PENERAPAN METODE KROMATOGRAFI CAIR KINERJA TINGGI (KCKT) PADA PENETAPAN KADAR DEKSAMETASON DALAM TABLET CAMPURAN DENGAN DEKSKLORFENIRAMIN MALEAT

Transkripsi

1 PENERAPAN METODE KROMATOGRAFI CAIR KINERJA TINGGI (KCKT) PADA PENETAPAN KADAR DEKSAMETASON DALAM TABLET CAMPURAN DENGAN DEKSKLORFENIRAMIN MALEAT SKRIPSI Oleh: SYARIFA ANDIANA SYARIF NIM FAKULTAS FARMASI UNIVERSITAS SUMATERA UTARA MEDAN 2009

2 PENERAPAN METODE KROMATOGRAFI CAIR KINERJA TINGGI (KCKT) PADA PENETAPAN KADAR DEKSAMETASON DALAM TABLET CAMPURAN DENGAN DEKSKLORFENIRAMIN MALEAT SKRIPSI Diajukan untuk Melengkapi Salah Satu Syarat untuk Mencapai Gelar Sarjana Farmasi pada Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara Oleh: SYARIFA ANDIANA SYARIF NIM FAKULTAS FARMASI UNIVERSITAS SUMATERA UTARA MEDAN 2009

3 LEMBAR PENGESAHAN SKRIPSI PENERAPAN METODE KROMATOGRAFI CAIR KINERJA TINGGI (KCKT) PADA PENETAPAN KADAR DEKSAMETASON DALAM TABLET CAMPURAN DENGAN DEKSKLORFENIRAMIN MALEAT Oleh: SYARIFA ANDIANA SYARIF NIM Dipertahankan di Hadapan Panitia Penguji Skripsi Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara Pada Tanggal: Agustus 2009 Disetujui Oleh: Pembimbing I, Panitia Penguji, Drs. Fathur Rahman Harun, M.Si., Apt. Prof. Dr. rer.nat. Effendy D Putra, SU. NIP NIP Pembimbing II, Drs. Fathur Rahman Harun, M.Si., Apt. NIP Drs Muchlisyam, M.Si., Apt. Drs. Chairul Azhar Dalimunthe, M.Sc. NIP NIP Dekan, Dra. Sudarmi, M.Si., Apt. NIP Prof. Dr. Sumadio Hadisahputra, Apt. NIP

4 PENERAPAN METODE KROMATOGRAFI CAIR KINERJA TINGGI (KCKT) PADA PENETAPAN KADAR DEKSAMETASON DALAM TABLET CAMPURAN DENGAN DEKSKLORFENIRAMIN MALEAT ABSTRAK Sediaan obat yang mengandung deksametason dan deksklorfeniramin maleat banyak digunakan untuk berbagai penyakit. Hal ini dilatarbelakangi oleh kemampuan menanggulangi peradangan serta alergi yang dimiliki oleh deksametason dan sifat anti histamin yang ada pada deksklorfeniramin maleat, tetapi juga menimbulkan efek samping yang tidak diinginkan. Efek samping yang tidak diinginkan tersebut antara lain orang yang menggunakannya akan menjadi gemuk karena tubuhnya menahan air secara berlebihan. Menurut Undang-Undang No.23 tahun 1992 pasal 40 ayat 1 tentang Kesehatan bahwa obat dan bahan obat harus memenuhi standar Farmakope dan buku standar lain. Salah satu parameter obat tersebut dikatakan memenuhi standar apabila kadar zat berkhasiat yang terkandung di dalamnya memenuhi persyaratan Farmakope Indonesia. Penetapan kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat dilakukan dengan menggunakan kromatografi cair kinerja tinggi (KCKT) fase balik dengan kolom VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), fase gerak campuran asetonitril : air, laju aliran 2,5 ml/menit, sensitivitas 1,000 AUFS pada panjang gelombang 254 nm. Hasil uji identifikasi terhadap sampel yang ditentukan dengan parameter waktu retensi menunjukkan bahwa sampel mengandung deksametason dan deksklorfeniramin maleat.

