Lampiran 1 Analisis probit uji LC50-96 jam minyak sereh. Pengamatan Jumlah Respon

Transkripsi

1 58 Lampiran 1 Analisis probit uji LC5096 jam minyak sereh LC 50 96jam Konsentrasi Jumlah Terekspos Pengamatan Jumlah Respon Pengaturan Proporsi Respon Prediksi Proporsi Respon Proposi Respon ,1000 0,1000 0, ,5000 0,5000 0, ,7000 0,7000 0, ,8000 0,8000 0, ,9000 0,9000 0,9173 Chi Square Heterogeneity = 0,635 Ratarata = 1, Jumlah = 0, Parameter Estimate Std. Err. Tingkat kepercayaan 95% Intercept 7, , ( 14,271416, 1,042916) Slope 6, , ( 3,190332, 9,897629) Teori spontanitas tingkat respon = 0,0000 LC 50 96jam Estimasi Consentrasi Efektif (EC) dan Tingkat Kepercayaan Titik EC Konsentrasi Tingkat Kepercayaan 95% Terendah Tertinggi 1,00 37, , ,4758 5,00 48, , , ,00 54, , , ,00 59, , , ,00 85, , , ,00 123, , , ,00 134, , , ,00 153, , , ,00 194, , ,6042

2 59 LC 50 96jam Plot probit terkoreksi dan garis regresi prediksi Probit o o o o o EC01 EC10 EC25 EC50 EC75 EC90 EC EC01 EC10 EC25 EC50 EC75 EC90

3 60 Analisis Regresi y = x Prediktor Koef. Koef. Kesalahan baku t P Konstan x S = RSq = 90.3% RSq(adj) = 87.0% Anova Sumber keragaman Db JK KT Fhit P Regresi Kesalahan Baku Total

4 61 Lampiran 2 Prosedur pengukuran kondisi histologi insang ikan kerapu macan pasca pengangkutan dan setelah 7 hari pemeliharaan Prosedur pembuatan preparat jaringan adalah sebagai berikut: fiksasi, dehidrasi, penjernihan, impregnasi, pemblokan, pemotongan, pewarnaan, mounting, dan dokumentasi. Proses fiksasi dilakukan apabila jaringan telah diambil dan direndam dengan larutan fiksatif Davidson dengan perbandingan volume larutan 5 kali dari volume jaringan yang difiksasi. Proses fiksasi berlangsung selama 2472 jam. Setelah itu direndam dalam alkohol 70% untuk menghilangkan kelebihan larutan Davidson selama 24 jam. Selanjutnya material jaringan didehidrasi secara bertahap dengan mengunakan larutan: alkohol 80% selama 2 jam alkohol 90% selama 2 jam alkohol 95% selama 2 jam alkohol 90% selama 2 jam alkohol 100% selama 12 jam (semalam) Dehidrasi merupakan proses untuk menarik air dalam jaringan dengan mengunakan bahan kimia tertentu yang berfungsi untuk menarik air keluar. Selanjutnya dilakukan proses penjernihan yang bertujuan untuk menggantikan alkohol dan sekaligus menambahkan clearing agent yang berfungsi sebagai pelarut parafin. Proses penjernihan dilakukan dengan cara merendam material jaringan secara berturutturut ke dalam alkohol 100% selama 60 menit alkohol xilol (1:1) selama 30 menit xilol I selama 30 menit xilol II selama 30 menit xilol III selama 30 menit Setelah proses ini selesai dilanjutkan dengan proses impregnasi yaitu proses pergantian xilol dengan parafin yang berlangsung di dalam oven dengan suhu 60 o C, dengan pemindahan sebagai berikut: Parafin : xilol III (1:1) selama 45 menit Parafin I selama 45 menit

