BAB II TINJAUAN PUSTAKA. 2.1 Deskripsi Tanaman Cabai Besar (Capsicum annuum L.)

Transkripsi

1 7 BAB II TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Deskripsi Tanaman Cabai Besar (Capsicum annuum L.) Tanaman cabai merupakan tanaman semusim yang tumbuh tegak dengan batang berkayu dan bercabang banyak. Tinggi tanaman cabai bisa mencapai 120 cm dengan lebar tajuk tanaman sampai 90 cm (Cahyono, 2003). Daun cabai pada umumnya berwarna hijau muda sampai hijau gelap, tergantung pada varietasnya. Daun cabai yang ditopang oleh tangkai daun mempunyai pertulangan daun menyirip. Bentuk daun umumnya bulat telur, lonjong, dan oval dengan ujung meruncing, tergantung pada jenis dan varietasnya. Foto tanaman cabai besar (Capsicum annuum L.) disajikan pada Gambar 2.1. Gambar 2.1 Tanaman cabai besar (Capsicum annuum L.) (Sumber : Koleksi pribadi, 2013)

2 8 Menurut Tjitrosoepomo (2010) cabai besar termasuk dalam Solanaceae, dengan klasifikasi sebagai berikut : Kingdom : Plantae Famili Divisio Class Sub Class Ordo Family Genus : Magnoliophyta : Magnoliopsida : Asteridae : Solanales : Solanaceae : Capsicum Species : Capsicum annuum L. Selain sebagai penyedap makanan, cabai juga banyak digunakan untuk terapi kesehatan. Berbagai hasil penelitian membuktikan bahwa buah cabai dapat membantu menyembuhkan kejang otot, rematik, sakit tenggorokan, dan alergi. Cabai juga dapat membantu melancarkan sirkulasi darah dalam jantung. Selain itu, cabai dapat digunakan untuk meringankan rasa pegal dan dingin akibat rematik dan encok karena bersifat analgesik. Khasiat cabai yang begitu banyak disebabkan oleh adanya senyawa kapsaikin (C 18 H 27 NO 3 ) yang terkandung di dalam buah cabai. Kapsaikin merupakan unsur aktif yang berkhasiat obat terdiri dari lima komponen kapsaikinoid, yaitu nordihidro kapsaikin, kapsaikin, dihidro kapsaikin, homo kapsaikin, dan homo dihidro kapsaikin (Cahyono, 2003). Produksi cabai di Indonesia belum dapat memenuhi kebutuhan cabai nasional sehingga pemerintah harus mengimpor cabai yang mencapai lebih dari ton per tahun (DJBPH, 2013). Rataan produksi cabai nasional baru mencapai 6,19 ton/ha, sementara potensi produksi cabai dapat mencapai 10

3 9 ton/ha. Kendala biologis yang diakibatkan oleh serangan patogen pada cabai masih merupakan penyebab utama kegagalan panen, maka usaha untuk mengatasi penyakit pada tanaman cabai akibat hama dan penyakit sangat perlu mendapat perhatian (Suryaningsih et al.,1996). Cabai ditanam secara luas di Bali untuk memenuhi kebutuhan lokal dan nasional. Kultivar cabai yang banyak ditanam di Bali adalah cabai besar (Capsicum annum L) dan cabai rawit (Capsicum frutescens L). Sebagian besar cabai ditanam pada lahan tanpa irigasi sehingga menyebabkan penurunan produksi selama musim kemarau mencapai 50%. Selain akibat penanaman tanpa irigasi penurunan produksi lebih banyak disebabkan oleh penyakit, terutama penyakit antraknosa yang disebabkan oleh jamur Colletotrichum spp. (Duriat, 1990; Sulandari, 2004). 2.2 Penyakit Antraknosa pada Tanaman Cabai Besar Salah satu jenis penyakit pada tanaman cabai besar adalah penyakit antraknosa yang disebabkan oleh jamur Colletotrichum spp. Adanya serangan jamur Colletotrichum spp. pada tanaman cabai besar mempunyai arti ekonomi yang sangat penting, karena dapat menurunkan hasil produksi cabai dan merugikan para petani sampai 50% (Semangun, 2007). Menurut Suhardi (1989) penyakit antraknosa di Kabupaten Demak menyebabkan kerugian sebesar 50-65%. Penyakit antraknosa tersebar luas di Jawa, Madura, Bali dan Lombok (Duriat, 1990).