5 Uji validasi dari tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) secara statistik diperoleh persen recovery sebesar 92,96%, relative standard deviasi (RSD) = 2,36%, batas deteksi (LOD) = 2,35 mcg/ml dan batas kuantitasi (LOQ) = 7,85 mcg/ml. Ini menunjukkan bahwa metode yang digunakan memiliki ketepatan dan ketelitian yang baik. Dari hasil penelitian diperoleh kadar deksametason dalam sedían tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) = 96,12% ± 3,44, Pritacort (PT. Molex Ayus) = 95,87% ± 2,26, Proxona (PT. Harsen) = 104,75% ± 3,77, Mexon (PT. Sampharindo) = 103,74% ± 2,20. Ini menunjukkan bahwa semua sediaan tablet yang dianalisis memenuhi persyaratan kadar yang tercantum dalam Farmakope Indonesia edisi IV (1995), yaitu mengandung deksametason tidak kurang dari 90% dan tidak lebih dari 110% dari jumlah yang tertera pada etiket. Kata kunci : deksametason, deksklorfeniramin maleat, kromatografi cair kinerja tinggi

6 THE APPLICATION OF HIGH PERFORMANCE LIQUID CHROMATOGRAPHY ON DETERMINATION OF DEXAMETHASONE CONCENTRATION IN COMBINATION TABLETS WITH DEXCHLORPHENIRAMINE MALEAT ABSTRACT Most drugs that contain dexamethasone and dexchlorpheniramine maleat, are used for various disease. This is because of dexamethasone ability and the antihistaminic properties of dexchlorpheniramine maleat to minimize inflamation and allergy, but it also cause undesirabled side effect. Patient will get obese because of extreme water retention. It is one of the undesirable side effect. Based on UU No.23 tahun 1992 pasal 40 ayat 1 about health, drugs and drug material should be fulfill Pharmacopeia standard and other standard books. One of the parameter that one drug can be stated to already fulfill the standard when active ingredient concentration have fulfill Indonesian Pharmacopeia standard. Determination of dexamethasone concentration in combination tablets with dexchlorpheniramine maleat has done by utilizing High Performance Liquid Chromatography (HPLC), reverse phase with VP-ODS column (4,6 mm x 25 cm), mobile phase mixture from acetonitrile : aquabidest, flow rate 2,5 ml/minute, sensitivity 1,000 AUFS in wavelength 254 nm. The result of sample identification test determined by retention time showed that sample contained dexamethasone and dexchlorpheniramine maleat. Validation test done to Pritacort tablet (PT. Molex Ayus) obtained that percent recovery is 92,96%, relative standard deviation (RSD) = 2,36%, limite of detection (LOD) = 2,35 mcg/ml and limite of quantitation (LOQ) = 7,85 mcg/ml.

7 This result showed that methode used in this research have good accuracy and precision. From research result, dexamethasone concentration obtained in Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) = 96,12% ± 3,44, Pritacort (PT. Molex Ayus) = 95,87% ± 2,26, Proxona (PT. Harsen) = 104,75% ± 3,77, Mexon (PT. Sampharindo) = 103,74% ± 2,20. This is showed that all tablet analized by researder fulfilled cencentration qualification stated in Indonesian Pharmacopeia 4 th Edition (1995), that contained dexamethasone not less than 90% and not more than 110% of the labeled amount. Keyword : dexamethasone, dexchlorpheniramine maleat, high performance liquid chromatography

