Minuman sari buah SNI 3719:2014

Transkripsi

1 Standar Nasional Indonesia Minuman sari buah ICS Badan Standardisasi Nasional

2 BSN 2014 Hak cipta dilindungi undang-undang. Dilarang mengumumkan dan memperbanyak sebagian atau seluruh isi dokumen ini dengan cara dan dalam bentuk apapun serta dilarang mendistribusikan dokumen ini baik secara elektronik maupun tercetak tanpa izin tertulis dari BSN BSN Gd. Manggala Wanabakti Blok IV, Lt. 3,4,7,10. Telp Fax Diterbitkan di Jakarta

3 Daftar isi Daftar isi... i Prakata... ii 1 Ruang lingkup Acuan normatif Istilah dan definisi Komposisi Klasifikasi Syarat mutu Pengambilan contoh Cara uji Syarat lulus uji Higiene Pengemasan Syarat penandaan... 4 Lampiran A (normatif) Cara uji minuman sari buah... 5 Bibliografi BSN 2014 i

4 Prakata Standar Nasional Indonesia (SNI) Minuman sari buah ini merupakan revisi dari SNI Minuman sari buah. Standar ini dirumuskan dengan tujuan sebagai berikut: Menyesuaikan standar dengan perkembangan teknologi terutama dalam metode uji dan persyaratan mutu; Menyesuaikan standar dengan peraturan-peraturan baru yang berlaku; Melindungi kesehatan konsumen; Menjamin perdagangan pangan yang jujur dan bertanggung jawab; Mendukung perkembangan dan diversifikasi produk industri olahan buah. Standar ini dirumuskan dengan memperhatikan ketentuan pada: 1. Undang-Undang Republik Indonesia No. 5 Tahun 1984 tentang Perindustrian. 2. Undang-Undang Republik Indonesia No. 8 Tahun 1999 tentang Perlindungan Konsumen. 3. Undang-Undang Republik Indonesia No. 36 Tahun 2009 tentang Kesehatan. 4. Undang-Undang Republik Indonesia No. 18 Tahun 2012 tentang Pangan. 5. Peraturan Pemerintah Republik Indonesia No. 69 Tahun 1999 tentang Label dan Iklan Pangan. 6. Peraturan Pemerintah Republik Indonesia No. 28 Tahun 2004 tentang Keamanan, Mutu, dan Gizi Pangan. 7. Peraturan Menteri Perindustrian Republik Indonesia No.24/M-IND/PER/2/2010 tentang Pencantuman Logo Tara Pangan dan Kode Daur Ulang pada Kemasan Pangan dari Plastik. 8. Peraturan Menteri Kesehatan Republik Indonesia No. 492/MENKES/PER/IV/2010, tentang Persyaratan Kualitas Air Minum. 9. Peraturan Menteri Perindustrian Republik Indonesia Nomor 75/M-IND/7/2010 tentang Cara Produksi Pangan Olahan yang Baik (Good Manufacturing Practices). 10. Peraturan Menteri Kesehatan Republik Indonesia No. 033/MENKES/PER/VII/2012, tentang Bahan Tambahan Pangan. 11. Surat Keputusan Kepala Badan Pengawas Obat dan Makanan Republik Indonesia No. HK Tahun 2006 tentang Kategori Pangan. 12. Peraturan Kepala Badan Pengawas Obat dan Makanan Republik Indonesia No. HK Tahun 2009 tentang Penetapan Batas Maksimum Cemaran Mikroba dan Kimia dalam Makanan. Standar ini dirumuskan oleh Subpanitia Teknis S1 Minuman yang telah dibahas melalui rapat teknis, dan disepakati dalam rapat konsensus pada tanggal 13 November 2012 di Jakarta. Hadir dalam rapat tersebut wakil dari konsumen, produsen, lembaga pengujian, lembaga ilmu pengetahuan dan teknologi, Badan Pengawas Obat dan Makanan, dan instansi terkait lainnya. Standar ini telah melalui proses jajak pendapat pada tanggal 24 Mei 2013 sampai dengan 23 Juli 2013 dengan hasil akhir RASNI. BSN 2014 ii

5 1 Ruang lingkup Minuman sari buah Standar ini menetapkan istilah dan definisi, syarat mutu, pengambilan contoh, dan cara uji minuman sari buah. 2 Acuan normatif SNI 0428, Petunjuk pengambilan contoh padatan. SNI ISO 4831:2012, Mikrobiologi bahan pangan dan pakan Metode horizontal untuk deteksi dan enumerasi koliform Teknik Angka Paling Mungkin (APM). SNI ISO :2012, Mikrobiologi bahan pangan dan pakan Penyiapan contoh uji, suspensi awal dan pengenceran desimal untuk untuk pengujian mikrobiologi Bagian 1 : aturan umum untuk penyiapan suspensi awal dan pengenceran desimal SNI ISO , Mikrobiologi bahan pangan dan pakan Penyiapan contoh uji, suspensi awal dan pengenceran desimal untuk pengujian mikrobiologi Bagian 4 : aturan khusus untuk penyiapan produk lain selain susu dan produk susu, daging dan produk daging,dan ikan serta produk perikanan SNI ISO :2012, Mikrobiologi bahan pangan dan pakan Metoda horizontal untuk enumerasi staphylococci koagulasi-positif (Staphylococcus aureus dan spesies lain) Bagian 1:Teknik menggunakan media Baird Parker Agar SNI ISO 7218:2012, Mikrobiologi bahan pangan dan pakan-persyaratan umum dan pedoman untuk pengujian mikrobiologi SNI ISO 7251:2012, Mikrobiologi bahan pangan dan pakan- Metode horizontal untuk deteksi dan enumerasi Escherichia coli terduga Teknik angka paling mungkin (APM) SNI ISO , Mikrobiologi bahan pangan dan pakan Metode horizontal untuk enumerasi kapang dan khamir Bagian 1: Teknik penghitungan koloni pada produk dengan aktivitas air lebih besar dari 0,95. 3 Istilah dan definisi 3.1 minuman sari buah minuman yang diperoleh dengan mencampur air minum, sari buah atau campuran sari buah yang tidak difermentasi, dengan bagian lain dari satu jenis buah atau lebih, dengan atau tanpa penambahan gula, bahan pangan lainnya, bahan tambahan pangan yang diizinkan 3.2 air minum air yang melalui proses pengolahan atau tanpa proses pengolahan yang memenuhi syarat kesehatan dan dapat langsung diminum BSN dari 32

6 4 Komposisi 4.1 Bahan baku Sari buah dan air minum. 4.2 Bahan pangan lain bahan pangan lain yang diizinkan untuk minuman sari buah. 4.3 Bahan tambahan pangan bahan tambahan pangan yang diizinkan untuk minuman sari buah sesuai dengan ketentuan yang berlaku. 5 Klasifikasi Minuman sari buah mengandung total sari buah antara 35 % 89 %. 6 Syarat mutu Syarat mutu minuman sari buah sesuai Tabel 1. Tabel 1 Syarat mutu minuman sari buah No. Kriteria uji Satuan Persyaratan 1 Keadaan 1.1 Bau - khas, normal 1.2 Rasa - khas, normal 1.3 Warna - khas, normal 2 Padatan terlarut Brix Sesuai Tabel 2 3 Keasaman % Sesuai Tabel 2 4 Cemaran logam 4.1 Timbal (Pb) mg/kg maks. 0,2 4.2 Kadmium (Cd) mg/kg maks. 0,2 4.3 Timah (Sn) mg/kg maks. 40,0/ maks. 250* 4.4 Merkuri (Hg) mg/kg maks. 0,03 5 Cemaran arsen (As) mg/kg maks. 0,1 6 Cemaran mikroba 6.1 Angka lempeng total koloni/ml maks. 1 x Koliform koloni/ml maks Escherichia coli APM/mL < 3 BSN dari 32