4 Penyebab penyakit antraknosa pada tanaman cabai besar Penyakit antraknosa pada tanaman cabai besar disebabkan oleh jamur Colletotrichum spp. Hannden and Black (1989) menyebutkan jenis jamur Colletotrichum yang umum menyebabkan penyakit antraknosa pada buah cabai terdiri atas empat spesies yaitu : C. gloeosporioides, C. capsici, C. acutatum, dan C. coccodes. Menurut Kim et al. (1999) penyakit antraknosa pada tanaman cabai disebabkan oleh jamur Colletotrichum terdiri atas lima spesies yaitu : C. gloeosporioides, C. capsici, C. acutatum, C. dematium, dan C. coccodes. Menurut hasil penelitian Sudiarta dan Sumiartha (2012) penyakit antraknosa pada tanaman cabai di Bali kebanyakan disebabkan oleh jamur Colletotrichum acutatum. Menurut Alexopoulos et al. (1996) jamur Genus Colletotrichum termasuk dalam Family Melanconiaceae, Class Deuteromycetes dengan klasifikasi sebagai berikut : Kingdom Phylum Class Subclass Ordo Family Genus Species : Fungi : Deuteromycota : Deuteromycetes : Coelomycetidae : Melanconiales : Melanconiaceae : Colletotrichum : Colletotrichum spp.

5 11 Jamur Colletotrichum spp. merupakan jamur parasit fakultatif dari Ordo Melanconiales dengan ciri-ciri konidia (spora) tersusun dalam aservulus (struktur aseksual pada jamur parasit, Gambar 2.2). Jamur dari Genus Colletotrichum termasuk dalam Class Deuteromycetes yang merupakan bentuk anamorfik (bentuk aseksual), dan pada saat jamur tersebut dalam telemorfik (bentuk seksual) masuk dalam Class Ascomycetes yang dikenal dengan jamur dalam Genus Glomerella (Alexopoulos et al., 1996). Struktur aservulus jamur Colletotrichum spp. disajikan pada Gambar 2.2. A B Gambar 2.2 Struktur aservulus jamur Colletotrichum spp. (A = setae, B = konidia, C = konidiofor) (Sumber : Barnett and Hunter, 1998) Ciri-ciri umum jamur dari Genus Colletotrichum yaitu memiliki hifa bersekat dan menghasilkan konidia yang transparan dan memanjang dengan ujung membulat atau meruncing panjangnya antara µm dan lebarnya 5-7 µm. Massa dari konidia berwarna hitam dan hifanya berwarna abu-abu (Dickman, 1993). Jamur Colletotrichum gloeosporioides mempunyai bentuk spora silendris, ujung spora tumpul, ukuran spora 16,1 x 5,6 m dengan kecepatan tumbuh 12,5 C

6 12 mm per hari. Jamur Colletotrichum acutatum mempunyai bentuk spora silendris, ujung spora meruncing, ukuran spora 16,1 x 5,3 m dengan kecepatan tumbuh 6,8 mm per hari. Jamur Colletotrichum coccodes mempunyai bentuk spora silendris, ujung spora runcing, ukuran spora 14,9 x 4,2 m dengan kecepatan tumbuh 8,4 mm per hari. Sedangkan jamur Colletotrichum capsici mempunyai bentuk spora seperti bulan sabit, ujung spora runcing, ukuran spora 24,3 x 4,4 m dengan kecepatan tumbuh 9,8 mm per hari (AVRDC, 2010). Bentuk spora beberapa jenis jamur Colletorichum spp. tersaji dalam Gambar 2.3. C. gloeosporioides C. acutatum C. cocodes C. capsici Gambar 2.3 Bentuk spora beberapa jenis jamur Colletotrichum spp. (Sumber : AVRDC, 2010) Gejala penyakit antraknosa pada tanaman cabai besar Jamur Colletotrichum dapat menginfeksi cabang, ranting, daun dan buah cabai. Infeksi pada buah cabai besar terjadi biasanya pada buah menjelang tua dan sesudah tua. Gejala diawali dengan adanya bintik-bintik kecil berwarna kehitamhitaman dan sedikit melekuk pada permukaan buah. Gejala lebih lanjut buah

7 13 mengkerut, kering, membusuk dan jatuh (Rusli dan Zulpadli, 1997). Bercak berbentuk bundar atau cekung dan berkembang pada buah yang belum dewasa/matang dari berbagai ukuran. Biasanya bentuk bercak beragam pada satu buah cabai dan ketika penyakit semakin parah, bercak akan bersatu. Gejala pada buah cabai yang sudah menua tampak seperti pada Gambar 2.4. Spora terbentuk dan memencar secara cepat pada buah cabai, sehingga mengakibatkan kehilangan hasil sampai 100%. Penyakit dapat menginfeksi sampai ke tangkai buah cabai dan menimbulkan bercak seperti bintik yang tidak beraturan berwarna merah tua (Damm et al., 2010). A Gambar 2.4 Buah cabai besar terserang penyakit antraknosa dengan gejala berat (A) (Sumber : Koleksi pribadi, 2013) Menurut Kim et al. (1984) gejala penyakit antraknosa pada buah cabai besar dimulai dengan kulit buah akan tampak mengkilap, diikuti dengan pelunakan jaringan, kemudian permukaan buah akan menjadi cekung dan berwarna kecoklatan, sehingga terlihat adanya seperti luka atau lebih dikenal dengan sebutan lesio. Lesio muncul sedikit demi sedikit kemudian pada akhirnya