5 62 Parafin II selama 45 menit Parafin III selama 45 menit Material jaringan selanjutnya diblok dalam parafin (embedding). Jaringan diletakkan sedemikian rupa di dalam wadah berukuran 2x2x2 cm 3 yang terbuat dari kertas aluminium foil, dengan sisi jaringan yang akan dipotong mengendap permukaan dasar wadah. Parafin cair dari dalam oven dituangkan ke dalam wadah tersebut secukupnya sampai seluruh material jaringan terendam. Kemudian dibiarkan dalam suhu ruang selama 24 jam. Sebelum dilakukan pemotongan, terlebih dahulu dilakukan pengikisan parafin di sekitar materi jaringan yang akan dipotong, agar hasil pemotongan mengandung parafin sedikit mungkin. Selanjutnya blok parafin yang berisi material jaringan itu diletakkan pada alat pelekat (block holder) mikrotom. Pisau mikrotom dipasang sedemikian rupa sehingga diperoleh sudut kemiringan sekitar 60 o atau diatur sampai jaringan dapat dipotong dengan baik. Ketebalan pemotong jaringan berkisar antara 3 4μm. Hasil pemotongan jaringan berupa sayatan tipis yang diletakkan pada gelas objek kemudian dibiarkan kering pada suhu kamar. Pewarnaan preparat jaringan mengunakan hematoxylin dan eosin. Proses pewarnaan dilakukan dengan cara merendam preparat jaringan ke dalam larutan berturutturut: 1. xilol I selama 2 menit 2. xilol II selama 2 menit 3. xilol III selama 2 menit 4. alkohol absolut I selama 2 menit 5. alkohol absolut II selama 2 menit 6. alkohol 95% selama 2 menit 7. alkohol 85% selama 2 menit 8. alkohol 70% selama 2 menit 9. alkohol 50% selama 2 menit 10. alkohol 30% selama 2 menit 11. akuades selama 2 menit Proses 1, 2, dan 3 bertujuan untuk menghilangkan parafin dari dalam jaringan. Proses 4 11 bertujuan agar jaringan mengandung air kembali sehingga

6 63 pewarnaan dapat berjalan sempurna. Selanjutnya dilakukan pewarnaan hematosilin dan eosin dengan cara preparat jaringan yang sudah mengalami hidrasi langsung dimasukkan ke dalam: 1. Zat warna hematocilin selama 5 menit 2. Air ledeng yang mengalir selama 510 menit, tujuannya untuk menghilangkan kelebihan zat warna yang tidak terserap dan membuat inti sel berwarna lebih biru. 3. Eosin selama 4 menit 4. Alkohol 30% selama 2 menit 5. Alkohol 50% selama 2 menit 6. Alkohol 70% selama 2 menit 7. Alkohol 85% selama 2 menit 8. Alkohol 95% selama 2 menit 9. Alkohol absolut I selama 2 menit 10. Alkohol absolut II selama 2 menit 11. Xilol I selama 2 menit 12. Xilol II selama 2 menit 13. Xilol III selama 2 menit Pemakaian xilol bertujuan sebagai medium pengantar ke enthellan, karena xilol dapat melarutkan enthellan. Selain itu xilol juga dapat menjernihkan jaringan. Setelah dikeluarkan dari xilol III, dilakukan mounting dengan cara memberikan satu tetes enthellan pada preparat jaringan yang masih basah dan segera ditutup dengan kaca penutup. Penutup preparat dilakukan sedemikian rupa sehingga tidak terdapat gelembung udara yang terperangkap antara kaca preparat dan kaca penutup. Selanjutkan preparat ditiriskan pada suatu tempat yang kering sampai kaca penutup merekat kuat (sekitar 24 jam). Kemudian preparat diamati dengan mikroskop.

7 64 Lampiran 3 Gambaran darah ikan kerapu macan pasca pengangkutan dan hasil analisis statistik A. Jumlah Sel Darah Merah (SDM) 1. Diskripsi SDM (x10 6 sel/mm 3 ) N K ,19 3,01 1,19 2,29 3,19 2 1,28 3,21 1,36 2,5 3,4 Ratarata 1,235 3,11 1,275 2,395 3,295 stdev 0,064 0,141 0,120 0,148 0, Anova SDM ANOVA Sumber keragaman JK db KT Fhit. Pvalue F tabel E Galat Total Uji Tukey SDM Tukey HSD Subset for alpha =.05 N Normal A(10 ppm) B(20 ppm) Kontrol C(30 ppm) Sig B. Jumlah Sel Darah Putih (SDP) 1. Diskripsi SDP (x10 4 sel/mm 3 ) N K Ratarata stdev