7 No Tabel 1 Syarat mutu minuman sari buah (lanjutan) No. Kriteria uji Satuan Persyaratan 6.4 Salmonella sp. - negatif/25 ml 6.5 Staphylococcus aureus - negatif/ml 6.6 Kapang dan khamir koloni/ml maks.1 x 10 2 CATATAN: * untuk produk pangan yang dikemas dalam kaleng Tabel 2 - Padatan terlarut ( Brix) dan keasaman untuk Minuman Sari Buah Jenis buah 1 Anggur (Vitis vinifera) 2 Apel (Pyrus malus) Asam 3 (Tamarindus indica) Delima 4 (Punica granatum) Jambu Biji Merah 5 (Psidium guajava var.pink Guava) Jeruk 6 (Citrus sinensis) 7 Leci (Litchi chinensis) Mangga 8 (Mangifera indica) 9 Markisa (Pasiflora edulis) 10 Melon (Cucumis melo L.) Nanas 11 (Ananas comosus) Sirsak 12 (Annona muricata L.) Strawberi 13 (Fragaria x. Ananassa) Mengkudu 14 (Morinda citrifolia) CATATAN Padatan terlarut ( Brix) Keasaman* (%) Min. 12,0 Min. 0,25 Min.10,5 Min. 0,30** Min. 13,0 Min. 0,3 Min. 12,0 Min. 0,24 Min. 8,5 Min. 0,2 Min. 11,2 Min. 0,35 Min. 10,0 Min. 0,15 Min.11,0 Min. 0,20 Min. 11,0 Min. 0,19 Min. 12,0 Min. 0,15 Min. 10,0 Min.0,6 Min. 12,0 Min. 0,45 Min. 7,5 Min. 0,2 Min. 16,0 Min. 0,9 *) nilai keasaman berasal dari sari buah dan dapat ditambahkan asidulan **) sebagai asam malat ***) sebagai asam tartarat BSN dari 32

8 7 Pengambilan contoh Cara pengambilan contoh sesuai dengan SNI Cara uji Cara uji untuk minuman sari buah seperti di bawah ini: a) Persiapan contoh sesuai Lampiran A.1 b) Cara uji keadaan sesuai Lampiran A.2 - Cara uji bau sesuai Lampiran A Cara uji rasa sesuai Lampiran A Cara uji warna sesuai Lampiran A.2.3 c) Cara uji padatan terlarut sesuai lampiran A.3 d) Cara uji keasaman sesuai Lampiran A.4 e) Cara uji cemaran logam sesuai Lampiran A.5 - Cara uji timbal (Pb) dan kadmium (Cd) sesuai Lampiran A Cara uji timah (Sn) sesuai Lampiran A Cara uji merkuri (Hg) sesuai Lampiran A.5.3 f) Cara uji cemaran arsen (As) sesuai Lampiran A.6 g) Cara uji cemaran mikroba sesuai Lampiran A.7 - Persiapan dan homogenisasi contoh sesuai Lampiran A.7.1, SNI ISO :2012 dan SNI ISO : Cara uji Angka Lempeng Total sesuai Lampiran A Cara uji E. coli sesuai dengan SNI ISO 7251: Cara uji Salmonella sp. sesuai Lampiran A Cara uji Kapang & khamir sesuai dengan SNI ISO : Syarat lulus uji Produk dinyatakan lulus uji apabila memenuhi syarat mutu sesuai Tabel 1 dan Tabel Higiene Cara memproduksi produk yang higienis termasuk cara penyiapan dan penanganannya sesuai dengan ketentuan yang berlaku tentang Pedoman Cara Produksi Pangan Olahan yang Baik. 11 Pengemasan Produk dikemas dalam wadah yang tertutup rapat, tidak dipengaruhi atau mempengaruhi isi, aman selama penyimpanan dan pengangkutan. 12 Syarat penandaan Syarat penandaan sesuai dengan ketentuan yang berlaku tentang label dan iklan pangan. BSN dari 32

9 A.1 Persiapan contoh Lampiran A (normatif) Cara uji minuman sari buah Persiapan contoh terdiri atas persiapan contoh untuk uji mikrobiologi, uji organoleptik, dan uji kimia. Pengambilan contoh untuk uji mikrobiologi dilakukan pertama, kemudian dilanjutkan dengan pengambilan contoh untuk uji organoleptik dan uji kimia. A.1.1 Persiapan contoh untuk uji mikrobiologi Buka kemasan contoh minuman sari buah dan ambil contoh secara aseptik sebanyak 400 ml, kemudian tempatkan dalam botol contoh steril. A.1.2 Persiapan contoh untuk uji organoleptik Buka kemasan contoh minuman sari buah dan ambil contoh secukupnya, kemudian tempatkan dalam botol contoh yang bersih dan kering. A.1.3 Persiapan contoh untuk uji kimia Buka kemasan contoh minuman sari buah dan ambil contoh sebanyak 400 ml, kemudian tempatkan dalam botol contoh yang bersih dan kering. A.2 Keadaan A.2.1 Bau A Prinsip Pengamatan contoh uji dengan indera penciuman yang dilakukan oleh panelis yang terlatih atau kompeten untuk pengujian organoleptik. A Cara kerja a) Ambil contoh uji secukupnya dan letakkan di atas gelas arloji yang bersih dan kering; b) cium contoh uji untuk mengetahui baunya; dan c) lakukan pengerjaan minimal oleh 3 orang panelis yang terlatih atau 1 orang tenaga ahli. A Cara menyatakan hasil a) Jika tidak tercium bau asing, maka hasil dinyatakan khas, normal ; dan b) jika tercium bau asing, maka hasil dinyatakan tidak normal. A.2.2 Rasa A Prinsip Pengamatan contoh uji dengan indera pengecap (lidah) yang dilakukan oleh panelis yang terlatih atau kompeten untuk pengujian organoleptik. BSN dari 32

10 A Cara kerja a) Ambil contoh uji secukupnya dan rasakan dengan indera pengecap (lidah); dan b) lakukan pengerjaan minimal oleh 3 orang panelis yang terlatih atau 1 orang tenaga ahli. A Cara menyatakan hasil a) Jika tidak terasa rasa asing, maka hasil dinyatakan khas, normal ; dan b) jika terasa rasa asing, maka hasil dinyatakan tidak normal. A.2.3 Warna A Prinsip Pengamatan contoh uji dengan indera penglihatan yang dilakukan oleh panelis yang terlatih atau kompeten untuk pengujian organoleptik. A Cara kerja a) Ambil contoh uji secukupnya dan letakkan di atas gelas arloji yang bersih dan kering; b) amati warna contoh uji; dan c) lakukan pengerjaan minimal oleh 3 orang panelis yang terlatih atau 1 orang tenaga ahli. A Cara menyatakan hasil a) Jika tidak terlihat warna asing, maka hasil dinyatakan khas, normal ; dan b) jika terlihat warna asing, maka hasil dinyatakan tidak normal. A.3 Padatan terlarut A.3.1 Prinsip Padatan terlarut diukur menggunakan refraktometer pada suhu 20 C. Nilai indeks bias setara dengan jumlah padatan terlarut menggunakan tabel, atau langsung dibaca pada refraktometer yang mempunyai skala nilai padatan terlarut. A.3.2 Peralatan a) Refraktometer; Dapat menggunakan salah satu dari alat berikut ini: a.1 Refraktometer yang menunjukkan indeks bias dengan skala 0,001 agar mampu membaca hingga kira-kira 0,0002. Refraktometer ini diatur agar indeks bias pada suhu 20 C untuk air suling menunjukkan nilai 1,3330 a.2 Refraktometer yang menunjukkan nilai sukrosa dengan skala 0,10 %. Refraktometer ini diatur agar nilai padatan terlarut (sukrosa) air suling menunjukkan nilai 0. b) Alat untuk sirkulasi air, alat ini berguna untuk mempertahankan suhu pada prisma refraktometer tetap stabil sekitar ± 0,5 C agar nilai perbedaan suhu selain 20 C dapat dihitung menggunakan tabel koreksi; dan c) Gelas piala 250 ml. BSN dari 32