8 14 dapat menutupi sebagian besar permukaan buah. Permukaan buah cabai yang terserang penyakit antraknosa akan berair dan aservulus jamur Colletotrichum spp. terlihat seperti bercak kehitaman yang kemudian meluas dan membusuk. Pada buah cabai dengan gejala penyakit antraknosa berat buah mengering dan keriput, sehingga buah yang seharusnya berwarna merah menjadi berwarna seperti jerami Mekanisme terjadinya penyakit antraknosa pada tanaman cabai besar Gejala serangan jamur Colletotrichum spp. penyebab penyakit antraknosa pada buah cabai besar secara umum hampir sama dengan gejala serangan jamur patogen lainnya. Gejala serangan jamur Colletotrichum spp. diawali dengan adanya inokulasi jamur Colletotrichum spp. pada buah cabai, kemudian diikuti dengan proses penetrasi, infeksi, kolonisasi, dan diseminasi. Inokulasi merupakan proses deposisi atau kontaknya inokulum (spora) pada permukaan jaringan inang. Proses penetrasi yaitu proses masuknya organisme patogen ke dalam tubuh inang. Kemudian setelah organisme patogen tersebut masuk ke dalam tubuh inang, maka akan terjadi proses perkecambahan spora (Sinaga, 2006). Proses perkecambahan spora pada tubuh inang dapat digambarkan sebagai berikut : pada mulanya spora patogen membentuk tabung kecambah (germ tube). Bagian spora yang memproduksi germ tube bertambah panjang dan menembus dinding sel inang. Kemudian germ tube akan termodifikasi menjadi apresorium yang berfungsi untuk melekat dengan kuat pada permukaan jaringan inang (Yudiarti, 2007). Proses infeksi terjadi setelah proses penetrasi yaitu patogen sudah berada pada jaringan inang dan memproleh makanan dari inangnya.

9 15 Kolonisasi merupakan proses kelanjutan dari infeksi yaitu patogen melanjutkan pertumbuhan dan perluasan aktivitas patogen melalui jaringan inang. Proses kolonisasi tersebut akan merusak seluruh jaringan pada tubuh inang (Wharton dan Uribeondo, 2004). Periode inkubasi merupakan waktu yang dibutuhkan patogen sejak mulai inokulasi sampai timbul gejala penyakit. Bila gejala penyakit telah timbul berarti patogen telah melakukan reproduksi inokulum sekunder. Sedangkan proses diseminasi merupakan proses penyebaran inokulum sekunder yang dihasilkan oleh patogen melalui agen penyebar seperti angin, air dan serangga (Sinaga, 2006). Terdapat tiga jalan atau cara yang digunakan oleh patogen dalam melakukan penetrasi yaitu, luka, lubang alami, dan penetrasi langsung. Luka yang ada pada tanaman dapat disebabkan oleh manusia, faktor fisik seperti angin, air hujan, atau serangan dari hama. Lubang alami yang biasa digunakan oleh patogen untuk masuk ke dalam tubuh tanaman inang antara lain, stomata, hidatoda dan lenti sel. Sedangkan untuk cara penetrasi langsung, dibutuhkan usaha dari patogen antara lain dengan memproduksi zat kimia berupa enzim atau toksin yang berfungsi untuk mendegradasi dinding sel dan atau merubah permeabilitas membran sel tanaman. Keadaan cuaca yang lembab sangat cocok untuk pembentukan spora dan terjadinya infeksi sehingga diameter lesio akan cepat membesar (Martinez et al., 2009) Siklus hidup jamur Colletotrichum spp. Spora jamur Colletotrichum spp. dapat disebarkan oleh angin dan percikan air hujan dan pada inang yang cocok akan berkembang dengan cepat (Dickman,

10 ). Pertumbuhan awal jamur Colletotrichum spp. membentuk koloni miselium yang berwarna putih dengan miselium yang timbul di permukaan. Kemudian perlahan-lahan berubah menjadi hitam dan akhirnya berbentuk aservulus. Aservulus berwarna merah muda sampai coklat muda merupakan kumpulan massa konidia (Rusli dan Zulpadli, 1997). Tahap awal infeksi Colletotrichum umumnya dimulai dari perkecambahan spora pada permukaan jaringan tanaman, menghasilkan tabung kecambah. Setelah penetrasi maka akan terbentuk jaringan hifa, hifa intra dan interseluler menyebar melalui jaringan tanaman (Yudiarti, 2007). Siklus penyakit antraknosa pada tanaman cabai yang disebabkan oleh jamur Colletotrichum spp. disajikan pada Gambar 2.5. Gambar 2.5 Siklus penyakit antraknosa pada tanaman cabai yang disebabkan oleh jamur Colletotrichum spp. (Sumber, Agrios 2005)