8 65 2. Anova SDP Sumber keragaman SS df MS F Pvalue F crit Galat Total C. Konsentrasi Hemoglobin 1. Diskripsi Hemoglobin (%) N K Ratarata stdev Anova Hemoglobin A NOVA Sumber keragaman JK db KT Fhit. Pvalue F tabel 5,7 4 1,425 9, ,0163 5, Galat 0, ,157 Total 6, Uji Tukey Hemoglobin N Subset for alpha = Normal A(10 ppm) C(30 ppm) B(20 ppm) Kontrol Sig D. N:L rasio 1. Diskripsi N:L rasio N K Ratarata stdev

9 66 2. Anova N:L rasio Sumber keragaman JK db KT F Pvalue F tabel Galat Total Uji Tukey N:L rasio N Subset for alpha = A(10 ppm) B(20 ppm) C(30 ppm) Kontrol Normal Sig E. Kadar Glukosa Darah 1. Diskripsi Kadar Glukosa N K Ratarata stdev Anova Kadar Glukosa Sumber keragaman JK db KT Fhit Pvalue F tabl E Galat Total Uji Tukey Kadar Glukosa Subset for alpha =.05 N A(10 ppm) Normal Kontrol B(20 ppm) C(30 ppm) Sig Keterangan : huruf yang berbeda pada setiap baris menunjukkan perbedaan nyata (P<0,05)

10 67 Lampiran 4 Gambaran darah ikan kerapu macan setelah 7 hari pemeliharaan dan hasil analisis statistik. A. Jumlah Sel Darah Merah (SDM) 1. Diskripsi SDM N A B C Ratarata stdev Anova SDM Sumber keragaman JK db KT F Pvalue F tabel E E Galat Total E Uji Tukey SDM N Subset for alpha = Normal A(10 ppm) B(20 ppm) C(30 ppm) Sig B. Jumlah Sel Darah Putih (SDP) 1. Diskripsi SDP SDP N Ratarata stdev

11 68 2. ANOVA SDP Sumber keragaman JK db KT F Pvalue F tabel Galat Total C. Konsentrasi Hemoglobin 1. Diskripsi Hemoglobin N A B C Ratarata stdev Anova Hemoglobin Sumber keragaman JK db KT F Pvalue F tabel Galat Total Uji Tukey Hemoglobin N Subset for alpha = A(10 ppm) Normal B(20 ppm) C(30 ppm) Sig D. N:L rasio 1. Diskripsi N:L rasio N A B C Ratarata stdev

12 69 2. Anova N:L rasio Sumber keragaman JK db KT F Pvalue F tabel Galat Total E. Kadar Glukosa Darah 1. Diskripsi Kadar Glukosa N A B C Ratarata stdev Anova Kadar Glukosa Sumber Keragama JK db KT F Pvalue F tabel Galat Total Uji Tukey Kadar Glukosa Subset for alpha =.05 N B(20 ppm) Normal A(10 ppm) C(30 ppm) Sig

13 70 Lampiran 5 Suhu ratarata media air pengepakan Jam ke Suhu ±0 22±0 22±0 22± ±0 22±0 22±0 22± ±0 22±0 22±0 22±0 Lampiran 6 Konsentrasi Salinitas ratarata media air pengepakan Jam ke Salinitas (mg/l) 0 31,0 31,0 31,0 31, ,8±0,4 31,0±0,0 31,0±0,0 31,0±0, ,5±0,7 31,5±0,7 31,5±0,7 32,0±0, ,5±0,7 31,5±0,7 31,5±0,7 32,0±0,0 Lampiran 7 ph ratarata media air pengepakan Jam keph 0 7,20 7,20 7,20 7, ,76±0,17 6,71±0,23 6,50±0,04 6,50±0, ,75±0,11 6,42±0,28 6,29±0,18 6,31±0, ,75±0,03 6,56±0,03 6,39±0,07 6,43±0,04 Lampiran 8 DO ratarata media air pengepakan Jam ke DO (mg/l) 0 4,31 4,31 4,31 4, ,61±0,156 3,99±0,962 4,42±0,537 4,5±0, ,49±0,255 3,63±0,742 3,79±0,474 3,06±0, ,81±0,764 3,31±0,905 2,5±0,424 2,57±0,134