11 A.3.3 Cara kerja a) Siapkan alat dengan teliti menurut buku panduan alat dan bersihkan permukaan prisma lalu keringkan; b) alirkan air pengontrol untuk mendapatkan suhu yang diharapkan (antara 15 C sampai dengan 25 C), biarkan air mengalir melalui mantel prisma refraktometer pada jangka waktu tertentu supaya terjadi keseimbangan suhu ±0,5 C (prisma dalam keadaan tertutup); c) pindahkan satu tetes air ke prisma refraktometer untuk menentukan titik nol atau digunakan sebagai koreksi; d) ambil larutan contoh dan atur suhu yang diinginkan. Teteskan (2 sampai dengan 3 tetes) larutan contoh ke dalam prisma refraktometer, buat larutan menyebar ke permukaan prisma dan segera atur tombol untuk mengatur prisma. Penggunaan lampu uap natrium akan mendapatkan hasil yang lebih tepat (khususnya untuk produk yang berwarna/gelap); e) baca refraktometer sesuai petunjuk buku panduan alat; f) gunakan beberapa skala koreksi untuk mendapatkan pembacaan terkoreksi. CATATAN Apabila dikerjakan pada suhu selain 20 C maka pembacaan harus dikoreksi dengan tabel koreksi pada Tabel A.2 A.3.4 Perhitungan a) Refraktometer dengan skala indeks bias: Baca padatan terlarut dari Tabel A1, koreksi jika perlu b) Refraktometer dengan skala nilai sukrosa Hitung % padatan terlarut dari pembacaan langsung yang setara dengan hasil pembacaan pada A.6.4.a, koreksi jika perlu A.3.5 Penyajian hasil uji Koreksi Jika dibaca pada suhu selain dari 20 C maka koreksinya adalah sebagai berikut: a) Untuk refraktometer yang menggunakan skala indeks bias menggunakan rumus: n 20 D n t D 0,0013( t 20) Keterangan: 20 adalah indeks bias pada suhu 20 C; n D t n D adalah indeks bias pada suhu pengukuran; t adalah suhu dalam C b) Untuk refraktometer yang menggunakan skala % sukrosa, koreksi hasil dengan menggunakan Tabel A.2 A.3.6 Ketelitian Perbedaan hasil antara dua penetapan tidak boleh lebih dari 5 % untuk produk yang mengandung padatan terlarut lebih besar 0,5 % BSN dari 32

12 n Tabel A.1. Hubungan antara indeks bias dan % padatan terlarut (sukrosa) Padatan terlarut (sukrosa) % (massa n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa 1,3400 4,823 1, ,409 1, ,677 1, ,656 1,3401 4,891 1, ,473 1, ,738 1, ,714 1,3402 4,958 1, ,537 1, ,799 1, ,772 1,3403 5,026 1, ,601 1, ,860 1, ,831 1,3404 5,093 1, ,665 1, ,922 1, ,889 1,3405 5,161 1, ,729 1, ,993 1, ,947 1,3406 5,228 1, ,793 1, ,044 1, ,005 1,3407 5,295 1, ,857 1, ,105 1, ,064 1,3408 5,363 1, ,921 1, ,166 1, ,122 1,3409 5,430 1, ,985 1, ,227 1, ,180 1,3410 5,497 1, ,049 1, ,288 1, ,239 1,3411 5,564 1, ,113 1, ,348 1, ,297 1,3412 5,631 1, ,177 1, ,409 1, ,355 1,3413 5,698 1, ,241 1, ,470 1, ,413 1,3414 5,786 1, ,305 1, ,531 1, ,471 1,3415 5,033 1, ,368 1, ,592 1, ,529 1,3416 5,900 1, ,432 1, ,652 1, ,587 1,3417 5,967 1, ,496 1, ,713 1, ,645 1,3418 6,033 1, ,559 1, ,774 1, ,703 1,3419 6,100 1, ,623 1, ,834 1, ,761 1,3420 6,157 1, ,697 1, ,895 1, ,819 1,3421 6,234 1, ,750 1, ,956 1, ,877 1,3422 6,301 1, ,814 1, ,016 1, ,936 1,3423 6,368 1, ,877 1, ,077 1, ,992 1,3424 6,434 1, ,941 1, ,137 1, ,050 1,3425 6,501 1, ,004 1, ,198 1, ,108 1,3426 6,569 1, ,068 1, ,258 1, ,156 1,3427 6,634 1, ,131 1, ,319 1, ,223 1,3428 6,701 1, ,194 1, ,379 1, ,281 1,3429 6,767 1, ,258 1, ,440 1, ,339 1,3430 6,834 1, ,321 1, ,500 1, ,396 1,3431 6,900 1, ,384 1, ,560 1, ,454 1,3432 6,967 1, ,448 1, ,621 1, ,512 1,3433 7,033 1, ,511 1, ,681 1, ,569 1,3434 7,100 1, ,574 1, ,741 1, ,627 1,3435 7,165 1, ,637 1, ,801 1, ,694 1,3436 7,232 1, ,700 1, ,851 1, ,742 1,3437 7,299 1, ,763 1, ,922 1, ,799 1,3438 7,365 1, ,826 1, ,982 1, ,857 1,3439 7,431 1, ,689 1, ,042 1, ,914 BSN dari 32

13 Tabel A.1 Lanjutan n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa 1,3440 7,497 1, ,952 1, ,102 1, ,971 1,3441 7,563 1, ,015 1, ,182 1, ,029 1,3442 7,630 1, ,078 1, ,222 1, ,065 1,3443 7,686 1, ,141 1, ,282 1, ,143 1,3444 7,762 1, ,204 1, ,342 1, ,201 1,3445 7,828 1, ,267 1, ,402 1, ,258 1,3446 7,894 1, ,330 1, ,462 1, ,315 1,3447 7,960 1, ,392 1, ,522 1, ,372 1,3448 8,025 1, ,455 1, ,581 1, ,430 1,3449 8,092 1, ,518 1, ,641 1, ,487 1,3450 8,157 1, ,581 1, ,701 1, ,544 1,3451 8,223 1, ,643 1, ,761 1, ,604 1,3452 8,289 1, ,706 1, ,820 1, ,658 1,3453 8,356 1, ,769 1, ,880 1, ,715 1,3454 8,420 1, ,831 1, ,940 1, ,772 1,3455 8,486 1, ,834 1, ,000 1, ,829 1,3456 8,552 1, ,956 1, ,059 1, ,838 1,3457 8,617 1, ,019 1, ,119 1, ,943 1,3458 8,683 1, ,091 1, ,178 1, ,000 1,3459 8,749 1, ,143 1, ,238 1, ,057 1,3460 8,814 1, ,206 1, ,297 1, ,114 1,3461 8,880 1, ,268 1, ,357 1, ,171 1,3462 8,945 1, ,331 1, ,416 1, ,228 1,3463 9,010 1, ,393 1, ,476 1, ,284 1,3464 9,076 1, ,455 1, ,535 1, ,341 1,3465 9,141 1, ,517 1, ,595 1, ,398 1,3466 9,207 1, ,580 1, ,654 1, ,455 1,3467 9,272 1, ,642 1, ,713 1, ,511 1,3468 9,337 1, ,704 1, ,772 1, ,568 1,3469 9,402 1, ,766 1, ,832 1, ,625 1,3470 9,468 1, ,628 1, ,891 1, ,681 1,3471 9,533 1, ,890 1, ,950 1, ,738 1,3472 9,598 1, ,952 1, ,009 1, ,794 1,3473 9,663 1, ,014 1, ,063 1, ,851 1,3474 9,728 1, ,076 1, ,128 1, ,907 1,3475 9,793 1, ,138 1, ,187 1, ,964 1,3476 9,858 1, ,200 1, ,246 1, ,020 1,3477 9,923 1, ,262 1, ,305 1, ,077 1,3478 9,989 1, ,324 1, ,364 1, ,133 1, ,053 1, ,386 1, ,423 1, ,190 1, ,118 1, ,447 1, ,462 1,378 28,246 1, ,183 1, ,509 1, ,541 1,378 28,302 1, ,247 1, ,571 1, ,600 1,378 28,359 1, ,312 1, ,633 1, ,659 1,378 28,415 BSN dari 32