11 17 Infeksi terjadi setelah apresorium dihasilkan, apresorium mempenetrasi kutikula dan tumbuh dibawah dinding kutikula dan dinding periklinal dari sel epidermis. Kemudian, hifa tumbuh dan menghancurkan dinding sel utama. Hal ini terjadi karena matinya sel yang berdampingan secara meluas. Ketika jaringan membusuk, hifa masuk ke pembuluh sklerenkim dan langsung tumbuh menembus dinding sklerenkim (Pring et al., 1995) Pengendalian penyakit antraknosa pada tanaman cabai besar Pengendalian penyakit antraknosa pada tanaman cabai yang sering dilakukan oleh petani adalah dengan menggunakan fungisida, karena sampai saat ini belum ada tanaman cabai merah yang tahan terhadap penyakit antraknosa. Prinsip penggunaan fungisida didasarkan pada prinsip antibiotik terhadap tanaman. Cara lainnya yang digunakan untuk mengendalikan penyakit yaitu penggunaan bahan kimia sintetik yang mampu memicu ketahanan tanaman (Suhendro et al., 2000). Bila patogen sudah menginfeksi jaringan tanaman, umumnya fungisida tidak efektif dalam pengendalian penyakit. Dalam banyak kasus, informasi spesifik tentang siklus penyakit sangat dibutuhkan dalam aplikasi fungisida yang tepat untuk melindungi tanaman. Dalam label fungisida memberikan petunjuk pengaplikasian, biasanya dengan jarak interval 7-14 hari. Jika kelembaban tinggi atau pertumbuhan tanaman cepat, maka interval terendah antar aplikasi yang sering digunakan, dan jika kelembaban rendah maka digunakan interval tertinggi (Suryaningsih dan Suhardi, 1993).

12 18 Cara aplikasi dan jenis fungisida berpengaruh nyata terhadap masa inkubasi dan intensitas penyakit antraknosa pada buah cabai selama di penyimpanan. Fungisida dari kelompok sistemik menunjukkan yang terbaik dibandingkan dengan fungisida kontak. Tetapi tidak ada interaksi antara waktu aplikasi dan fungisida dalam mempertahankan masa inkubasi dan menekan intensitas penyakit tersebut (Sudarmo, 2005). Jenis fungisida yang digunakan seperti Dithane M WP merupakan jenis fungisida bersifat sistemik karena cara kerjanya ditranslokasikan ke dalam jaringan tanaman dan fungisida Dakonil 500 F merupakan jenis fungisida kontak atau non sistemik (Semangun, 2007). 2.3 Identifikasi Spesies Colletotrichum spp. dengan Gen 18S rrna Mikroorganisme Eukaryota memiliki 3 jenis DNA ribosomal yaitu 5.8S rdna, 18S rdna dan 28S rdna. Diantara ketiganya, ribosomal 18S rdna yang paling sering digunakan dalam identifikasi suatu spesies jamur. Analisis gen penyandi 18S rdna dapat digunakan sebagai penanda molekuler dengan fungsi yang identik pada seluruh organisme yang sejenis. Pendekatan secara molekular dengan metode Polimerase Chain Reaction (PCR) dengan menggunakan gen 18S rdna berkembang secara cepat dan akurat. Pada penelitian ini digunakan primer Internal Transcript Spacer (ITS) yaitu ITS 1 dan ITS 4 yang digunakan untuk mendeteksi gen 18S DNA dari DNA gen komplek ribosom dari jamur Colletotrichum spp. sehingga dapat digunakan untuk proses identifikasi secara tepat sampai ke tingkat spesies (Nishizawa et al., 2010).

13 Deskripsi Tumbuhan Awar-Awar (Ficus septica Burm.f) Awar-awar (Ficus septica Burm.f.) berhabitus perdu dari Family Moraceae dengan tinggi tanaman dapat mencapai ± 6 meter. Awar-awar merupakan tumbuhan liar yang tumbuh pada lahan kosong, semak-semak dan hutan. Tumbuhan ini dapat hidup pada ketinggian dari meter dari permukaan laut. Batangnya berkayu, berongga, bergetah, bulat, bercabang berwarna coklat muda. Daunya tunggal, berseling atau berhadapan, bulat telur, ujung runcing, pangkal membulat, tepi rata, panjang cm, lebar 6-16 cm, permukaan daun mengkilat, pertulangan menyirip, tangkai panjangnya 2-5 cm, berwarna hijau keputih-putihan. Bunganya majemuk, pada batang dan ranting, kelopak dan mahkota kecil, berwarna hijau keputih-pulihan. Buahnya berupa buah buni, bulat, tangkai pendek, diameter ± 2 cm, masih muda berwarna hijau setelah tua berwarna hitam. Bijinya kecil, keras, berwarna coklat. Akarnya berupa akar tunggang, berwarna putih kecoklatan (de Padua et al., 1999). Foto tumbuhan awar-awar (Ficus septica Burm.f.) disajikan pada Gambar 2.6. Gambar 2.6 Tumbuhan awar-awar (Ficus septica Burm.f.) (Sumber : Koleksi pribadi, 2013)

