Sudaryanto, 2007). Hidup di bawah naungan pepohonan menyebabkan aglaonema beradaptasi dengan keadaan kelembapan yang relatif tinggi. Karenanya, tanaman hias ini menyukai udara dengan kelembapan sekitar 50% yang merupakan perpaduan suhu ideal sekitar 25 o C pada siang hari dan o C pada malam hari (Subono dan Andoko, 2005). Tanah Di habitat aslinya, perakaran aglaonema berada di tanah yang penuh humus, sehingga selain kaya unsur hara juga bersifat sangat poros. Kondisi seperti ini membuat tanaman tumbuh optimal dengan daun-daun yang subur dan berwarna cemerlang. Agar sesuai dengan kondisi habitat aslinya, media tanam aglaonema harus dibuat kaya unsur hara dan bersifat poros. Media tanam untuk

4 aglaonema akhirnya hanya tersusun dari bahan bahan yang ringan, tetapi kaya unsur hara. Campuran yang paling banyak digunakan adalah cocopeat dan arang sekam dengan perbandingan sama (Subono dan Andoko, 2005). Aglaonema tumbuh baik pada tanah yang penuh humus. Tanah berhumus adalah tanah yang kaya unsur hara dan bersifat sangat poros. Komposisi media tanam Aglaonema tersusun dari bahan-bahan yang ringan tetapi kaya unsur hara seperti campuran cocopeat, arang sekam, pasir halus dengan perbandingan 2:2:1 (Sudaryanto, 2007). Sterilisasi media tanam harus dilakukan untuk menjamin media tanam tersebut tidak terkontaminasi bibit penyakit, seperti spora jamur yang bisa berpotensi sebagai penyakit. Di samping itu, untuk menjamin tidak ada telur siput yang dapat menjadi hama bagi tanaman. Sterilisasi media tanam dapat dilakukan dengan pemanasan atau dengan menjemur media tanam di terik matahari sehari penuh, dimasukkan ke dalam plastik saat masih hangat dan ditutup rapat selama seminggu. Dengan cara seperti itu, biasanya spora jamur atau telur hama akan mati. Sterilisasi juga dapat dilakukan dengan cara fungisida ke media tanam dengan dosis sesuai dengan petunjuk yang tertera di kemasannya. Zat kimia yang terkandung dalam bahan-bahan ini akan meracuni bibit hama penyakit (Subono dan Andoko, 2005). Perbanyakan Aglaonema sp.dengan Pemisahan Anakan Perbanyakan Aglaonema ini ada dua cara yaitu perbanyakan generatif dan perbanyakan vegetatif. Perbanyakan secara vegetatif menghasilkan tanaman lebih cepat dan lebih banyak. Perbanyakan vegetatif juga mempunyai beberapa cara yaitu, stek batang, stek pucuk, pemisahan anakan dan cangkok. Cara yang sering

5 dilakukan adalah cara pemisahan anakan dan cangkok karena memiliki risiko kegagalan yang rendah dan lebih banyak menghasilkan anakan Aglaonema. Perbanyakan secara stek batang dan stek pucuk mempunyai keuntungan bisa menghasilkan anakan yang lebih banyak, tapi kegagalannya besar yaitu luka bekas potongan membusuk sehingga akar sulit tumbuh dan relatif lama, karena batang harus memenuhi persyaratan tertentu (Sofiani, 2008). Perbanyakan Aglaonema melalui biji dimanfaatkan oleh breeder untuk menghasilkan varian aglaonema baru yang cantik dan unik melalui penyilangan antar jenis Aglaonema sp. Namun teknik ini memerlukan waktu yang cukap lama. Waktu yang dibutuhkan setelah penyerbukan sampai terbetuk biji adalah 6 bulan dan waktu yang dibutuhkan mulai dari penyemaian samapi benih berkecambah adalah 6 bulan dengan tingkat keberhasilan yang rendah(subono dan Andoko, 2005). Aglaonema termasuk tanaman yang bersifat merumpun. Maksudnya, dari batang utama akan muncul beberapa anakan yang mengelilinginya. Sifat ini menguntungkan dari segi penampilan karena tanaman akan tampak kompak, sehingga semakin indah dipandang. Anakan yang muncul di sekeliling tanaman induk sebenarnya adalah individu tersendiri yang lengkap, sehingga bisa ditanam di tempat yang lain (Sudaryanto, 2007). Syarat anakan dapat dipisahkan untuk ditanam di tempat lain adalah minimum telah memiliki tiga helai daun. Jika anakan tersebut baru memiliki tunas daun, sebaiknya tidak dipisahkan dulu karena bisa menyebabkan pertumbuhan daun menjadi kurang sempurna. Pemisahan harus menunggu beberapa saat sampai