14 n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa n Tabel A.1 Lanjutan Padatan terlarut (sukrosa ) % (massa n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa n Padatan terlarut (sukrosa) % (massa 1, ,377 1, ,694 1, ,716 1,378 28,471 1, ,442 1, ,755 1, ,776 1,378 28,528 1, ,506 1, ,817 1, ,835 1,378 28,584 1, ,571 1, ,879 1, ,894 1,378 28,640 1, ,636 1, ,941 1, ,953 1,378 28,698 1, ,700 1, ,002 1, ,011 1,378 28,752 1, ,765 1, ,064 1, ,070 1, ,809 1, ,829 1, ,125 1, ,129 1, ,865 1, ,894 1, ,167 1, ,187 1, ,921 1, ,958 1, ,248 1, ,246 1, ,977 1, ,023 1, ,309 1, ,305 1, ,033 1, ,087 1, ,371 1, ,363 1, ,089 1, ,151 1, ,432 1, ,422 1, ,145 1, ,216 1, ,490 1, ,480 1, ,201 1, ,280 1, ,655 1, ,539 1, ,257 1, ,344 1, ,616 1, ,597 1, ,313 Tabel A.2. Koreksi Pembacaan Refraktometer dengan Skala Indikasi Sukrosa untuk Suhu Selain 20 C Sukrosa, g/100g Suhu Dikurangi dari konsentrasi sukrosa Ditambahkan terhadap konsentrasi sukrosa BSN dari 32

15 A.3 Keasaman A.3.1 Prinsip Keasaman dapat dihitung sebagai g asam/100 ml produk menggunakan faktor konversi sesuai jenis asam sebagai berikut: 0,067 untuk asam malat 0,045 untuk asam oksalat 0,070 untuk asam sitrat monohidrat 0,075 untuk asam tartarat 0,049 untuk asam sulfurat 0,060 untuk asam asetat 0,090 untuk asam laktat. A.3.2 Peralatan a) Neraca analitik terkalibrasi dengan ketelitian 0,1 mg; b) Pipet ukur 5 ml dengan ketelitian 0,1 ml, terkalibrasi; c) Buret 25 ml dengan ketelitian 0,1 ml, terkalibrasi; d) Gelas ukur 250 ml, terkalibrasi; e) Gelas piala 250 ml, terkalibrasi; dan f) Gelas piala 25 ml A.3.3 Pereaksi a) Akuades; b) NaOH. A.3.4 Cara Kerja A Larutan tidak berwarna atau berwarna pucat a) Timbang 10 g minuman sari buah, larutkan dengan air mendidih hingga 250 ml; b) Titrasi dengan 0,1 M NaOH, gunakan 0,3 ml phenolptalein untuk setiap 100 ml larutan yang akan dititrasi sehingga terbentuk warna merah muda yang konstan hingga 30 detik A Larutan berwarna a) Timbang 10 g minuman sari buah, larutkan dengan akuades hingga 250 ml; b) Titrasi dengan 0,1 M NaOH hingga hampir mencapai titik akhir titrasi, gunakan 0,3 ml phenolptalein untuk setiap 100 ml larutan yang akan dititrasi; c) Pindahkan 2 sampai dengan 3 ml larutan ke dalam 20 ml aquades dalam gelas piala kecil (pada pengenceran ini warna larutan akan menjadi sangat pucat sehingga warna phenolptalein lebih mudah terlihat); d) Bila hasil pengenceran menunjukkan bahwa titik akhir titrasi belum tercapai, tuangkan hasil uji tersebut ke dalam larutan awal, teruskan titrasi hingga mencapai titik akhir titrasi. Dengan membandingkan pengenceran dalam gelasi piala kecil, perbedaan yang terbentuk dengan penambahan beberapa tetes 0,1 M alkali akan lebih mudah diamati. A.3.5 Perhitungan Keasaman (%) = % BSN dari 32

16 Keterangan: V adalah volume 0,1 M NaOH (ml) P adalah faktor konversi N adalah molaritas NaOH w adalah berat contoh (g) A.4 Cemaran logam A.4.1 Kadmium (Cd) dan timbal (Pb) A Prinsip Destruksi contoh dengan cara pengabuan kering pada 450 C yang dilanjutkan dengan pelarutan dalam larutan asam. Logam yang terlarut dihitung menggunakan alat Spektrofotometer Serapan Atom (SSA) dengan panjang gelombang maksimal 228,8 nm untuk Cd dan 283,3 nm untuk Pb. A Peralatan a) Spektrofotometer Serapan Atom (SSA) beserta kelengkapannya (lampu katoda Cd dan Pb) terkalibrasi (sebaiknya menggunakan SSA tungku grafit); b) Tanur terkalibrasi dengan ketelitian 1 ºC; c) Neraca analitik terkalibrasi dengan ketelitian 0,1 mg; d) Pemanas listrik; e) Penangas air; f) Pipet ukur berskala 0,05 ml atau mikro buret terkalibrasi; g) Labu ukur ml, 100 ml, dan 50 ml, terkalibrasi; h) Gelas ukur 10 ml; i) Gelas piala 250 ml; j) Botol polipropilen; k) Cawan porselen/platina/kuarsa 50 ml sampai dengan 100 ml; dan l) Kertas saring tidak berabu dengan spesifikasi retensi partikel 20 µm sampai dengan 25 µm. A Pereaksi a) Asam nitrat, HNO 3 pekat; b) Asam klorida, HCl pekat; c) Larutan asam nitrat, HNO 3 0,1 N; encerkan 7 ml HNO 3 pekat dengan aquabides dalam labu ukur ml sampai tanda garis. d) Larutan asam klorida, HCl 6 N; encerkan 500 ml HCl pekat dengan aquabides dalam labu ukur ml sampai tanda garis. e) Larutan baku µg/ml Cd; larutkan 1,000 g Cd dengan 7 ml HNO 3 pekat dalam gelas piala 250 ml dan masukkan ke dalam labu ukur ml kemudian encerkan dengan aquabides sampai tanda garis, atau bisa digunakan larutan baku Cd µg/ml siap pakai. f) Larutan baku 200 µg/ml Cd; pipet 10 ml larutan baku µg/ml Cd ke dalam labu ukur 50 ml kemudian encerkan dengan aquabides sampai tanda garis kemudian dikocok. Larutan baku kedua ini memiliki konsentrasi 200 µg/ml Cd. BSN dari 32