8 DAFTAR ISI Halaman JUDUL... i LEMBAR PENGESAHAN... ii ABSTRAK... iii ABSTRACT... v DAFTAR ISI... vii DAFTAR TABEL... ix DAFTAR GAMBAR x DAFTAR LAMPIRAN... xii BAB I PENDAHULUAN Latar Belakang Perumusan Masalah Hipotesis Tujuan Penelitian... 4 BAB II METODOLOGI PENELITIAN Waktu dan Tempat Penelitian Alat-alat Bahan-bahan Pengambilan Sampel Prosedur Penelitian Pembuatan Fase Gerak Pembuatan larutan induk baku BPFI Penentuan panjang gelombang maksimum secara spektrofotometri UV Penetuan panjang gelombang maksimum deksametason BPFI Penetuan panjang gelombang maksimum deksklorfeniramin maleat BPFI Penentuan panjang gelombang analisis secara spektrofotometri UV Penyiapan alat KCKT... 7

9 2.5.6 Identifikasi Penentuan kuantitatif Penentuan linieritas kurva kalibrasi deksametason BPFI Penetapan Kadar Sampel Penentuan uji akurasi dengan parameter % recovery menggunakan metode standar adisi Penentuan uji presisi Penentuan batas deteksi dan batas kuantitasi Analisa data secara statistik BAB III HASIL DAN PEMBAHASAN. 12 BAB IV KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan Saran DAFTAR PUSTAKA LAMPIRAN

10 DAFTAR TABEL Halaman Tabel 1. Hasil pengolahan data dari sediaan tablet deksametason Tabel 2. Hasil penetapan kadar deksametason dalam sediaan tablet dengan nama dagang yang ditentukan berdasarkan Luas Area Tabel 3. Hasil pengujian % recovery deksametason dengan metode adisi (spiked sample) Tabel 4. Data hasil penyuntikan larutan deksametason BPFI berdasarkan Luas Area... 31

11 DAFTAR GAMBAR Halaman Gambar 1. Kurva serapan deksametason BPFI dengan konsentrasi 12 mcg/ml dalam pelarut campuran metanol air (1:1) secara spektrofotometri ultraviolet Gambar 2. Kurva serapan deksklorfeniramin maleat BPFI dengan konsentrasi 16 mcg/ml dalam pelarut campuran metanol air (1:1) secara spektrofotometri ultraviolet Gambar 3. Kurva serapan deksametason BPFI (12 mcg/ml) dan deksklorfeniraminmaleat (16 mcg/ml) dalam pelarut campuran metanol air (1:1) secara spektrofotometri ultraviolet Gambar 4. Kromatogram deksametason BPFI dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm Gambar 5. Kromatogram deksklorfeniramin maleat BPFI dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm Gambar 6. Kromatogram tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm Gambar 7. Kromatogram tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm Gambar 8. Kromatogram tablet Proxona (PT. Harsen) dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm... 16

12 Gambar 9. Kromatogram tablet Mexon (PT. Sampharindo) dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm Gambar 10. Kurva kalibrasi deksametason BPFI secara KCKT menggunakan kolom shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm... 18

13 DAFTAR LAMPIRAN Halaman Lampiran 1. Gambar alat KCKT dan syringe 100 µl Lampiran 2. Gambar alat ultrasonic cleaner dan penyaring Lampiran 3. Kromatogram dari larutan deksametason BPFI pada pembuatan kurva kalibrasi Lampiran 4. Perhitungan persamaan regresi dari kurva kalibrasi deksametason BPFI yang diperoleh secara KCKT pada panjang gelombang 254 nm Lampiran 5. Perhitungan metode standar adisi Lampiran 6. Kromatogram hasil recovery dari sampel tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) Lampiran 7. Data hasil % recovery deksametason pada tablet Pritacort (PT. Lampiran 8. Lampiran 9. Molex Ayus) dengan metode standar adisi Contoh perhitungan % recovery dengan metode penambahan baku (standard addition method) Analisa data statistik % recovery pada tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) dengan metode standar adisi Lampiran 10. Perhitungan batas deteksi (LOD) dan batas kuantitasi (LOQ) Lampiran 11. Kromatogram dari larutan tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) Lampiran 12. Analisa data statistik untuk mencari kadar sebenarnya dari penyuntikan larutan tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) Lampiran 13. Kromatogram dari larutan tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) Lampiran 14. Analisa data statistik untuk mencari kadar sebenarnya dari penyuntikan larutan tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) Lampiran 15. Kromatogram dari larutan tablet Proxona (PT. Harsen) Lampiran 16. Analisa data statistik untuk mencari kadar sebenarnya dari penyuntikan larutan tablet Proxona (PT. Harsen)... 52