6 tunas tersebut menjadi daun yang cukup besar. Peralatan yang digunakan untuk memisahkan anakan adalah pisau yang tajam (Subono dan Andoko, 2005). Pemisahan anakan bisa dilakukan dengan mengeluarkan seluruh tanaman dari dalam pot dengan hati-hati. Setelah itu, mengorek media tanam antara tanaman induk dan anakan sampai batang di dalam tanah yang menghubungkan keduanya terlihat. Selanjutnya memotong batang tersebut dengan pisau tajam hingga anakan terpisah(sofiani, 2008). Anakan yang didapat kemudianditanam di dalam pot yang telah disediakan. Dianjurkan menggunakan media tanam yang terbuat dari campuran cocopeat dengan sekam bakar dengan perbandingan sama. Pot berisi anakan diletakkan di tempat yang terlindung dari sinar matahari atau hujan sampai anakan menunjukkan tanda-tanda sudah hidup (Subono dan Andoko, 2005). Keragaman Morfologi Keragaman merupakan hal penting dalam pemuliaan karena dapat ditemukan berbagai sumber gen untuk perbaikan suatu sifat tanaman. Gen-gen tersebut dapat ditransfer ke tanaman dengan cara konvensional maupun rekayasa genetik. Salah satu teknik pemuliaan untuk perbaikan sifat adalah perakitan poliploidi. Poliploidi adalah keadaan sel dengan penambahan satu atau lebih genom dari genom normal 2n=2x (Hetharie, 2003). Karakter morfologi mempunyaiperan penting di dalam sistematika, sebabwalaupun banyak pendekatan yang dipakaidalam menyusun sistem klasifikasi, namunsemuanya berpangkal pada karaktermorfologi (Davis dan Heywood 1963).Selain itu pendekatan ini memberikan jalantercepat memperagakan keanekaragamandunia tumbuhan, dan dapat dipakai sebagaisistem

7 pengacuan umum yang dapatmenampung pernyataan data-data daribidang lainnya (Rifai 1976). Karaktermorfologi mudah dilihat sehinggavariasinya dapat dinilai dengan cepat jikadibandingkan dengan karakter-karakterlainnya, karena menurut Stace (1981)pembatasan takson yang baik dilakukandengan menggunakan karakterkarakteryang mudah dilihat, dan bukan olehkarakter-karakter yang tersembunyi.walaupun karakter bunga merupakankarakter yang paling berguna di dalamklasifikasi angiosperame, menurut Stone (1976) karakter vegetatiftertentu seperti panjang daun, lebar daun,ukuran duri, letak duri pada daun, jumlahurat daun, warna aurikula, warna braktea,posisi perbungaan, jumlah karpel perfalang, buah matang dan biji matang.perbedaan bentuk dan ukuran daun antaratumbuhan muda dan tumbuhan dewasajuga penting, sebab morfologi tumbuhanyang masih muda kadang-kadang sangatberbeda dengan morfologi tumbuhan yangdewasa, walaupun jenisnya sama. Kolkisin Kolkisin (C 22 H 25 O 6 N) merupakan suatu alkaloid yang berasal dari umbi dan biji tanaman Autumn crocus (Cholchicum autumnale Linn.) yang termasuk dalam Famili Liliaceaae (Gambar 1) (Chahal dan Gosal, 2002). Gambar 1. Rumus bangun senyawa kolkisin (Fajrina et al., 2012)

8 Kolkisin didalam program pemuliaan poliploidi dapat memperbaiki sifat tanaman dan menambah kejaguran; tanaman poliploidi mempunyai penampilan morfologi meliputi daun, bunga, batang, dan lebih vigor dibanding tanaman diploid (Hetharie, 2003). Duplikasi kromosom menggunakan kolkisin telah lama digunakan pada program pemuliaan tanaman. Kolkisin merupakan suatu campuran yang secara efektif menghentikan mitosis pada fase pembelahan anafase, telah ditemukan dan mempunyai efek yang signifikan pada induksi poliploid. Pada tanaman kebanyakan, poliploidi buatan sering digunakan untuk memperbesar ukuran sel, mendorong ke arah perbesaran organ reproduki dan organ vegetatif, sehingga pertumbuhan dan produksi meningkat (Adaniya dan Shira, 2001). Dalam pemuliaan tanaman, untuk menentukan ukuran tingkatan ploidi penting dengan cara yang sederhana dan cepat yaitu mengukur dengan berbagai langkah-langkah pada pemuliaan tanaman. Pada banyak jenis tanaman, memiliki korelasi antara ukuran ploidi dan karakteristik fisiologis seperti urutan kloroplas pada sel pengawal, ukuran sel stomata, ukuran stomata dan ukuran diameter tepung sari (Omidbaigi et al, 2010). Larutan kolkisin dengan konsentrasi yang kritis mencegah terbentuknya benang-benang plasma dari gelendong inti (spindel) sehingga pemisahan kromosom pada anafase dari mitosis tidak berlangsung dan menyebabkan penggandaan kromosom tanpa pembentukan dinding sel. Proses mitosis mengalami modifikasi, dan dinamakan C-mitosis. Karena tidak terbentuk spindel, maka kromosom-kromosom tetap tinggal berserakan dalam sitoplasma (pada stadium C-metafase). Pada stadium ini kromosom-kromosom memperlihatkan