17 g) Larutan baku 20 µg/ml Cd; pipet 10 ml larutan baku 200 µg/ml Cd ke dalam labu ukur 100 ml kemudian encerkan dengan aquabides sampai tanda garis kemudian dikocok. Larutan baku ketiga ini memiliki konsentrasi 20 µg/ml Cd. h) Larutan baku kerja Cd; pipet ke dalam labu ukur 100 ml masing-masing sebanyak 0 ml, 0,5 ml, 1 ml; 2 ml; 4 ml; 7 ml dan 9 ml larutan baku 20 µg/ml kemudian tambahkan 5 ml larutan HNO 3 1 N atau HCl 6 N, dan encerkan dengan aquabides sampai tanda garis kemudian kocok. Larutan baku kerja ini memiliki konsentrasi 0 µg/ml; 0,1 µg/ml; 0,2 µg/ml; 0,4 µg/ml; 0,8 µg/ml; 1,4 µg/ml dan 1,8 µg/ml Cd. i) Larutan baku µg/ml Pb; larutkan 1,000 g Pb dengan 7 ml HNO 3 pekat dalam gelas piala 250 ml dan masukkan ke dalam labu ukur ml kemudian encerkan dengan aquabides sampai tanda garis, atau bisa digunakan larutan baku Pb µg/ml siap pakai. j) Larutan baku 50 µg/ml Pb; dan pipet 5,0 ml larutan baku µg/ml Pb ke dalam labu ukur 100 ml dan encerkan dengan aquabides sampai tanda garis kemudian kocok. Larutan baku kedua ini memiliki konsentrasi Pb 50 µg/ml. k) Larutan baku kerja Pb; pipet ke dalam labu ukur 100 ml masing-masing sebanyak 0 ml, 0,2 ml; 0,5 ml; 1 ml; 2 ml; 3 ml dan 4 ml larutan baku 50 µg/ml kemudian tambahkan 5 ml larutan HNO 3 1 N atau HCl 6 N, dan encerkan dengan aquabides sampai tanda garis kemudian kocok. Larutan baku kerja ini memiliki konsentrasi 0 µg/ml; 0,1 µg/ml; 0,25 µg/ml; 0,5 µg/ml; 1,0 µg/ml; 1,5 µg/ml dan 2,0 µg/ml Pb. A Cara kerja a) Timbang 10 g sampai dengan 20 g contoh uji (W) dengan teliti dalam cawan porselen/platina/kuarsa; b) tempatkan cawan berisi contoh di atas pemanas listrik dan panaskan secara bertahap sampai contoh tidak berasap lagi; c) lanjutkan pengabuan dalam tanur (450 ± 5) C sampai abu berwarna putih, bebas dari karbon; d) apabila abu belum bebas dari karbon yang ditandai dengan warna keabu-abuan, basahkan dengan beberapa tetes air dan tambahkan tetes demi tetes HNO 3 pekat kirakira 0,5 ml sampai dengan 3 ml; e) keringkan cawan di atas pemanas listrik dan masukkan kembali ke dalam tanur pada suhu (450 ± 5) C kemudian lanjutkan pemanasan sampai abu menjadi putih. Penambahan HNO 3 pekat dapat diulangi apabila abu masih berwarna keabu-abuan; f) larutkan abu berwarna putih dalam 5 ml HCl 6 N, kemudian larutkan dengan 10 ml HNO 3 0,1 N dan masukkan ke dalam labu ukur 50 ml kemudian tepatkan hingga tanda garis dengan aquabides (V), jika perlu, saring larutan menggunakan kertas saring, ke dalam botol polipropilen; g) siapkan larutan blanko dengan penambahan pereaksi dan perlakuan yang sama seperti contoh; h) baca absorbans larutan baku kerja dan larutan contoh terhadap blanko menggunakan SSA pada panjang gelombang maksimal sekitar 228,8 nm untuk Cd dan 283 nm untuk Pb; i) buat kurva kalibrasi antara konsentrasi logam (µg/ml) sebagai sumbu X dan absorbans sebagai sumbu Y; j) plot hasil pembacaan larutan contoh terhadap kurva kalibrasi (C); dan k) hitung kandungan logam dalam contoh. BSN dari 32

18 A Perhitungan Kandungan logam (mg/kg) = Keterangan: C adalah konsentrasi logam dari kurva kalibrasi, dinyatakan dalam mikrogram per mililiter (µg/ml); V adalah volume larutan akhir, dinyatakan dalam mililiter (ml); W adalah bobot contoh, dinyatakan dalam gram (g). A Ketelitian Kisaran hasil dua kali ulangan Relative Standard Deviation (RSD) maksimal 16 % dari nilai rata-rata hasil kandungan logam. Jika RSD lebih besar dari 16 %, maka analisis harus diulang kembali. A.4.2 Timah (Sn) A Prinsip Contoh didestruksi dengan HNO 3 dan HCl kemudian tambahkan KCl untuk mengurangi gangguan. Sn dibaca menggunakan Spektrofotometer Serapan Atom (SSA) pada panjang gelombang maksimal 235,5 nm dengan nyala oksidasi N 2 O-C 2 H 2. A Peralatan a) Spektrofotometer Serapan Atom (SSA) beserta kelengkapannya (lampu katoda Sn) terkalibrasi; b) Tanur terkalibrasi dengan ketelitian 1 ºC; c) Neraca analitik terkalibrasi dengan ketelitian 0,1 mg; d) Pemanas listrik; e) Penangas air; f) Labu ukur ml, 100 ml, dan 50 ml, terkalibrasi; g) Pipet ukur 10 ml dan 5 ml, berskala 0,1 ml, terkalibrasi; h) Erlenmeyer 250 ml; i) Gelas ukur 50 ml; dan j) Gelas piala 250 ml. A Pereaksi a) Larutan kalium klorida, KCl 10 mg/ml K; larutkan 1 g KCl dengan air menjadi 100 ml. b) Asam nitrat, HNO 3 pekat; c) Asam klorida, HCl pekat; d) Larutan baku µg/ml Sn; dan larutkan 1,000 g Sn dengan 200 ml HCl pekat dalam labu ukur ml, tambahkan 200 ml air suling, dinginkan pada suhu ruang dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis. e) Larutan baku kerja Sn. pipet 10 ml HCl pekat dan 1,0 ml larutan KCl ke dalam masing-masing labu ukur 100 ml. Tambahkan masing-masing 0 ml; 0,5 ml; 1,0 ml; 1,5 ml; 2,0 ml dan 2,5 ml larutan baku 1000 µg/ml Sn dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis. Larutan BSN dari 32

19 baku kerja ini memiliki konsentrasi 0 µg/ml; 5 µg/ml; 10 µg/ml; 15 µg/ml; 20 µg/ml dan 25 µg/ml Sn. A Cara kerja a) Timbang 10 g sampai dengan 20 g (W) dengan teliti ke dalam Erlenmeyer 250 ml, tambahkan 30 ml HNO 3 pekat dan biarkan 15 menit; b) panaskan perlahan selama 15 menit di dalam lemari asam, hindari terjadinya percikan yang berlebihan; c) lanjutkan pemanasan sehingga sisa volume 3 ml sampai dengan 6 ml atau sampai contoh mulai kering pada bagian bawahnya, hindari terbentuknya arang; d) angkat Erlenmeyer dari pemanas listrik, tambahkan 25 ml HCl pekat, dan panaskan selama 15 menit sampai letupan dari uap Cl 2 berhenti; e) tingkatkan pemanasan dan didihkan sehingga sisa volume 10 ml sampai dengan 15 ml; f) tambahkan 40 ml air suling, aduk, dan tuangkan ke dalam labu ukur 100 ml, bilas Erlenmeyer tersebut dengan 10 ml air suling (V); g) tambahkan 1,0 ml KCl, dinginkan pada suhu ruang, tepatkan dengan air suling sampai tanda garis dan saring; h) siapkan larutan blanko dengan penambahan pereaksi dan perlakuan yang sama seperti contoh; i) baca absorbans larutan baku kerja dan larutan contoh terhadap blanko menggunakan SSA pada panjang gelombang maksimal 235,5 nm dengan nyala oksidasi N 2 O-C 2 H 2 ; j) buat kurva kalibrasi antara konsentrasi logam (µg/ml) sebagai sumbu X dan absorbans sebagai sumbu Y; k) plot hasil pembacaan larutan contoh terhadap kurva kalibrasi (C); l) lakukan pengerjaan duplo; dan m) hitung kandungan Sn dalam contoh; A Perhitungan Kandungan timah (Sn) (mg/kg) = Keterangan: C adalah konsentrasi timah (Sn) dari kurva kalibrasi, dinyatakan dalam mikrogram per mililiter (µg/ml) V adalah volume larutan akhir, dinyatakan dalam mililiter (ml); dan W adalah bobot contoh, dinyatakan dalam gram (g). A Ketelitian Kisaran hasil dua kali ulangan Relative Standard Deviation (RSD) maksimal 16 % dari nilai rata-rata hasil kandungan timah (Sn). Jika RSD lebih besar dari 16 %, maka analisis harus diulang kembali. A.4.3 Merkuri (Hg) A Prinsip Reaksi antara senyawa merkuri dengan NaBH 4 atau SnCl 2 dalam keadaan asam akan membentuk gas atomik Hg. Jumlah Hg yang terbentuk sebanding dengan absorbans Hg yang dibaca menggunakan Spektrofotometer Serapan Atom (SSA) tanpa nyala pada panjang gelombang maksimal 253,7 nm. BSN dari 32