14 20 Tumbuhan awar-awar (Ficus septica Burm.f.) jarang dimanfaatkan secara ekonomis, buah awar-awar sering dimakan sebagai makanan burung dan kelelawar. Penyebarannya oleh burung atau kelelawar melalui feses yang dibuang yang didalamnya terdapat biji tumbuhan awar-awar, sehingga distribusi tumbuhan ini mempunyai kisaran yang sangat luas dari ketinggian di atas permukaan laut Kandungan kimia tumbuhan awar-awar Sukadana (2010) melaporkan bahwa ekstrak kulit akar awar-awar (Ficus septica Burm.f.) mengandung senyawa flavonoid dari golongan flavanon dan senyawa tersebut dapat menghambat pertumbuhan bakteri Vibrio cholera dan Escherichea coli. sedangkan Damu et al. (2005) melaporkan bahwa ekstrak batang awar-awar mengandung senyawa dari golongan alkaloid phenanthroindolizidine yang terdiri atas ficuseptines B-D (1-3), 10R,13aR-tylophorine N- oxide (4), 10R,13aR-ylocrebrine N-oxide (5), 10S,13aR-tylocrebrine N-oxide (6), 10S,13aR-isotylocrebrine N-oxide (7), dan 10S,13aS-isotylocrebrine N-oxide (8). Senyawa golongan alkaloid tersebut bersifat sitotoksik. Menurut Nugroho et al. (2011) hasil fraksinasi etanol dan heksan dari ekstrak daun awar-awar berpotensi sebagai senyawa antikanker. Disamping itu daun dan akar awar-awar mengandung saponin dan flavonoid, buahnya mengandung alkaloid dan tanin sedangkan akarnya mengandung polifenol (de Padua et al., 1999).

15 Pemanfaatan tumbuhan awar-awar Sampai saat ini awar-awar belum dimanfaatkan secara ekonomi oleh masyarakat. Pemanfaatan awar-awar hanya terbatas untuk pengobatan tradisional yaitu daun awar-awar biasanya digunakan sebagai obat bisul, luka, borok dan sebagai penawar racun binatang berbisa, sedangkan akarnya biasanya digunakan untuk obat sesak nafas. Pemanfaatan daun awar-awar sebagai obat bisul, borok dan luka yaitu dengan cara diambil sebanyak 5 gram daun awar-awar segar, ditumbuk sampai halus kemudian ditempelkan pada bagian tubuh yang luka, bisul ataupun borok (Asgar.or.id, 2013). Buah awar-awar yang sudah masak biasanya akan dimakan oleh burung dan kelelawar, sehingga penyebaran atau distribusi tumbuhan awar-awar dibantu oleh burung dan kelelawar melalui biji yang terdapat di dalam feces burung ataupun kelelawar yang memanfaatakan buah awar-awar sebagai makanannya (Asgar.or.id, 2013). 2.5 Pestisida Nabati Pestisida nabati adalah pestisida yang bahan dasarnya berupa tumbuhan. Penggunaan pestisida nabati telah berlangsung dari sejak tahun 1690 oleh para petani di Perancis dengan menggunakan perasan daun tembakau untuk mengendalikan hama kepik pada tanaman buah persik. Penggunaan pestisida nabati selain dapat mengurangi pencemaran lingkungan harganya relatif lebih murah apabila dibandingkan dengan pestisida kimia (Sudarmo, 2005). Menurut Kardinan (2002), pestisida nabati mudah terurai di alam karena terbuat dari bahan alami. Pada saat diaplikasikan pestisida nabati akan dapat

16 22 mengendalikan hama dan penyakit secara spesifik dan kemudian dengan cepat akan terurai oleh lingkungan sehingga tidak ada residu pada tanaman dan tanaman aman untuk dikonsumsi. Cara kerja pestisida nabati sangat spesifik yaitu : merusak perkembangan telur, larva dan pupa, menghambat pergantian kulit serangga, menyebabkan serangga menolak makan, menghambat reproduksi serangga betina, mengurangi nafsu makan pada serangga, mengusir serangga dan menghambat perkembangan patogen. Tumbuhan pada dasarnya mengandung banyak senyawa kimia yang merupakan hasil dari metabolit sekunder yang dimanfaatkan oleh tumbuhan sebagai alat pertahanan dari serangan organisme pengganggu tanaman (OPT). Metabolit sekunder yang dihasilkan dan digunakan oleh tumbuhan sebagai senyawa pertahanan tersebut terdiri atas senyawa golongan terpenoid, alkaloid dan fenol. Senyawa-senyawa tersebut berpotensi digunakan sebagai pestisida nabati untuk mengendalikan OPT, sehingga akan dapat membantu masyarakat petani untuk mengendalikan hama dan penyakit pada tanaman secara ramah lingkungan dengan memanfaatkan sumber daya yang ada disekitarnya (Kardinan, 2002). Menurut Dixit et al. (1995), dari 30 spesies tumbuhan tingkat tinggi yang berpotensi digunakan sebagai fungisida nabati diuji aktivitas antijamurnya terhadap pertumbuhan jamur Penicilium italicum penyebab penyakit busuk kapang biru (blue mold ) pada jeruk Mandarin. Ekstrak Ageratum conyzoides menunjukkan toksisitas tertinggi dalam menghambat pertumbuhan miselia jamur yang diuji. Perendaman buah dengan minyak atsiri dan melalui fumigasi berhasil

