METODE KONTAK TIDAK LANGSUNG UNTUK UJI KEPEKAAN PINJAL PADA TIKUS TERHADAP INSEKTISIDA

dokumen-dokumen yang mirip
PERBANDINGAN EFEKTIVITAS PENGABUTAN DAN PENABURAN MALATHION 5% DALAM UPAYA PENGENDALIAN VEKTOR PENYAKlT TULAR RODENSIA

BAB I PENDAHULUAN. A. Latar Belakang. Pes merupakan penyakit yang disebabkan oleh infeksi bakteri Yersinia pestis.

PEMASANGAN PERANGKAP, PEMERIKSAAN (IDENTIFIKASI), DAN PENYISIRAN TIKUS (PENANGKAPAN EKTOPARASIT)

BAB V PEMBAHASAN. A. Pemantauan Vektor Penyakit dan Binatang Pengganggu. dan binatang pengganggu lainnya yaitu pemantauan vektor penyakit dan

EKTOPARASIT (FLEAS) PADA RESERVOIR DI DAERAH FOKUS PEST DI KABUPATEN BOYOLALI PROVINSI JAWA TENGAH

ABSTRACT. Key word : Ectoparasites of rats, index diversity, Merapi Mountain Central Java. ABSTRAK

Hasan Boesri dan Damar Tri Boewono Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Vektor dan Reservoir Penyakit Salatiga

BAB I PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang

BAB I PENDAHULUAN. yang dapat menimbulkan Kejadian Luar Biasa (KLB) atau wabah, sehingga

STUDI POPULASI VEKTOR MURINE TYPHUS (XENOPSYELLA CHEOPIS) DI DAERAH ENDEMIS LEPTOSPIROSIS, KOTA SEMARANG, JAWA TENGAH

Key word : mouse, plague, ectoparasites

SPESIES TIKUS, CECURUT DAN PINJAL YANG DITEMUKAN DI PASAR KOTA BANJARNEGARA, KABUPATEN BANJARNEGARA TAHUN 2013

STATUS KERENTANAN NYAMUK Aedes aegypti TERHADAP INSEKTISIDA MALATION 5% DI KOTA SURABAYA. Suwito 1 ABSTRAK

BAB II TINJAUAN PUSTAKA

BAB I PENDAHULUAN. kehidupan dan kesehatan manusia. Keadaan lingkungan dan pola hidup

BAHAN DAN METODE. Metode Penelitian

merupakan salah satu vektor limphatik quinquefasciatus telah diupayakan dengan

I. MATERI DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Februari-Mei 2014 di Laboratorium. Universitas Islam Negeri Sultan Syarif Kasim Riau.

BAB I PENDAHULUAN. karena kebiasaan tikus yang suka mengerat benda-benda disekitarnya,

III. METODE PENELITIAN. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Biocontrol, Divisi Research and

BAB I PENDAHULUAN A. LATAR BELAKANG

BAB III METODE PENELITIAN. Laboratorium Entomologi Balai Penelitian Tanaman Tembakau dan Serat (BALITTAS) Karangploso,

BAB I PENDAHULUAN. yang lalu. Salah satu bukti hubungan baik tersebut adalah adanya pemanfaatan

STUDI KEPADATAN TIKUS DAN EKTOPARASIT DI DAERAH PERIMETER DAN BUFFERPELABUHAN LAUT CILACAP Yudhi Cahyo Priyotomo

TINJAUAN PUSTAKA Tikus

BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Hama Jurusan Proteksi Tanaman

UJI EFIKASI LARVISIDA BERBAHAN AKTIF PYRIPROXYFEN SEBAGAI INSECT GROWTH REGULATOR (IGR) TERHADAP LARVA Anopheles aconitus DI LABORATORIUM

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini akan dilaksanakan pada bulan September - Oktober 2014 di

BAB III METODE PENELITIAN. menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan konsentrasi ekstrak daun

3 BAHAN DAN METODE. Kecamatan Batulayar

Kompetensi. created by darmadi ahmad MAMALIA. Memahami perbedaan dan persamaan pencirian serta pengelompokan pada Mamalia CIRI-CIRI UMUM PENYEBARAN

UJI EFIKASI REPELEN X TERHADAP NYAMUK Aedes aegypti, Culex quinquefasciatus DAN Anopheles aconitus DI LABORATORIUM

TINJAUAN PUSTAKA. Telur berwarna putih, berbentuk bulat panjang, dan diletakkan

IDENTIFIKASI TIKUS DAN DAN PINJAL

TINJAUAN PUSTAKA Tikus Rumah, Tikus Pohon, dan Tikus Sawah Klasifikasi dan Morfologi Bioekologi

HASIL DAN PEMBAHASAN

III. METODE PENELITIAN. Rancangan penelitian yang digunakan dalam penelitian ini adalah

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental laboratorium dengan

BAB I PENDAHULUAN A. Latar Belakang

BAB I PENDAHULUAN A. Latar Belakang

EFIKASI KELAMBU BERINSEKTISIDA PERMANET VESTERGAARD - FRANDSEN YANG DIGUNAKAN UNTUK PEMBERANTASAN MALARIA DI DARAH ENDEMIS BUKIT MANOREH