20 A Peralatan a) Spektrofotometer Serapan Atom (SSA) yang dilengkapi lampu katoda Hg dan generator uap hidrida (HVG) terkalibrasi; b) Microwave digester; c) Neraca analitik terkalibrasi dengan ketelitian 0,1 mg; d) Pemanas listrik; e) Pendingin terbuat dari borosilikat, diameter 12 mm sampai dengan 18 mm, tinggi 400 mm diisi dengan cincin Raschig setinggi 100 mm, dan dilapisi dengan batu didih berdiameter 4 mm di atas cincin setinggi 20 mm; f) Tabung destruksi; g) Labu destruksi 250 ml berdasar bulat; h) Labu ukur ml, 500 ml, 100 ml, dan 50 ml terkalibrasi; i) Gelas ukur 25 ml; j) Pipet ukur berskala 0,05 ml atau mikro buret terkalibrasi; dan k) Gelas piala 500 ml. A Bahan dan Pereaksi a) Larutan asam sulfat, H 2 SO 4 9 M; b) Larutan asam nitrat, HNO 3 7 M; c) Campuran asam nitrat : asam hidroksi perklorat (HNO 3 : HClO 4 = 1:1); d) Hidrogen peroksida, H 2 O 2 pekat; e) Larutan natrium molibdat, NaMoO 4.7H 2 O 2 %; f) Larutan pereduksi; campurkan 50 ml H 2 SO 4 dengan 300 ml air suling dalam gelas piala 500 ml dan dinginkan sampai suhu ruang kemudian tambahkan 15 g NaCl, 15 g hidroksilamin sulfat, dan 25 g SnCl 2. Pindahkan ke dalam labu ukur 500 ml dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis. g) Larutan natrium borohidrida, NaBH 4 ; larutkan 3 g serbuk NaBH 4 dan 3 g NaOH dengan air suling dalam labu ukur 500 ml. h) Larutan pengencer; masukkan 300 ml sampai dengan 500 ml air suling ke dalam labu ukur ml dan tambahkan 58 ml HNO 3 kemudian tambahkan 67 ml H 2 SO 4. Encerkan dengan air suling sampai tanda garis dan kocok. i) Larutan baku µg/ml Hg; larutkan 0,1354 g HgCl 2 dengan kira-kira 25 ml air suling dalam gelas piala 250 ml dan masukkan ke dalam labu ukur 100 ml kemudian encerkan dengan air suling sampai tanda garis. j) Larutan baku 1 µg/ml Hg; dan pipet 1 ml larutan baku µg/ml Hg ke dalam labu ukur ml dan encerkan dengan larutan pengencer sampai tanda garis, kemudian kocok. Larutan baku kedua ini memiliki konsentrasi 1 µg/ml. k) Larutan baku kerja Hg; dan pipet masing-masing 0,25 ml; 0,5 ml; 1 ml; dan 2 ml larutan baku 1 µg/ml ke dalam labu ukur 100 ml terpisah dan encerkan dengan larutan pengencer sampai tanda garis. Larutan baku kerja ini memiliki konsentrasi 0,0 025 µg/ml; 0,005 µg/ml; 0,01 µg/ml; 0,02 µg/ml Hg. l) Batu didih. BSN dari 32

21 A A Cara kerja Pengabuan basah a) Timbang 5 g contoh (W) dengan teliti ke dalam labu destruksi dan tambahkan 25 ml H 2 SO 4 9 M, 20 ml HNO 3 7 M, 1 ml larutan natrium molibdat 2 %, dan 5 butir sampai dengan 6 butir batu didih; b) hubungkan labu destruksi dengan pendingin dan panaskan di atas pemanas listrik selama 1 jam. Hentikan pemanasan dan biarkan selama 15 menit; c) tambahkan 20 ml campuran HNO 3 : HClO 4 (1:1) melalui pendingin; d) hentikan aliran air pada pendingin dan panaskan dengan panas tinggi hingga timbul uap putih. Lanjutkan pemanasan selama 10 menit dan dinginkan; e) tambahkan 10 ml air suling melalui pendingin dengan hati-hati sambil labu digoyanggoyangkan; f) didihkan lagi selama 10 menit; g) matikan pemanas listrik dan cuci pendingin dengan 15 ml air suling sebanyak 3 kali kemudian dinginkan sampai suhu ruang; h) pindahkan larutan destruksi contoh ke dalam labu ukur 100 ml secara kuantitatif dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis (V); i) pipet 25 ml larutan di atas ke dalam labu ukur 100 ml dan encerkan dengan larutan pengencer sampai tanda garis; j) siapkan larutan blanko dengan penambahan pereaksi dan perlakuan yang sama seperti contoh; k) tambahkan larutan pereduksi ke dalam larutan baku kerja Hg, larutan contoh, dan larutan blanko pada alat HVG; l) baca absorbans larutan baku kerja, larutan contoh, dan larutan blanko menggunakan SSA tanpa nyala pada panjang gelombang 253,7 nm; m) buat kurva kalibrasi antara konsentrasi logam (µg/ml) sebagai sumbu X dan absorbans sebagai sumbu Y; n) plot hasil pembacaan larutan contoh terhadap kurva kalibrasi (C); o) lakukan pengerjaan duplo; dan p) hitung kandungan Hg dalam contoh. A Destruksi menggunakan microwave digester atau destruksi sistem tertutup a) Timbang 1 g contoh (W) ke dalam tabung destruksi dan tambahkan 10 ml HNO 3, 1 ml H 2 O 2 kemudian tutup rapat; b) masukkan ke dalam microwave digester dan kerjakan sesuai dengan petunjuk pemakaian alat; c) pindahkan larutan destruksi contoh ke dalam labu ukur 50 ml secara kuantitatif dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis (V); d) siapkan larutan blanko dengan penambahan pereaksi dan perlakuan yang sama seperti contoh; e) tambahkan larutan pereduksi ke dalam larutan baku kerja, larutan contoh, dan larutan blanko pada alat HVG; f) baca absorbans larutan baku kerja, larutan contoh, dan larutan blanko menggunakan SSA tanpa nyala pada panjang gelombang 253,7 nm; g) buat kurva kalibrasi antara konsentrasi logam (µg/ml) sebagai sumbu X dan absorbans sebagai sumbu Y; h) plot hasil pembacaan larutan contoh terhadap kurva kalibrasi (C); i) lakukan pengerjaan duplo; dan j) hitung kandungan Hg dalam contoh. BSN dari 32

22 A Perhitungan Kandungan merkuri (Hg) (mg/kg) = Keterangan: C adalah konsentrasi merkuri (Hg) dari kurva kalibrasi, dinyatakan dalam mikrogram per mililiter (µg/ml); V adalah volume larutan akhir, dinyatakan dalam mililiter (ml); W adalah bobot contoh, dinyatakan dalam gram (g); fp adalah faktor pengenceran. A Ketelitian Kisaran hasil dua kali ulangan Relative Standard Deviation (RSD) maksimal 16 % dari nilai rata-rata hasil kandungan merkuri (Hg). Jika RSD lebih besar dari 16 %, maka analisis harus diulang kembali. A.5 Cemaran arsen (As) A.5.1 Prinsip Contoh didestruksi dengan asam menjadi larutan arsen. Larutan As 5+ direduksi dengan KI menjadi As 3+ dan direaksikan dengan NaBH 4 atau SnCl 2 sehingga terbentuk AsH 3 yang kemudian dibaca dengan Spektrofotometer Serapan Atom (SSA) pada panjang gelombang maksimal 193,7 nm. A.5.2 Peralatan a) Spektrofotometer Serapan Atom (SSA) yang dilengkapi dengan lampu katoda As dan generator uap hidrida (HVG) terkalibrasi; b) Tanur terkalibrasi dengan ketelitian 1 C; c) Microwave digester; d) Neraca analitik terkalibrasi dengan ketelitian 0,1 mg; e) Pemanas listrik; f) Bunsen Burner; g) Labu Kjeldahl 250 ml; h) Labu berbahan borosilikat berdasar bulat 50 ml; i) Labu ukur ml, 500 ml, 100 ml, dan 50 ml terkalibrasi; j) Gelas piala 200 ml; k) Pipet volumetrik 25 ml terkalibrasi; l) Pipet ukur berskala 0,05 ml atau mikro buret terkalibrasi; m) Cawan porselen 50 ml; dan n) Gelas ukur 25 ml. A.5.3 Pereaksi a) Asam nitrat, HNO 3 pekat; b) Asam sulfat, H 2 SO 4 pekat; c) Asam perklorat, HClO 4 pekat; d) Ammonium oksalat, (NH 4 ) 2 C 2 O 4 jenuh; e) Hidrogen peroksida, H 2 O 2 pekat; f) Larutan natrium borohidrida, NaBH 4 4 %; larutkan 3 g NaBH 4 dan 3 g NaOH dengan air suling sampai tanda garis dalam labu ukur 500 ml. BSN dari 32