17 23 mengendalikan blue mold (kapang biru) pada jeruk mandarin dan tidak menimbulkan bahaya pada buah. Tripathi et al. (2008) melaporkan bahwa dari 26 jenis tanaman yang diuji aktivitas antijamurnya terhadap jamur Botrytis cinerea penyebab penyakit kapang biru (blue mold ) pada tanaman anggur, ditemukan 10 jenis tanaman yang mampu menghambat pertumbuhan jamur uji. Kesepuluh jenis tanaman tersebut diantaranya Chenopodium ambrosioides, Eucalyptus citriodora, Eupatorium cannabinum, Lawsonia inermis, Ocinum canum, Ocinum gratissimum, Ocinum sanctum, Prunus persica, Zingiber cassumunar dan Zingiber officinale. Nilai minimum inhibitory concentration (MIC) dari minyak atsiri Ocinum sanctum, Prunus persica dan Zingiber officinale masing-masing 200, 150 dan 100 ppm (mg/l). Sifat minyak atsiri ini stabil terhadap panas dan menunjukkan aktivitas antijamur terhadap 15 jamur lainnya. Potensi antijamurnya bahkan lebih besar dari fungisida sintetis. Buah anggur yang diberi perlakuan minyak atsiri Ocinum sanctum dan Prunus persica daya simpannya dapat diperpanjang sampai 5 dan 4 hari, sementara yang diberi perlakuan minyak atsiri Zingiber officinale daya simpannya bisa diperpanjang sampai 6 hari. Minyak atsiri yang diuji ini tidak menimbulkan kerusakan pada kulit buah anggur. Minyak atsiri yang diisolasi dari 5 jenis tanaman yang tumbuh di Iran yaitu Urtica dioica, Thymus vulgaris, Eucalyptus spp., Ruta graveolens dan Achillea millefolium diuji aktivitas antijamurnya terhadap jamur patogen Alternaria alternata yang menyebabkan penyakit pasca panen pada tomat. Hasil penelitian menunjukkan bahwa minyak atsiri dari Urtica dioica dan Thymus

18 24 vulgaris menunjukkan aktivitas antijamur terhadap jamur Alternaria alternate. Minyak atsiri dari Thymus vulgaris menunjukkan daya hambat terhadap perkecambahan spora sebesar masing-masing 68,5% dan 74,8% pada konsentrasi 1500 dan 2000 ppm. Minyak atsiri dari Urtica dioica pada konsentrasi 1500 ppm secara signifikan menghambat perkecambahan dan elongasi dari tabung kecambah dan mampu melindungi kerusakan buah tomat pasca panen, baik melalui inokulasi buatan maupun infeksi alamiah (Hadizadeh et al., 2009). Cassia alata dan Dennetia tripetala diekstrak daunnya dan diuji sifatnya sebagai antijamur terhadap jamur Sclerotium rolfsii, penyebab penyakit busuk pada Cocoyam selama penyimpanan. Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa tepung daun dan ekstrak daun dari Cassia alata dan Dennetia tripelata secara nyata mengurangi pertumbuhan koloni jamur secara in vitro dan perkembangan penyakit pada umbi Cocoyam secara in vivo. Tepun daun ditemukan lebih efektif dalam menghambat pertumbuhan jamur patogen baik in vitro maupun in vivo dibandingkan dengan ekstrak daun. Tepung daun dan ekstrak daun lebih efektif diberikan sebagai bioprotektan pada umbi Cocoyam (Nwachukwu dan Osuji, 2008). Bobbarala et al. (2009) meneliti 49 jenis tumbuhan yang digunakan dalam obat tradisional di India diuji aktivitas antijamurnya terhadap jamur Aspergillus niger. Jamur ini merupakan saprofit di dalam tanah menyebabkan busuk hitam pada bawang merah dan bawang putih serta menyebabkan beberapa jenis penyakit pada beberapa jenis tanaman seperti pada kapas, kacang tanah, dan buah vanili. Hasil penelitian menunjukkan bahwa dari 49 jenis tumbuhan yang diuji, 86%