BAHAN DAN METODE. Tempat dan Waktu. Bahan dan Alat

TINJAUAN PUSTAKA. Kutu penghisap merupakan parasit penghisap darah mamalia yang

III. BAHAN DAN METODE. Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Komponen Bioaktif, Jurusan

BAB II TINJAUAN PUSTAKA

PENYELIDIKAN KEJADIAN LUAR BIASA DI GIANYAR. Oleh I MADE SUTARGA PROGRAM STUDI ILMU KESEHATAN MASYARAKAT FAKULTAS KEDOKTERAN UNIVERSITAS UDAYANA 2015

BAHAN DAN METODE Lokasi Pengambilan Sampel

BIOLOGI TIKUS BIOLOGI TIKUS. Kemampuan Fisik. 1. Menggali (digging)

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Penelitian Bahan dan Alat

TINJAUAN PUSTAKA. Menurut Kalshoven (1981) ulat grayak diklasifikasikan sebagai berikut:

Hasan Boesri dan Damar Tri Boewono Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Vektor dan Reservoir Penyakit Jl. Hasanudin 123 Salatiga

BAB I PENDAHULUAN. Menurut Rencana Strategis Kementrian Kesehatan (2011), Pembangunan

Keywords : density, rats, ectoparasites

Gambar 3. Kelapa Sawit (Elaeis guineensis Jacq)

BUDIDAYA LEBAH MADU. Oleh ODJON SOLIKIN, SP. Penyuluh Kehutanan Kab. Ciamis

STANDAR PENGASAPAN (THERMAL FOGGING) DAN PENGABUTAN (ULTRA LOW VOLUME) TERHADAP PERSENTASE KEMATIAN NYAMUK AEDES AEGYPTI DAN CULEX QUINQUEFASCIATUS

BAB III METODE PENELITIAN

HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB II TINJAUAN PUSTAKA. dapat memasukkan kelenjar ludah kedalam kulit inangnya serta mengangkut

I. PENDAHULUAN. merupakan salah satu masalah kesehatan masyarakat di negara negara

Jurnal Kesehatan Masyarakat

KEMENTERIAN PENDIDIKAN DAN KEBUDAYAAN DIREKTORAT JENDERAL PENDIDIKAN MENENGAH DIREKTORAT PEMBINAAN SEKOLAH MENENGAH ATAS

JENIS_JENIS TIKUS HAMA

BAHAN DAN METODE Tempat dan Waktu Bahan dan Alat Metode Penelitian Perbanyakan B. tabaci dan M. persicae

BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA

III. BAHAN DAN METODE PENELITIAN. Penelitian ini dilaksanakan pada bulan April sampai dengan September 2012

UJI KERENTANAN NYAMUK AEDES SP. TERHADAP FOGGING INSEKTISIDA MALATHION 5% DI WILAYAH KOTA DENPASAR SEBAGAI DAERAH ENDEMIS DBD TAHUN 2016

UJI RESISTENSI LARVA NYAMUK AEDES AEGYPTI TERHADAP ABATE (TEMEPHOS) 1% DI KELURAHAN MAYANG MANGURAI KOTA JAMBI PADA TAHUN 2016

III. METODE PENELITIAN. Desain Penelitian pada penelitian ini adalah eksperimental dengan

PETUNJUK PENGAMBILAN SAMPEL DNA SATWA LIAR. Petunjuk Penggunaan Kit (Alat Bantu) untuk Pengambilan Sampel DNA Satwa Liar

EFEKTIVITAS EKSTRAK ETANOL DAUN RAMBUTAN (Nephelium lappaceum L.)TERHADAP KEMATIAN LARVA NYAMUK Aedes aegypti INSTAR III

Gambar 1. Gejala serangan penggerek batang padi pada stadium vegetatif (sundep)

RUMAH SAKIT IBU DAN ANAK PURI BETIK HATI. Jl. Pajajaran No. 109 Jagabaya II Bandar Lampung Telp. (0721) , Fax (0721)

Resistensi Malathion 0,8% dan Temephos 1% pada Nyamuk Aedes Aegypti Dewasa dan Larva di Kecamatan Buah Batu Kota Bandung

BAB III METODE PENELITIAN

ACARA I PENGGUNAAN LALAT Drosophila SEBAGAI ORGANISME PERCOBAAN GENETIKA

III. METODE PENELITIAN

BAB 4 HASIL DAN PEMBAHASAN

BAB I PENDAHULUAN. A. Latar Belakang. Penyakit demam berdarah dengue (DBD) adalah salah. satu penyakit yang menjadi masalah di negara-negara

2015 LUWAK. Direktorat Pengembangan Usaha dan Investasi Direktorat Jenderal Pengolahan dan Pemasaran Hasil Pertanian Kementerian Pertanian