9 gambaran yang khas, yaitu seperti tanda silang. Akan tetapi kromosom-kromosom dapat memisahkan diri pada sentromernya dan dimulailah C-anafase. Selanjutnya terbentuk dinding nukleus sehingga nukleus restitusi mengandung jumlah kromosom lipat dua. Apabila pengaruh dari kolkisin telah menghambur, sel poliploid yang baru dapat membentuk spindel pada kedua kutubnya dan membentuk nukleus anakan poliploid seperti pada telofase dari mitosis biasanya. Akan tetapi jika konsentrasi larutan kolkisin yang kritis dibiarkan terus berlanjut, maka pertambahan genom akan mengikuti suatu deret ukur seperti 4n, 8n, 16n dan seterusnya (Suryo, 2007). Setiap jenis atau varietas tanaman memiliki daya ketahanan yang berbeda terhadap konsentrasi kolkisin yang diberikan sehingga suatu metode yang berhasil diterapkan pada suatu jenis atau varietas tanaman tidak langsung dapat diterapkan pada jenis atau varietas lainnya. Oleh karena itu perlu dilakukan penelitian untuk mendapatkan metode yang efektif untuk menghasilkan keragaman somaklonal yang tinggi (Damayanti dan Roostika, 2015). Kromosom Bagian terkecil dari tubuh makhluk hidup dinamakan sel, inti sel ataunukleus (karyon) terdiri dari: selaput (karyotheca), plasma (karyoplasma ataunukleoplasma), anak inti (nukleolus) dan kromosom. Kromosom adalahpembawa bahan keturunan dan mengandung gen-gen dan merupakan saranabagi pemindahan gen (bahan keturunan atau materi genetik) yang mengatur penampilan sifat-sifat keturunan dari satu generasi ke generasi berikutnyapada organisme. Kromosom merupakan jalinan benang-benang halus yangberpilin-pilin longgar dan diselimuti protein (disebut kromonema) dalamplasma inti yang

10 mudah mengikat zat warna. Selama sel membelah, pilinantersebut menjadi sangat rapat sehingga memendek dan membesar sehinggadapat diamati dengan jelas bagian-bagiannya di bawah mikroskop (Yatim,1986). Penggandaan kromosom merupakan salah satu upaya seleksi untuk meningkatkan mutu tumbuhan baik berupa peningkatan kandungan metabolit sekundernya maupun toleransinya terhadap faktor lingkungan terutama lingkungan yang ekstrim. Konsentrasi pemakaian kolkisin sebagai senyawa penginduksi poliploidi beragam tergantung pada jenis tumbuhan (Fajrina et al., 2012). Berdasarkan bentuk, jumlah dan ukuran kromosom dapat dibuat kariotipe atau kariogram dan idiogram. Kariotipe adalah susunan kromosomyang berurutan menurut panjang dan bentuknya. Kariotipe berasal dari kata karyon = inti dan typos = bentuk. Setiap spesies makhluk memiliki bentuk danjumlah kromosom yang berbeda sehingga kariotipe juga berbeda. Kariotipe berperan dalam pengamatan sifat keturunan. Kelainan pada kariotipe berhubungan dengan anatomi, morfologi dan fisiologi (Setyawan dan Sutikno, 2000). Pada penelitian Winarto (2011) metode pewarnaan kromosom pada akar Anthurium (Araceae) yang terbaik adalah modikfikasi metode dengan pemanasan ujung akar pada 1N HCl : asam asetat 45 % (3:1 v/v) selama 10 menit dan perlakuan aseto orcein selama 15 menit. Pengamatan kromosom menggunakan mikroskop, seringkali mengalami kendala kromosom yang tidak tampak. Jurcak (1999) menyatakan terdapat beberapa kesalahan yag sering dilakukan dan penyebabnya dalam pengamatan kromosom yang dapat terlihat pada tabel berikut:

11 Tabel 1. Kesalahan dan Penyebab Kromosom Tidak Tampak pada Pengamatan di Bawah Mikroskop No. Kesalahan Penyebab 1. Inti terwarnai dengan jelas, tetapi a. Pemotongan material tunas tidak tahapan mitosis tidak terlihat. pada waktu yang tepat. 2. Kromosom tidak jelas a. Waktu fiksasi terlalu pendek. b. Konsentrasi pewarna terlalu rendah. c. Pewarna yang digunakan sudah rusak atau terlalu lama disimpan. d. Suhu selama pewarnaan terlalu rendah. e. Waktu pewarnaan terlalu pendek. 3. Beberapa sel menumpuk satu sama lain. 4. Sel meristem pecah, tahapan mitosis atau kromosom tidak dapat dilihat. a. Waktu melunakkan jaringan terlalu pendek. b. Pembuatan larutan untuk maserasi tidak tepat. c. Kurang tenaga ketika menekan gelas objek. a. Gelas penutup bergeser jauh ketika ditekan. b. Gelas penutup ditekan terlalu keras atau berulang-ulang.