14 Lampiran 17. Kromatogram dari larutan tablet Mexon (PT. Sampharindo) Lampiran 18. Analisa data statistik untuk mencari kadar sebenarnya dari penyuntikan larutan tablet Mexon (PT. Sampharindo) Lampiran 19. Perhitungan Penimbangan sampel Lampiran 20. Hasil Analisa Kadar deksametason dalam Sampel Lampiran 21. Contoh perhitungan untuk mencari kadar deksametason Lampiran 22. Daftar spesifikasi sampel Lampiran 23. Sertifikat pengujian Deksametason BPFI Lampiran 24. Sertifikat pengujian Deksklorfeniramin maleat BPFI Lampiran 25. Nilai Distribusi t... 63

15 BAB I PENDAHULUAN 1.1. Latar Belakang Deksametason merupakan salah satu glukokortikoid yang dapat menanggulangi peradangan dan alergi kurang lebih sepuluh kali lebih besar dari pada yang dimiliki prednison atau prednisolon. Deksklorfeniramin maleat dapat mengatasi secara sempurna sebagian besar akibat-akibat khas yang ditimbulkan oleh histamin dan secara klinis bermanfaat dalam pencegahan dan penanggulangan banyak gejala alergi (Anonim). Sediaan obat yang mengandung deksametason dan deksklorfeniramin maleat banyak digunakan untuk berbagai penyakit, bahkan sering disebut life saving drugs. Hal ini dilatarbelakangi oleh kemampuan menanggulangi peradangan serta alergi yang dimiliki oleh deksametason dan sifat anti histamin yang ada pada deksklorfeniramin maleat, tetapi juga menimbulkan efek samping yang tidak diinginkan (Suherman, 2007). Efek samping yang tidak diinginkan tersebut antara lain orang yang menggunakannya akan menjadi gemuk karena tubuhnya menahan' air secara berlebihan. Yang pertama-tama terlihat wajah peminumnya menjadi gemuk (moonface). Dalam jangka panjang, bahan obat ini mengakibatkan gangguan fungsi ginjal bahkan merusak ginjal. Menurut Undang-Undang No.23 tahun 1992 pasal 40 ayat 1 tentang Kesehatan bahwa obat dan bahan obat harus memenuhi standar Farmakope dan buku standar lain. Salah satu parameter obat tersebut dikatakan memenuhi standar

16 apabila kadar zat berkhasiat yang terkandung di dalamnya memenuhi persyaratan Farmakope Indonesia. Persyaratan kadar untuk sediaan tablet deksametason menurut Farmakope Indonesia edisi IV tahun 1995 yaitu mengandung Deksametason, C 22 H 29 FO 5, tidak kurang dari 90,0% dan tidak lebih dari 110,0% dari jumlah yang tertera pada etiket. Menurut Farmakope Indonesia edisi IV (1995) dan USP XXX (2007) tablet deksametason kadarnya ditentukan secara Kromatografi Cair Kinerja Tinggi menggunakan kolom ODS (4,6 mm x 30 cm) dengan fase gerak campuran asetonotril dan air (1:3), volume penyuntikan antara 5 µl dan 20 µl, dan deteksi dilakukan pada panjang gelombang 254 nm. Untuk tablet deksklorfeniramin maleat menurut USP XXX (2007) penetapan kadarnya ditentukan secara spektrofotometri UV. Monografi sediaan tablet campuran deksametason dan deksklorfeniramin maleat tidak terdapat dalam Farmakope Indonesia edisi IV (1995) dan USP XXX (2007). Kedua komponen ini berbeda dalam sifat kepolarannya dimana deksklorfeniramin maleat lebih polar daripada deksametason, sehingga kemungkinan dapat dipisahkan dengan menggunakan kromatografi fase balik (kolom C 18 ) dan deksklorfeniramin maleat akan terelusi terlebih dahulu dibandingkan deksametason. Berdasarkan hal tersebut diatas peneliti ingin menentukan kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25,0 cm), fase gerak