PENGARUH BENTUK DAN LETAK CELAH PELOLOSAN (Escape Gap) PADA ALAT TANGKAP PENGILAR TERHADAP KELESTARIANSUMBERDAYA IKAN

BAB III METODE PENELITIAN. penelitan the post test only control group design. 1) Larva Aedes aegypti L. sehat yang telah mencapai instar III

Bab III METODE PENELITIAN. eksperimen. Penelitian eksperimen adalah penelitian yang dilakukan dengan

BAB I PENDAHULUAN Latar Belakang

BAB I PENDAHULUAN. A. Latar Belakang. Demam Berdarah Dengue (DBD) pertama kali ditemukan. tahun 1953 di Fillipina. Selama tiga dekade berikutnya,

BAB I PENDAHULUAN. Serangga mempunyai berbagai peran di ekosistem yang oleh manusia

Balai Litbang P2B2 Banjarnegara. SURVEI ENTOMOLOGI MALARIA dan DBD

BAB I PENDAHULUAN. utama di Asia Tenggara termasuk Indonesia. Pada tahun 2010, Indonesia UKDW

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian ini berbentuk eksperimen semu (Quasi ekspperiment) yaitu meneliti

BAHAN DAN METODE Lokasi dan Waktu Penelitian Metode Penelitian Pengamatan Tempat Perindukan Aedes

EFEKTIFITAS VECTRON 20 WP TERHADAP NYAMUK ANOPHELES SUNDAICUS DI DESA PENAGA, KECAMATAN TANJUNG UBAN KABUPATEN BINTAN, KEPULAUAN RIAU

INSTRUMEN OBSERVASI PENILAIAN FUNGSI KESEIMBANGAN (SKALA KESEIMBANGAN BERG) Deskripsi Tes Skor (0-4) 1. Berdiri dari posisi duduk

BAB III METODE PENELITIAN. penelitian the post test only control group design. Yogyakarta pada tanggal 21 Desember Januari 2016.

BAB III METODE PENELITIAN. Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Entomologi BALITKABI-Malang pada bulan

BAHAN DAN METODE. Bahan

Laboratorium Kimia SMA... Praktikum II Kelas XI IPA Semester I Tahun Pelajaran.../...

BAB II TIKUS DAN CECURUT. A. Jenis-Jenis Tikus

TEKNIK PENDUKUNG DITEMUKANNYA PURUN TIKUS (ELEOCHARIS DULCIS) SEBAGAI INANG ALTERNATIF BAGI HAMA PENGGEREK BATANG PADI PUTIH (SCIRPOPHAGA INNOTATA)

II. TELAAH PUSTAKA. Gambar 2.1 Morfologi nyamuk Aedes spp. (Wikipedia, 2013)

III. METODE PENELITIAN. Penelitian ini menggunakan metode eksperimental laboratorium. dengan Rancangan Acak Lengkap (RAL) atau completely randomized

Transkripsi:

METODE KONTAK TIDAK LANGSUNG UNTUK UJI KEPEKAAN PINJAL PADA TIKUS TERHADAP INSEKTISIDA Ristiyanto, Farida Dwi Handayani dan Arief Mulyono Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Vektor dan Reservoir Penyakit Jl. Hasanudin 123, Telp. 0298-327096, Salatiga THE SUSCEPTIBILITY TEST OF FLEAS ON RATS AGAINTS INSECTICIDE USING THE INDIRECT CONTACT METHOD ABSTRACT On January 2005, an indirect contact method to test the susceptibility of flea in rat was conducted in the plague laboratory Nongkojajar Health Center, Pasuruan Regency. This study was aimed to know the appropriateness of a gadget to test the susceptibility of fleas in rats.the result show that the gadget can be used to examine the susceptibility of fleas on rats toward insecticide. Domestic fleas Xenopsylla cheopis and sylvatic flea Stivalius cognatus fleas were susceptible to fenitrothion 2,5%, by direct contact method was also susceptible in the indirect contact method. In the direct contact method, LT 50 for X. cheopis on domestic rats Rattus rattus diardii was 12 minutes, however in the indirect method 18 minutes were needed for LT 50. LT 95 for X. cheopis was 60,9 minutes for direct contact method and 62,3 minutes for indirect contact method. Sylvatic fleas S. cognatus in Rattus exulans, LT 50 was 16 minutes for the direct contact method and 31 minutes for the indirect contact method, whereas LT 95 was 59 minutes for the direct contact method and 114 minutes for the indirect contact method. Key words : Fleas susceptibility, indirect contact method, Xenopsylla cheopis, Stivalius cognatus ABSTRAK Pada bulan Januari 2005, uji metode tidak langsung untuk uji kepekaan pinjal pada tubuh tikus telah dilakukan di Laboratorium Pes Puskesmas Nongkojajar Kabupaten Pasuruan, Jawa Timur. Penelitian ini bertujuan mengetahui kelayakan alat uji kepekaan pinjal pada tubuh tikus terhadap insektisida (metode kontak tidak langsung).hasil penelitian menunjukkan bahwa alat uji kepekaan pinjal pada tubuh tikus terhadap insektisida (metode kontak tidak langsung) dapat digunakan untuk uji kepekaan pinjal. Pinjal Xenopsylla cheopis dan Stivalius cognatus peka terhadap insektisida fenitrothion 2,5%, baik dengan metoda kontak lagsung maupun metode kontak tidak langsung. LT 50 (Lethal Time 50%) pada metode kontak tidak langsung, pinjal X. cheopis yang diinvestasikan pada tikus rumah Rattus rattus diardii adalah 18 dan pada metode kontak langsung, LT 50 pinjal X. cheopis adalah 12. LT 95 pada pinjal yang sama untuk metode kontak langsung adalah 60,9 dan 62,3 untuk metode kontak tidak langsung. Pinjal tikus hutan S. Cognatus pada tikus ladang Rattus Exulans, LT 50 adalah 16 untuk metode kontak langsung dan 31 untuk metode kontak tidak lamgsung, sedangkan LT 95 untuk S. Cognatus pada metoda kontak langsung adalah 59 dan 114 untuk metode kontak tidak langsung. Kata kunci : Kepekaan pinjal, metode kontak tidak langsung, Xenopsylla cheopis, Stivalius cognatus JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 61