19 25 menunjukkan aktivitas antijamaur terhadap Aspergillus niger sementara 14% tidak menunjukkan aktivitas antijamur. Ekstrak Grewia arborea menunjukkan aktivitas antijamur yang tertinggi. Satish et al. (2007), melakukan penelitian pada 52 jenis tumbuhan yang tumbuh di India dari berbagai famili diuji potensi aktivitas antijamurnya terhadap 8 spesies Aspergillus yaitu Aspergillus candidus, A. columnaris, A. flavipes, A. flavus, A. fumigatus, A. niger, A. pchraceus dan A. tamari yang diisolasi dari biji sorghum, jagung dan padi. Kedelapan jenis jamur ini sering dijumpai sebagai patogen pada biji selama penyimpanan. Hasil penelitian menunjukkan bahwa dari 52 jenis tumbuhan yang diuji, sebanyak 12 jenis tumbuhan menunjukkan aktivitas antijamur terhadap Aspergillus. Tanaman tersebut adalah : Acacia nilotica, Achras zapota, Datura stramonium, Emblica officinalis, Eucalyptus globules, Lawsonia inermis, Mimusops elengi, Peltophorum pterocarpum, Polyalthia longifolia, Prosopis juliflora, Punica granatum dan Sygigium cumini. Aspergillus flavus ditemukan paling peka terhadap ekstrak. Diantara solven yang diuji, ekstrak metanol memberikan hasil yang lebih baik dari etanol, kloroform, petroleum ether dan benzene, kecuali untuk Polyathia longifolia, dimana petrolium ether memberikaan hasil yang terbaik di antara solven yang diuji. Ekstrak tumbuhan Mimusops elengi (Family Sapotaceae) diuji aktivitas antijamurnya terhadap beberapa jenis jamur patogen tanaman yang bersifat sebagai tular benih (seed borne). Jamur yang diuji adalah Alternaria alternata, Drechslera (2 spesies), Fusarium (8 spesies), Aspergillus (10 spesies) dan Penicillium (3 spesies). Semua jenis jamur ini sering berasosiasi dengan benih

20 26 tanaman sorghum (Sorghum bicolor), jagung (Zea mays) dan padi (Oryza sativa). Hasil penelitian menunjukkan bahwa ekstrak air, ekstrak metanol dan ekstrak etanol memiliki daya hambat yang nyata terhadap semua jenis jamur yang diuji. Senyawa alkaloid yang terdapat di dalam ekstrak tumbuhan ini secara nyata lebih tinggi dibandingkan dengan Dithane M-45 dan fungisida yang lainnya. Berdasarkan hasil penelitian tumbuhan Mimusops elengi dapat dimanfaatkan untuk mengendalikan penyakit yang disebabkan oleh jamur patogen yang bersifat tular benih dan mencegah kerusakan biji-bijian (grain) dari kerusakan oleh jamur serta mencegah terbentuknya mikotoksin selama penyimpanan (Satish et al., 2008). Suprapta et al. (2008), melaporkan bahwa dari 45 jenis tumbuhan yang diuji aktivitas antijamurnya terhadap jamur Phytophthora palmivora penyebab penyakit bercak hitam (black pod) pada tanaman cacao, ditemukan 5 jenis tumbuhan yang mampu menghambat pertumbuhan jamur uji yaitu Eugenia aromatica, Piper betle, Pometia pinata, Alpinia galanga dan Sphaeranthus indicus. Diantara kelima jenis tumbuhan tersebut E. aromatica dan P. betle memiliki aktivitas antijamur yang kuat terhadap jamur P. palmivora pada konsentrasi 0,05% dan 0,1%. Sementara itu pemanfaatan kombinasi ekstrak daun sirih (Piper betle) dan rimpang lengkuas (Alpinia galanga) mampu meningkatkan ketahanan benih tanaman pisang sampai 90-93% dari serangan jamur Fusarium oxysporum dan atau Ralstonia solanacearum penyebab penyakit layu pada tanaman pisang. Sedangkan pada kontrol dan perlakuan fungisida sintetik

21 27 (cholothalonil) kemampuan tumbuh sehat benih pisang berkisar antara 11-18% dan 77-81% (Suprapta et al., 2005) Keunggulan dan kelemahan pestisida nabati Upaya untuk mengurangi penggunaan pestisida kimia sintetik akhir-akhir ini banyak mendapat perhatian dunia dan sering kali dibicarakan di dalam seminar dan ditulis dalam naskah jurnal, khususnya yang berkaitan dengan penyakit tanaman. Adanya kekhawatiran masyarakat dengan penggunaan pestisida kimia sintetis, dan didukung oleh permintaan produk pertanian yang sehat dan aman bagi konsumen, maka diperlukan cara untuk mengendalikan penyakit tanaman yang lebih aman (Soesanto, 2008). Menurut Sudarmo (2005), keunggulan pestisida nabati adalah murah dan mudah dibuat oleh petani, relatif aman terhadap lingkungan, tidak menyebabkan resistensi hama, tidak menyebabkan keracunan pada tanaman, tidak meninggalkan residu pada tanaman. Sedangkan beberapa kelemahannya adalah daya kerja relatif lambat, tidak membunuh organisme target secara langsung, tidak tahan terhadap sinar matahari, dan tidak dapat disimpan dalam waktu yang lama. Penggunaan pestisida nabati mengalami beberapa kendala diantaranya adalah penggunaan pestisida sintetis (kimia) tetap lebih disukai dengan beberapa alasan mudah didapat, praktis dalam aplikasinya, hasilnya relatif lebih cepat terlihat, tersedia dalam jumlah banyak, Disamping itu tidak tersedianya bahan tanaman secara berkesinambungan dalam jumlah yang memadai saat diperlukan dan sulitnya registrasi pestisida nabati di komisi pestisida karena bahan aktif tidak mudah untuk dideteksi. Tetapi dengan dikembangkannya sistem pertanian organik