23 g) Larutan asam klorida, HCl 8 M; larutkan 66 ml HCl pekat kedalam labu ukur 100 ml dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis. h) Larutan timah (II) klorida, SnCl 2.2H 2 O 10 %; timbang 50 g SnCl 2.2H 2 O ke dalam gelas piala 200 ml dan tambahkan 100 ml HCl pekat. Panaskan hingga larutan jernih dan dinginkan kemudian tuangkan ke dalam labu ukur 500 ml dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis. i) Larutan kalium iodida, KI 20 %; timbang 20 g KI ke dalam labu ukur 100 ml dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis (larutan harus dibuat langsung sebelum digunakan). j) Larutan Mg(NO 3 ) 2 75 mg/ml; larutkan 3,75 g MgO dengan 30 ml H 2 O secara hati-hati, tambahkan 10 ml HNO 3, dinginkan dan encerkan hingga 50 ml dengan air suling; k) Larutan baku µg/ml As; larutkan 1,3203 g As 2 O 3 kering dengan sedikit NaOH 20 % dan netralkan dengan HCl atau HNO 3 1:1 (1 bagian asam : 1 bagian air). Masukkan ke dalam labu ukur ml dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis. l) Larutan baku 100 µg/ml As; pipet 10 ml larutan baku As µg/ml ke dalam labu ukur 100 ml dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis. Larutan baku kedua ini memiliki konsentrasi 100 µg/ml As. m) Larutan baku 1 µg/ml As; dan pipet 1 ml larutan baku As 100 µg/ml ke dalam labu ukur 100 ml dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis. Larutan baku ketiga ini memiliki konsentrasi 1 µg/ml As. n) Larutan baku kerja As. pipet masing-masing 1,0 ml; 2,0 ml; 3,0 ml; 4,0 ml dan 5,0 ml larutan baku 1 µg/ml As ke dalam labu ukur 100 ml terpisah dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis kemudian kocok Larutan baku kerja ini memiliki konsentrasi 0,01 µg/ml; 0,02 µg/ml; 0,03 µg/ml; 0,04 µg/ml dan 0,05 µg/ml As. A.5.4 A Cara kerja Pengabuan basah a) Timbang 5 g sampai dengan 10 g contoh (W) ke dalam labu Kjeldahl 250 ml, tambahkan 5 ml sampai dengan 10 ml HNO 3 pekat dan 4 ml sampai dengan 8 ml H 2 SO 4 pekat dengan hati-hati; b) setelah reaksi selesai, panaskan dan tambahkan HNO 3 pekat sedikit demi sedikit sehingga contoh berwarna coklat atau kehitaman; c) tambahkan 2 ml HClO 4 70 % sedikit demi sedikit dan panaskan lagi sehingga larutan menjadi jernih atau berwarna kuning (jika terjadi pengarangan setelah penambahan HClO 4, tambahkan lagi sedikit HNO 3 pekat); d) dinginkan, tambahkan 15 ml H 2 O dan 5 ml (NH 4 ) 2 C 2 O 4 jenuh; e) panaskan sehingga timbul uap SO 3 di leher labu; f) dinginkan, pindahkan secara kuantitatif ke dalam labu ukur 50 ml dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis (V); g) pipet 25 ml larutan diatas dan tambahkan 2 ml HCl 8 M, 0,1 ml KI 20 % kemudian kocok dan biarkan minimal 2 menit; h) siapkan larutan blanko dengan penambahan pereaksi dan perlakuan yang sama seperti contoh; i) tambahkan larutan pereduksi (NaBH 4 ) ke dalam larutan baku kerja As, larutan contoh, dan larutan blanko pada alat HVG; j) baca absorbans larutan baku kerja, larutan contoh, dan larutan blanko menggunakan SSA tanpa nyala pada panjang gelombang 193,7 nm; BSN dari 32

24 k) buat kurva kalibrasi antara konsentrasi logam (µg/ml) sebagai sumbu X dan absorbans sebagai sumbu Y; l) plot hasil pembacaan larutan contoh terhadap kurva kalibrasi (C); m) lakukan pengerjaan duplo; dan n) hitung kandungan As dalam contoh. A Destruksi menggunakan microwave digester atau destruksi sistem tertutup a) Timbang 1 g contoh (W) ke dalam tabung destruksi dan tambahkan 5 ml HNO 3, 1 ml H 2 O 2 kemudian tutup rapat. b) masukkan ke dalam microwave digester dan kerjakan sesuai dengan petunjuk pemakaian alat; c) setelah dingin, pindahkan larutan destruksi ke dalam labu ukur 25 ml secara kuantitatif dan encerkan dengan air suling sampai tanda garis (V); d) pipet 10 ml larutan destruksi ke dalam labu borosilikat berdasar bulat 50 ml, tambahkan 1 ml larutan Mg(NO 3 ) 2, Uapkan di atas pemanas listrik hingga kering dan arangkan. Abukan dalam tanur dengan suhu (450 C) (± 1 jam); e) dinginkan, larutkan dengan 2,0 ml HCl 8 M, 0.1 ml KI 20 % dan biarkan minimal 2 menit. Tuangkan larutan tersebut ke dalam tabung contoh pada alat; f) siapkan NaBH 4 dan HCl dalam tempat yang sesuai dengan yang ditentukan oleh alat; g) tuangkan larutan baku kerja As 0,01 µg/ml; 0,02 µg/ml; 0,03 µg/ml; 0,04 µg/ml; 0,05 µg/ml serta blanko ke dalam 6 tabung contoh lainnya. Nyalakan Bunsen burner serta tombol pengatur aliran pereaksi dan aliran contoh; h) baca nilai absorbans tertinggi larutan baku kerja As dan contoh dengan blanko sebagai koreksi; i) buat kurva kalibrasi antara konsentrasi As (µg/ml) sebagai sumbu X dan absorbans sebagai sumbu Y; j) plot hasil pembacaan larutan contoh terhadap kurva kalibrasi (C); k) lakukan pengerjaan duplo; dan l) hitung kandungan As dalam contoh. A.5.5 Perhitungan Kandungan arsen (As) (mg/kg) = Keterangan: C adalah konsentrasi arsen (As) dari kurva kalibrasi, dinyatakan dalam mikrogram per miliiliter (µg/ml) V adalah volume larutan akhir, dinyatakan dalam mililiter (ml); W adalah bobot contoh, dinyatakan dalam gram (g); fp adalah faktor pengenceran. A.5.6 Ketelitian Kisaran hasil dua kali ulangan Relative Standard Deviation (RSD) maksimal 16 % dari nilai rata-rata hasil kandungan arsen (As). Jika RSD lebih besar dari 16 %, maka analisis harus diulang kembali. BSN dari 32