PENDAHULUAN Pinjal termasuk serangga holometabolous/metamorfosis sempurna, karena daur hidupnya melalui 4 stadium yaitu : telur - larva - pupa dewasa. Stadium pradewasa (telur, larva, dan pupa) hidup bebas di alam dan memakan seresah atau organisme renik lainnya, sedangkan stadium dewasa, pinjal bersifat parasit di permukaan tubuh inangnya (ektoparasit). Pinjal menyukai inang yang berambut seperti mamalia ordo Monotremata, Marsupialia, Insektivora, Chiroptera, Edentata, Pholidota, Lagomorpha, Rodentia, Carnivora, Hyracoidea, dan Artiodactyla, tetapi jarang ditemukan pada mamalia ordo Dermaptera, Primata, Tubulidentata, Proboscidia, atau Perissodactyla. Diantara jenis pinjal dan inangnya tersebut, yang paling penting berperan di bidang kesehatan adalah pinjal yang hidup pada mamalia bangsa rodentia khususnya tikus dan bangsa Carnivora, khususnya kucing dan anjing. Pinjal merupakan vektor utama penyakit pes dan murine typhus (Gratz, 1983). Pengetahuan bionomi jenis pinjal dan inangnya merupakan hal pokok untuk menduga risiko kejadian penyakit yang ditularkan pada manusia dan menentukan strategi pengendaliannya secara efektif. Pada penularan penyakit tertentu, jumlah pinjal per inang mempunyai makna epidemiologi. Peningkatan rata-rata jumlah jenis pinjal tertentu pada inang mengindikasikan risiko penularan pes dari tikus ke manusia di suatu daerah epizootik pes (Dennis T, D, 1999). Dalam penanggulangan pes, pengendalian pinjal merupakan prioritas utama. Prinsip ini pertama kali dikembangkan oleh Simond pada tahun 1898 yaitu, tindakan penanggulangan pes harus dimulai dengan pengendalian pinjal vektor pes lebih dahulu daripada pengendalian inang reservoirnya (Gratz, 1983). WHO merekomendasikan pengendalian pinjal untuk penanggulangan wabah pes adalah metode dusting. Dusting adalah penaburan bubuk insektisida pada tempat yang diduga sebagai jalan tikus (runway) atau sarang tikus (WHO, 1975). Di Indonesia, pengendalian pinjal vektor pes menerapkan metode tersebut. Tetapi untuk meningkatkan efisiensi dan pencemaran lingkungan, telah dikembangkan metode bumbung bambu (metode dust-pring ) atau pipa pralon berinsektisida (dust-lon ) (Sub. Direktorat Zoonosis, 1999). Disamping itu, pernah pula dilakukan penggunaan pengabutan insektisida (fogging) (Ristiyanto, 1995), Menurut Gratz, penyemprotan rumah dalam pemberantasan malaria dapat JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 62