22 28 maka penggunaan pestisida nabati lebih meningkat dan semakin berpotensi untuk dikembangkan (Kardinan, 2002). Menurut Suprapta (2014) pestisida nabati memiliki beberapa kelebihan dan kekurangan, kelebihan pestisida nabati diantaranya pestisida nabati mengandung senyawa fenol, alkaloid, saponin, quinon, xanthone yang mudah terurai di alam sehingga tidak mengandung bahaya residu yang besar baik hasil pertanian maupun pada lingkungan; pestisida nabati tidak berbahaya bagi organisme bukan target karena pestisida nabati bersifat spesifik terhadap hama dan patogen tertentu; persistensi pestisida nabati relatif singkat sehingga dapat digunakan beberapa saat menjelang panen; pestisida nabati mengandung senyawa aktif dan senyawa kurang aktif sering keberadaannya bersifat sinergis dan patogen tidak mudah menjadi resisten terhadap pestisida nabati karena pestisida nabati bersifat komplek. Sedangkan beberapa kekurangan pestisida nabati diantaranya persistensi pestisida nabati umumnya sangat singkat sehingga harus diaplikasikan secara berulang-ulang; biaya produksi yang tinggi sehingga tidak dapat bersaing dengan pestisida sintetis dan kosistensi pestisida nabati umumnya kurang dibandingkan dengan pestisida sintetis karena bahan aktif pestisida nabati dari ekstrak tumbuhan sangat bervariasi menurut musim dan tempat tumbuh. Pestisida nabati tidak dapat berlaku secara umum dan bersifat spesifik, karena satu jenis tanaman yang ditanaman pada tempat dengan lingkungan yang berbeda kemungkinan besar akan mengandung bahan aktif yang berbeda pula, akibatnya dosis dan konsentrasi dan efektifitas pestisida nabati akan berbeda bergantung pada lokasi setempat. Disamping itu aplikasi pestisida nabati sangat

23 29 dipengaruhi oleh lingkungan setempat, pestisida nabati yang digunakan pada daerah tertentu belum tentu cocok untuk daerah yang lain walaupun digunakan untuk mengendalikan penyakit yang sama pada tanaman yang sama. Hal ini dapat disebabkan oleh kondisi lingkungan pada masing-masing tempat atau daerah berbeda seperti kondisi ph, kelembaban, suhu, dan musim pada masing-masing tempat atau daerah belum tentu sama (Kardinan, 2002) Prospek pengembangan pestisida nabati Terjadinya keracunan pada hewan dan manusia, pencemaran air, tanah, udara, terjadinya resistensi hama, terjadinya resurgensi merupakan beberapa kelemahan dari penggunaan pestisida sintetis, sehingga peluang untuk mengembangkan pestisida nabati semakin meningkat. Peluang pengembangan pestisida nabati semakin meningkat dengan meningkatnya pendidikan masyarakat disertai dengan kebutuhan hidup sehat. Dalam lingkungan yang sehat menyebabkan peranan pestisida nabati dalam pertanian semakin meningkat, karena tidak mungkin pertanian bisa berlangsung dan berproduksi dengan baik tanpa pestisida (Suprapta, 2014). Berkembangnya sistem pertanian organik akan dapat meningkatkan kebutuhan terhadap pestisida alami termasuk pestisida nabati karena sistem pertanian organik, masalah hama dan penyakit selalu muncul dan menjadi kendala produksi utama terutama pada tahap awal pengembangan sistem pertanian organik. Karena sistem pertanian organik hanya menggunakan bahan organik alam untuk proses produksi, dan tidak menggunakan senyawa kimia sintetis seperti pupuk kimia sintetis dan pestisida kimia sintetis. Menurut Suprapta ( 2014)

24 30 saat ini sharing pasar pestisida alam masih sangat kecil yaitu kurang dari 2%, sedangkan pertumbuhan pasar pestisida alam meningkat cukup besar yaitu sekitar 10-15% setiap tahun. Sehingga pertumbuhan permintaan yang cukup besar merupakan peluang yang cukup besar dalam pengembangan pestisida nabati untuk masa yang akan datang.