25 A.6 Cemaran mikroba A.6.1 A Persiapan dan homogenisasi contoh untuk uji Angka Lempeng Total Prinsip Pembebasan sel-sel bakteri yang mungkin terlindung oleh partikel makanan dan untuk menggiatkan kembali sel-sel bakteri yang mungkin viabilitasnya berkurang karena kondisi yang kurang menguntungkan dalam makanan. Persiapan dan homogenisasi contoh bertujuan agar bakteri terdistribusi dengan baik di dalam contoh makanan yang ditetapkan. A Peralatan a) Alat homogenisasi (blender) dengan kecepatan putaran rpm sampai dengan rpm; b) Otoklaf; c) Neraca analitik kapasitas g terkalibrasi dengan ketelitian 0,1 g; d) Pemanas listrik; e) Labu ukur ml, 500 ml, 100 ml, dan 50 ml terkalibrasi; f) Gelas piala steril; g) Erlenmeyer steril; h) Botol pengencer steril; i) Pipet volumetrik steril 10,0 ml dan 1,0 ml terkalibrasi, dilengkapi dengan bulb dan pipettor; j) Tabung reaksi; dan k) Sendok, gunting, dan spatula steril. A Larutan pengencer untuk Angka Lempeng Total Buffered peptone water (BPW) - Peptone 10 g - Natrium klorida 5 g - Dinatrium hidrogen fosfat 3,5 g - Kalium dihidrogen fosfat 1,5 g - Air suling 1 L Larutkan bahan-bahan di atas menjadi 1 L dengan air suling dan atur ph menjadi 7,0. Masukkan ke dalam botol pengencer. Sterilkan menggunakan otoklaf pada suhu 121 C selama 15 menit. A Homogenisasi contoh untuk ALT a) Pipet 25 ml contoh secara aseptik ke dalam botol pengencer yang telah berisi 225 ml larutan pengencer steril sehingga diperoleh pengenceran 1:10; dan b) kocok campuran beberapa kali sehingga homogen. A.6.2 A Angka lempeng total Prinsip Pertumbuhan bakteri mesofil aerob setelah contoh diinkubasikan dalam pembenihan yang sesuai selama 72 jam pada suhu (30 1) C. BSN dari 32

26 A Peralatan a) Inkubator (30 ± 1) C, terkalibrasi; b) Oven/alat sterilisasi kering terkalibrasi; c) Otoklaf; d) Penangas air bersirkulasi (45 ± 1) C; e) Alat penghitung koloni; f) Botol pengencer 160 ml terbuat dari gelas borosilikat, dengan sumbat karet atau tutup ulir plastik; g) Pipet ukur 1 ml steril dengan skala 0,1 ml dilengkapi bulb dan pipettor; dan h) Cawan Petri gelas/plastik (berukuran minimal 15 mm x 90 mm), steril. A Pembenihan dan pengencer a) Buffered peptone water (BPW) Peptone 10 g Natrium klorida 5 g Dinatrium hidrogen fosfat 3,5 g Kalium dihidrogen fosfat 1,5 g - Air suling 1 L Larutkan bahan-bahan diatas menjadi ml dengan air suling dan atur ph menjadi 7,0. Masukkan ke dalam botol pengencer. Sterilkan dengan menggunakan otoklaf pada suhu 121 C selama 15 menit. b) Plate count agar (PCA) Yeast extract 2,5 g Pancreatic digest of caseine 5 g Glukosa 1 g Agar 15 sampai dengan 20 g Air suling 1 L Larutkan semua bahan-bahan, atur ph 7,0. Masukkan dalam labu, sterilkan pada 121 C selama 15 menit. A Cara kerja a) Timbang 25 g contoh, masukkan ke dalam Erlenmeyer yang telah berisi 225 ml larutan pengencer hingga diperoleh pengenceran 1:10. Kocok campuran beberapa kali hingga homogen. Pengenceran dilakukan sampai tingkat pengenceran tertentu sesuai keperluan seperti pada Gambar A.1. BSN dari 32

27 Gambar A.1 - Tingkat pengenceran menggunakan larutan pengencer Buffered Peptone Water (BPW). a) Pipet masing-masing 1 ml dari pengenceran ke dalam cawan Petri steril secara duplo. b) Ke dalam setiap cawan Petri tuangkan sebanyak 12 ml sampai dengan 15 ml media PCA yang telah dicairkan yang bersuhu (45 ± 1) C dalam waktu 15 menit dari pengenceran pertama. c) Goyangkan cawan Petri dengan hati-hati (putar dan goyangkan ke depan dan ke belakang serta ke kanan dan ke kiri) hingga contoh tercampur rata dengan pembenihan. d) Kerjakan pemeriksaan blanko dengan mencampur air pengencer dengan pembenihan untuk setiap contoh yang diperiksa. e) Biarkan hingga campuran dalam cawan Petri membeku. f) Masukkan semua cawan Petri dengan posisi terbalik ke dalam lemari pengeram dan inkubasikan pada suhu 30 C selama 72 jam. g) Catat pertumbuhan koloni pada setiap cawan Petri yang mengandung (25-250) koloni setelah 72 jam. h) Hitung angka lempeng total dalam 1 ml contoh dengan mengalikan jumlah rata-rata koloni pada cawan Petri dengan faktor pengenceran yang digunakan. A Perhitungan Angka lempeng total ( koloni/ml) = n F Keterangan: n adalah rata rata koloni dari dua cawan Petri dari satu pengenceran, dinyatakan dalam koloni per ml (koloni/ml); F adalah faktor pengenceran dari rata-rata koloni yang dipakai A A ml 9 ml Buffered Peptone Water Pernyataan hasil Cara menghitung 1:10 1 ml 1 ml 1:100 1:1000 1:10000 a) Pilih cawan Petri dari satu pengenceran yang menunjukkan jumlah koloni antara 25 koloni sampai dengan 250 koloni setiap cawan Petri. Hitung semua koloni dalam BSN dari 32

28 cawan Petri menggunakan alat penghitung koloni. Hitung rata-rata jumlah koloni dan kalikan dengan faktor pengenceran. Nyatakan hasilnya sebagai jumlah bakteri per gram; b) jika salah satu dari dua cawan Petri terdapat jumlah koloni lebih kecil dari 25 koloni atau lebih besar dari 250 koloni, hitung jumlah koloni yang terletak antara 25 koloni sampai dengan 250 koloni dan kalikan dengan faktor pengenceran. Nyatakan hasilnya sebagai jumlah bakteri per gram; Contoh : ALT 124, x 2 0,1 x 1 x 10 c) jika hasil dari dua pengenceran jumlahnya berturut-turut terletak antara 25 koloni sampai dengan 250 koloni, hitung jumlah koloni dari masing-masing pengenceran koloni per g dengan rumus : C ALT 1 x n 0,1 x n 1 2 x d Keterangan: C adalah jumlah koloni dari tiap-tiap cawan Petri; n 1 adalah jumlah cawan Petri dari pengenceran pertama yang dihitung; n 2 adalah jumlah cawan Petri dari pengenceran kedua; d adalah pengenceran pertama yang dihitung; Contoh : ALT , ,3357 d) jika jumlah koloni dari masing-masing cawan Petri lebih dari 25 koloni nyatakan sebagai jumlah bakteri perkiraan; jika jumlah koloni per cm 2 kurang dari 100 koloni, maka nyatakan hasilnya sebagai jumlah perkiraan : jumlah bakteri dikalikan faktor pengenceran. Contoh : Jumlah bakteri perkiraan ~ x 640 = (6.4 x 10 5 ) jika jumlah koloni per cm 2 lebih dari 100 koloni, maka nyatakan hasilnya: area x faktor pengenceran x 100 contoh rata-rata jumlah koloni 110 per cm 2 Contoh : area (cm 2 ) jumlah bakteri perkiraan ~ > 65 x 10 3 x 100 = > (6.5 x 10 6 ) ~ > 59 x 10 3 x 100 = > (5.9 x 10 6 ) e) jika jumlah koloni dari masing-masing koloni yang tumbuh pada cawan Petri kurang dari 25, maka nyatakan jumlah bakteri perkiraan lebih kecil dari 25 koloni dikalikan pengenceran yang terendah; BSN dari 32