menurunkan populasi pinjal di habitat rumah dan kebun, tetapi tidak berpengaruh pada pinjal di tubuh dan sarang tikus (Gratz, 1983). Sebelum melakukan pengendalian pinjal secara kimiawi (dusting), biasanya dilakukan uji kepekaan pinjal terlebih dahulu dengan alat yang telah ditentukan oleh World Health Organization (WHO, 1975). Test kit merupakan perangkat uji kepekaan pinjal terhadap insektisida yang telah direkomendasikan oleh World Health Organization (WHO). Alat, bahan serta cara penggunaannya tercantum dalam lembar kerja WHO tahun 1975 dengan judul Instruction for determining the susceptibility or resistance of fleas to insecticide WHO/VBC/75.588. Rev.1. Prinsip alat tersebut adalah kontak langsung pinjal dengan lembar kertas berinsektisida yang diuji pada konsentrasi dengan waktu paparan yang telah di tentukan. Cara ini dikenal dengan metode kontak langsung (WHO. 1975). Dalam rangka mengembangkan metode kontak langsung dan untuk memperoleh data kepekaan pinjal pada kondisi yang sebenanrnya, maka diuji coba metoda kontak tidak langsung. Metode ini berprinsip pada uji insektisida terhadap pinjal yang masih berada pada tubuh tikus. Sejauh ini belum diketahui adanya publikasi tentang metode tidak langsung tersebut. Uji kepekaan pinjal pada tubuh tikus terhadap insektisida ini disebut metode kontak tidak langsung. Mulai tahun 1994 hingga kini metode pengendalian vektor pes di daerah enzootik pes Kabupaten Pasuruan, Jawa Timur menggunakan bumbung bambu (atau pipa pralon) berinsektisida (Sub. Direktorat Zoonosis, 1999). Terkait pada metode pengendalian ini, maka perlu dipertimbangkan adanya alat uji kepekaan pinjal dengan memanfaatkan insektisida yang menempel di tubuh tikus. Berdasarkan uraian tersebut, maka makalah ini memperkenalkan metode, mengkaji dan mengetahui efektivitas metode kontak tidak langsung. BAHAN DAN CARA KERJA Lokasi dan waktu penelitian Penelitian ini dilakukan di Laboratorium Pes Tutur Nongkojajar, Kabupaten Pasuruan, Jawa Timur pada bulan Januari 2005. JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 63

Komposisi bahan dan alat uji untuk 3 ulangan Alat uji bumbung bambu/pipa pralon berinsektisida terdiri atas : 1. 1 buah kotak papan bertutup berukuran 100 x 20 x 20 cm 2. 1 batang pipa pralon diameter 10 cm dan panjang 40 cm. Bila tidak ada pipa pralon dapat digunakan bumbung bambu dengan ukuran sama. 3. 6 kantong kain berukuran 30 x 40 cm. 4. 1 buah nampan putih/ember putih 5. 2 buah sisir 6. 10 lembar formulir 7. alat tulis secukupnya 8. 6 gram serbuk insektisida yang akan diuji (insektisida fenitrothion) 9. 30 gram umpan jagung 10. 2 aspirator pinjal 11. 1 buah Stopwatch 12. 12 tabung reaksi dan 1 rak tabung 13. 5 ekor tikus perlakuan dan 1 ekor tikus kontrol 14. 40 ekor pinjal Xenopsylla cheopis dan 20 ekor pinjal Stivalius cognatus. Cara kerja 1. Pembuatan kotak uji Kotak uji bertutup dibuat dari papan kayu ukuran 100 x 20 x 20 cm, yang kemudian dibagi melintang menjadi 2 ruangan. Ruang I merupakan ruang untuk tikus dan pinjal yang akan diuji. Ruang II untuk tempat pipa paralon (diameter 10 cm dan panjang 40 cm) berinsektisida. Skema kotak uji dan perlengkapannya terpampang di gambar 1. Pipa pralon dilengkapi dengan sekat alat dorong yang berupa lembar plastik/mika berbentuk bulat (diameter 10 cm dan tebal 0,4 cm). Sebelah kiri dan kanan lempeng dorong diberi pegangan kawat kecil, yang memungkinkan lempeng digerakkan ke depan dan ke belakang. Agar lempeng dorong mudah digerakkan dari luar, maka kotak uji diberi celah membujur di sisi kiri dan kanan. Dengan demikian, tikus yang ada di dalam pipa pralon mudah didorong keluar. Karena kotak uji dan pipa pralon terletak bebas, maka pipa pralon dapat mudah dilepas dan diganti. Sekat pemisah kotak uji berupa kawat kasa tebal ukuran 15 x 15 cm. Sekat ini diberi pegangan kawat panjang 10 cm di sebelah kiri dan JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 64

kanan. Agar sekat ini dapat dikeluar masukkan, maka di tengah-tengah kotak sisi kanan dan kiri kotak kayu dibuatkan celah melintang. Dengan gerakan tersebut memungkinkan untuk membuka atau menutup pipa pralon tempat tikus. Tutup kotak berupa kawat kasa anti tikus ukuran 30 x 15cm yang diberi bingkai kayu. Masing-masing ruang (I dan II) mempunyai tutup yang terpisah. Gambar 1. Skema alat uji kepekaan pinjal pada badan tikus Pengambilan sampel tikus dan pinjal a. Koleksi tikus Tikus ditangkap dengan 200 perangkap kawat berukuran 21 x 12 x 10cm, berumpan kelapa bakar. Penangkapan dilakukan di habitat rumah dan kebun/ladang. Di masing-masing habitat di pasang 100 perangkap. Perangkap dipasang pada sore hari pukul 15.00 WIB selesai, kemudian diambil keesokan harinya pukul 07.00 selesai. Tikus yang tertangkap dimasukkan ke dalam kantong kain ukuran 30 x 40 cm, diberi label (tanggal, habitat, dan kode lokasi), selanjutnya dibawa ke laboratorium untuk diproses JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 65