14 71 Lampiran 9 Karbondoiksida ratarata media air pengepakan Jam ke CO 2 (mg/l) 0 13,983 13,983 13,983 13, ,455±3,531 14,982±0 17,479±3,531 32,461±3, ,966±11,300 25,969±8,475 25,969±8,475 25,969±8, ,950±8,475 32,561±6,498 28,965±7,062 27,966±11,300 Lampiran 10 TAN ratarata media air pengepakan Jam ke TAN (mg/l) 0 0,544 0,544 0,544 0, ,852±0,031 0,656±0,084 0,761±0,217 0,933±0, ,076±0,481 4,792±0,481 5,208±0,481 5,785±0, ,775±0,006 6,459±0,318 7,193±0,331 7,344±1,291 Lampiran 11 NH 3 ratarata media air pengepakan Jam ke NH 3 (mg/l) 0 0,0056 0,0056 0,0056 0, ,002±0,001 0,002±0,001 0,006±0,006 0,001±0, ,017±0,007 0,001±0,001 0,014±0,009 0,0046±0, ,021±0,000 0,011±0,002 0,019±0,002 0,008±0,001

15 72 Lampiran 12 Kesadahan ratarata media air pengepakan Jam ke Kesadahan (mg/l) , , , , ,08±169, ,94±84, ,66±28, ,80±0, ,74±311, ,32±622, ,68±566, ,88±792, ,52±566, ,04±226, ,00±56, ,16±16176,16 Lampiran 13 Alkalinitas ratarata media air pengepakan Jam ke Alkalinitas (mg/l) 0 85, , , , ,721±38, ,503±6, ,833±25, ,584±25, ,292±9,513 82,963±34, ,081±12, ,286±44, ,988±12,684 67,267±12, ,596±6, ,106±15,855 Lampiran 14 Nitrit ratarata media air pengepakan Jam ke Nitrit (mg/l) 0 0,269±0 0,269±0 0,269±0 0,269±0 24 0,978±0,162 1,022±0,050 1,118±0,022 1,296±0, ,887±0,220 2,376±0,000 2,351±0,135 2,024±0,057 Lampiran 15 Jumlah ikan hidup selama pengangkutan Jam Data ikan hidup (ekor) ke K1 K2 A1 A2 B1 B2 C1 C

16 73 Lampiran 16 Tingkat kelangsungan hidup ikan selama pengangkutan Jam SR (%) , , , , , ,5 97,5 92,5 52,5 Lampiran 17 Jumlah ikan yang mati selama pengangkutan Jam Data kematian ikan (ekor) K1 K2 A1 A2 B1 B2 C1 C Lampiran 18 Kelangsungan hidup selama pemeliharaan A B C Waktu Pengamatan 0 I II III IV I II Total Rerata Stdev I II Total Rerata Stdev I II Total Rerata Stdev

17 74 Lampiran 19 Persentase ikan hidup selama pemeliharaan A B C Waktu Pengamatan 0 I II III IV I II Total Rerata Stdev I II Total Rerata Stdev I II Total Rerata Stdev Lampiran 20 Pengukuran bobot tubuh ikan Kerapu macan selama pemeliharaan Waktu Pengamatan (minggu) A (10 mg/l) Ratarata Stdev B (20mg/l Ratarata Stdev C (30 mg/l) Ratarata Stdev

18 75 Lampiran 21 Laju pertumbuhan Spesifik ikan kerapu macan selam pemeliharaan Laju Pertumbuhan Spesifik ln W0 ln Wt SGR A Ratarata Stdev B Ratarata Stdev C Ratarata Stdev ANOVA SGR Sumber keragama JK db KT F Pvalue F tabel Galat Total Tukey SGR N Subset for alpha = C B A Sig