Tikus dalam kantong kain dibersihkan dari ektoparasit terutama pinjalnya dengan sisir. Cara membersihkan tikus dari ektoparasitnya, yaitu tikus dipegang pada bagian leher dan badan sedemikian rupa sehingga tikus tetap hidup. Kemudian kantong dibuka perlahan-lahan. Tubuh tikus disisir pada bagian punggung dan perut secara hatihati di atas nampan. Arah penyisiran berlawanan dengan arah tumbuh rambut tikus. Selanjutnya, tikus dicari ektoparasitnya pada bagian telapak kaki, pangkal ekor, ujung hidung, dan telinga. Tikus yang telah bersih dari ektoparasit dimasukkan dalam perangkap dan ditutup dengan kantong kain agar tikus beradaptasi untuk beberapa saat. b. Koleksi pinjal Jenis pinjal yang digunakan dalam penelitian ini adalah pinjal X. cheopis dan S. cognatus. Pinjal X. cheopis diambil dari tikus rumah R. rattus diardii yang ditangkap di Dusun Sulorowo, Desa Kayukebek, Kecamatan Tutur Nongkojajar, Kabupaten Pasuruan, Jawa Timur. Adapun pinjal S. cognatus diambil dari tikus kebun R. exulans yang ditangkap. Kedua jenis pinjal yang tertangkap di daerah tersebut dipelihara di Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Vektor dan Reservoir Penyakit (B2P2VRP), Salatiga 2. Uji kepekaan pinjal pada badan tikus a. Cara menginvestasikan pinjal pada tikus Tikus yang telah bersih dari ektoparasit dan berada dalam perangkap tikus dimasukkan dalam kantong kain. Kemudian kantong kain dibuka secara perlahan-lahan sehingga dapat untuk pintu masuk tabung reaksi. Kemudian tabung reaksi yang berisi pinjal dituangkan pada tubuh tikus. Saat menuangkan tabung reaksi berisi pinjal pastikan tikus dalam keadaan tenang dan tepat pada badan tikus. Selanjutnya kantong tikus ditutup kembali, diamkan beberapa saat. b. Cara pengujian Pipa pralon yang telah diisi insektisida dan umpan jagung ditempatkan pada ruang II kotak uji dan dipastikan pipa pralon JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 66

tersebut tidak dapat bergerak/bergesar. Kawat kasa ditutupkan tepat pada mulut pipa pralon dan pintu atas ruang I ditutup rapat. Tikus dalam kantong kain dan telah berpinjal dimasukkan dalam ruang I kotak uji, kemudian pintu atas kotak uji ruang I ditutup rapat. Kantong kain diperiksa secara teliti, apabila terdapat pinjal yang tertinggal pada kantong kain tersebut diambil dengan menggunakan aspirator, kemudian dimasukkan dalam tabung reaksi dan selanjutnya tabung tersebut dituangkan pada badan tikus yang berada pada ruang I kotak uji melalui pintu atas yang hanya tertutup kawat kasa bagian tengahnya. Kemudian kawat kasa pemisah ruang I dan II dibuka lebar-lebar, maka tikus akan masuk dalam pipa pralon/bumbung bambu dengan sendirinya, karena gelap. Setelah tikus masuk dalam pipa pralon/bumbung bambu diamkan beberapa saat sesuai dengan waktu yang telah ditentukan. Sesudah waktu yang telah ditentukan habis, maka pintu ruang I dibuka, demikian pula kawat pemisah ruang I dan II dibuka secara pelanpelan, dan segera lubang pinta pralon/bumbung bambu segera diberi kantong kain. Kemudian tikus dikeluarkan dari pipa pralon dengan cara mendorong sekat yang berada dalam pipa pralon ke depan, dengan demikian tikus akan terdorong ke luar masuk dalam kantong kain. Setelah berada dalam kantong kain tikus disikat di atas nampan putih, pinjal yang jatuh di nampan diambil dengan aspirator dan disimpan dalam tabung reaksi yang telah disediakan. Pinjal yang mati dan hidup dihitung dan dicatat dalam formulir, selanjutnya disimpan selama 24 jam. Pada uji ini lama waktu paparan adalah 15, 30, 60, 120 dan 1440 dan ulangan sebanyak 3 kali, serta 1 kontrol. Pinjal yang digunakan adalah X. cheopis diinfestasikan pada R. rattus diardii dan S. cognatus pada R. exulans. Untuk kontrol uji ini dipakai seekor tikus rumah R. rattus diardii yang diinfestasi pinjal X. cheopis sebanyak 10 ekor dan ditempatkan di perangkap kawat yang ditutup dengan kain. JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 67

3. Uji kepekaan pinjal dengan metode standard WHO/VBC/ 75.588. Rev.1 Pada uji ini lama waktu paparan adalah 15, 30, 60, 120 dan 1440 dan ulangan sebanyak 3 kali, serta 1 kontrol. Pinjal yang digunakan adalah X. cheopis dan S. ognatus. Untuk kontrol digunakan pinjal X. cheopis sebanyak 10 ekor dan ditempatkan di tabung reaksi yang ditutup kapas. Cara kerja uji kepekaan pinjal dilakukan sesuai dengan prosedur WHO/VBC/ 75.588. Rev.1. ANALISIS DATA Data hasil uji kepekaan pinjal pada badan tikus (metode kontak tidak langsung) dianalisis dengan probit v.6. dan dibandingkan dengan hasil uji kepekaan pinjal dengan metode standard WHO/VBC/75.588. Rev.1 (metode kontak langsung) menggunakan uji t berpasangan (Cambell dan Stanley, 1966). HASIL DAN PEMBAHASAN Hasil uji kepekaan pinjal X. cheopis dan S. cognatus pada badan tikus terhadap insektisida fenitrothion 2,5 % (metode kontak tidak langsung) dapat dilihat pada tabel 1. Hasil analisis probit memperlihatkan bahwa, LT 50 (Lethal time 50%) pinjal X. cheopis yang diinvestasikan pada tikus rumah R. rattus diardii dan tikus ladang R. exulans masing-masing berturut-turut selama 12, dan LT 95 (Lethal time 95%) selama 60,9. Untuk pinjal S. cognatus ladang R. exulans LT 50 dan LT 95, yaitu masing-masing berturut-turut 16 dan 59. JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 68

Tabel 1. Mortalitas, LT 50 dan LT 95 pinjal X. cheopis pada tikus R. rattus diardii dan pinjal S. cognatus pada tikus R. exulans dengan uji metode kontak tidak langsung terhadap insektisida fenitrothion 2,5 %. Jenis pinjal Jumlah pinjal yang diuji Jumlah pinjal kontrol Jumlah kematian dalam ekor (%) per 15 30 60 120 1440 LT 50 LT 95 X. cheopis 30 10* 16 23 30 30 30 (53,3) (76,7) (100) (100) (100) 18 62,3 S. cognatus 15 5** 6 7 13 15 15 (40) (46,7) (86,7) (100) (100) 31 114 Keterangan : 3 ulangan setiap perlakuan dan 1 kontrol (1 tabung/ulangan atau kontrol berisi 10 ekor pinjal X. cheopis atau 5 ekor pinjal S. cognatus); (1)* = kematian pinjal S. cognatus pada kontrol 1 ekor (10%) Hasil uji kepekaan pinjal X. cheopis dan S. cognatus terhadap insektisida fenitrothion 2,5% dengan metode standard WHO/VBC/75.588. Rev.1 diperlihatkan pada tabel 2. Hasil analisis probit menunjukkan bahwa, LT 50 untuk pinjal X. cheopis, yaitu 12, sedangkan untuk pinjal S. cognatus, yaitu 16. LT 95 kedua jenis pinjal tersebut ± 1 jam (60 ). Hasil uji ke dua metode tersebut, baik dengan metode kontak langsung WHO/VBC/75.588. Rev.1 dan metode kontak tidak langsung diprediksikan bahwa, pinjal X. cheopis dan S. cognatus masih peka terhadap fenitrothion 2,5%,. Hasil tersebut juga menunjukkan bahwa, semua pinjal X. cheopis pada badan tikus rumah R. rattus diardii dan tikus ladang R. exulans akan terbunuh apabila ke dua tikus tersebut berada di dalam pipa pralon/bumbung bambu berinsektisida fenitrothion 2,5% selama 62,3, sedangkan untuk S. cognatus 114. Menurut Lim et al (1980), pinjal X. cheopis dan S. cognatus yang diperoleh dari rumah dan ladang Kecamatan Selo Kabupaten Boyolali peka terhadap fenitrothion 1%, dengan LT 50 selama 31 untuk X. cheopis dan 70 untuk S. cognatus, sedangkan LT 95.selama 111 untuk X. cheopis dan 110 untuk S. cognatus. JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 69

Tabel 2. Mortalitas, LT 50 dan LT 95 pinjal X. cheopis dan pinjal S. cognatus dengan uji metode kontak langsung (metode standard WHO/VBC/75.588. Rev.1) terhadap insektisida fenitrothion 2,5% Jumlah pinjal / jenis tikus Jumlah pinjal yang diuji Jumlah pinjal kontrol X. cheopis 30 10* Jumlah kematian pinjal dalam ekor (%) 15 19 (53,3) 30 23 (76,7) 60 30 (100) 120 30 (100) 1440 30 (100) LT 50 LT 95 12 60,9 S.. cognatus 15 5(1)** 7 (40) 11 (46,7) 13 (86,7) 15 (100) 15 (100) 16 59 Keterangan : 3 ulangan setiap perlakuan ; setiap ulangan 1 ekor tikus R. rattus diardii diinvestasi 10 ekor pinjal X. cheopis dan 1 ekor tikus R. exulans diinvestasi 5 ekor pinjal S. cognatus ; * = kontrol, 1 ekor tikus R. rattus diardii diinvestasi 10 ekor pinjal X. cheopis ; ** = kontrol, 1 ekor tikus R. exulans diinvestasi 5 ekor pinjal S. cognatus Uji ke dua metode, metode kontak langsung dan metode kontak tidak langsung, memperlihatkan hasil yang sama, yaitu pinjla X. cheopis dan S. cognatus masih peka terhadap insektisida fenitrothion 2,5%. Tetapi apabila dilihat secara seksama (uji t-berpasangan), ada perbedaan yang bermakna tentang lama waktu yang dibutuhkan insektisida untuk membunuh pinjal (p<0,05). Tabel 3. Hasil uji t berpasangan waktu yang dibutuhkan LT50 dan LT95 pada metode kontak langsung dan metode kontak tidak langsung untuk pinjal X. cheopis dan S. cognatus. Jenis pinjal/ Metode kontak langsung Metode kontak tidak langsung jumlah jenis tikus LT 50 LT 95 LT 50 LT 95 X. cheopis 12ac 60,9bd 18ac 62,3bd S. cognatus 16eg 59fh 31eg 114fh Keterangan : Huruf yang sama menunjukkan perbedaan yang bermakna (p<0,05). JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 70

Waktu yang dibutuhkan insektisida fenitrothion 2,5% untuk membunuh pinjal dengan metode kontak langsung (LT 50 12 dan LT 95 60,9 untuk X. cheopis ; LT 50 16 dan LT 95 59 untuk S. cognatus) relatif lebih cepat daripada dengan metoda tidak langsung (LT 50, 18 dan : LT 95 62,3 untuk pinjal X. cheopis pada R. rattus diardii : LT 50 31 dan LT 95 114 untuk pinjal S. cognatus pada R. exulans). Perbedaan lama waktu ke dua metode tersebut kemungkinan berhubungan dengan keberadaan pinjal terhadap insektisida. Pada metode kontak tidak langsung kemungkinan keberadaan pinjal jauh dari insektisida yang ditaburkan pada dasar pipa dan menempel pada bagian ventral tubuh tikus. Akibat cara penaburan ini insektisida tidak mudah tersebar merata pada tubuh tikus. Sebaliknya, pada metode kontak langsung insektisida pada kertas uji kontak langsung dengan pinjal. Menurut Kartman, kebiasaan tikus membersihkan badannya dengan menjilati dan menggosok-gosokkan kaki ke seluruh badan telah menyebabkan tersebarnya insektisida yang menempel di bagian ventral ke seluruh bagian tubuh (Kartman, 1958). Pada pelaksanaan metode tidak langsung ini masih ditemui kesulitan untuk mencegah terlepasnya tikus dari kotak uji. Kesulitann itu terutama terjadi pada saat menginvestasikan pinjal ke tubuh tikus, memasukkan tikus ke ruang I, dan mengeluarkan tikus dari pipa pralon. Untuk mencegah lepasnya tikus mungkin perlu ketelitian, kehati-hatian, dan keterampilan pelaksana penelitian. Selain itu, konstruksi kotak uji perlu disempurnakan. KESIMPULAN DAN SARAN Dari penelitian ini dapat ditarik kesimpulan dan saran sebagai berikut: 1. Metode kontak langsung dapat digunakan untuk uji kepekaan pinjal terhadap insektisida. Pinjal X. cheopis ( pada tikus R. rattus diardii ) dan S. cognatus ( pada tikus R. exulans ) ternyata peka terhadap insektisida fenitrothion 2,5%. 2. Pada metode kontak tidak langsung LT 50 selama 18 dan LT 95 selama 62,3 untuk pinjal X. cheopis, serta LT 50 selama 31 dan LT 95 114 untuk pinjal S. cognatus. Waktu-waktu tersebut lebih lama dibandingkan waktu yang digunakan dengan metode kontak langsung, yaitu LT 50 selama 12 dan LT 95 selama 60,9 untuk X. cheopis, sedangkan untuk S. cognatus JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 71

LT 50 selama 16 dan LT 95 hanya 59. UCAPAN TERIMA KASIH Penulis mengucapkan terima kasih kepada sdr. B. Yuliadi yang membantu membuat kotak uji, Soekarno dan Muhidin yang membantu dalam pengolahan data, dr. Ponco Kencana, Puji Santoso, Sugiarto, Sandi dan Sulkhan Puskesmas Nongkojajar, Kabupaten Pasuruan, Jawa Timur yang telah membantu menyediakan fasilitas penelitian lapangan. DAFTAR PUSTAKA Dennis T, D, and Gage, K.L. Plague manual. WHO/CDS/CSR/EDC/99.2. 1999. Gratz, N.G. and A.W.A. Brown, 1983. Fleas biology and control. WHO /VBC/83.874. Kartman, L. 1958. An insecticide - bait - boxes method for the control of sylvatic plague vectors. Journal of Hygiene. 56. (4). 455-456. Ristiyanto, Sustriayu Nalim dan Hadi Swasono, 1995. Perbandingan efektivitas pengabutan dan penaburan malathion 5 % dalam upaya pengendalian vektor penyakit tular rodensia. Sub Direktorat Zoonosis. Pedoman Pemberantasan Pes Di Indonesia Dir.Jend. P2B2. Jakarta.1999. World Health Organization, 1975. Instruction for determining the susceptibility or resistance of fleas to insecticide. WHO/VBC/75.588. Rev. JURNAL VEKTORA Vol. 1 No. 1 72