17 asetonitril dan air. Adapun alasan untuk memilih metode KCKT ini karena metode ini memiliki beberapa keuntungan antara lain cepat, daya pisah baik, peka, kolom dapat dipakai berulang kali dan perangkatnya dapat digunakan secara otomatis dan kuantitatif (Johnson and Stevenson, 1991; Rohman, 2007). Pada penelitian ini dilakukan uji validasi metode dengan metode standar adisi (spiked sample) yang meliputi uji akurasi dengan parameter % recovery dan uji presisi dengan parameter RSD (Relative Standard Deviasi), LOD (Limite of Detection) dan LOQ (Limite of Quantitation). 1.2 Perumusan Masalah - Apakah penetapan kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat dapat ditentukan dengan metode KCKT yang memenuhi persyaratan uji validasi metode meliputi akurasi dan presisi? - Apakah kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat yang beredar di pasaran yang ditetapkan secara KCKT memenuhi persyaratan yang ditetapkan Farmakope Indonesia edisi IV (1995)? 1.3 Hipotesis - Penetapan kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat dapat ditentukan dengan metode KCKT yang memenuhi persyaratan uji validasi metode meliputi akurasi dan presisi. - Kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat yang beredar di pasaran yang ditetapkan secara KCKT memenuhi persyaratan yang ditetapkan Farmakope Indonesia edisi IV (1995).

18 1.4 Tujuan Penelitian - Menerapkan metode KCKT pada penetapan kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat yang memenuhi persyaratan uji validasi metode meliputi akurasi dan presisi. - Untuk mengetahui kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat yang beredar di pasaran yang ditetapkan secara KCKT sesuai atau tidak dengan persyaratan yang ditetapkan Farmakope Indonesia edisi IV (1995).

19 BAB II TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Deksametason Sifat Fisikokimia Rumus struktur : Nama Kimia : 9-Fluoro-11B,17,21-trihidroksi-16α-metilpregna-1,4- diena-3,20-dion Rumus Molekul : C 22 H 29 FO 5 Berat Molekul : 392,47 Pemerian : Serbuk hablur, putih sampai praktis putih; tidak berbau; stabil di udara. Melebur pada suhu lebih kurang 250 o disertai peruraian. Kelarutan : Praktis tidak larut dalam air, agak sukar larut dalam aseton, dalam etanol, dalam dioksan dan dalam methanol; sukar larut dalam kloroform; sangat sukar larut dalam eter (Ditjen POM, 1995) Mekanisme Kerja Golongan glukokortikoid bekerja dengan mempengaruhi kecepatan sintesis protein. Molekul hormon memasuki sel jaringan melalui membran plasma secara difusi pasif di jaringan target, kemudian bereaksi dengan reseptor protein yang

20 spesifik dalam sitoplasma sel jaringan dan membentuk kompleks reseptor-steroid. Kompleks ini mengalami perubahan konformasi, lalu bergerak menuju nucleus dan berikatan dengan kromatin. Ikatan ini menstimulasi transkripsi RNA dan sintesis protein spesifik. Induksi sintesis protein ini merupakan perantara efek fisiologik steroid (Suiherman, K.S., 2007) Farmakokinetika Pada pemberian oral diabsorpsi cukip baik, untuk mencapai kadar tinggi dengan cepat dalam cairan tubuh diberikan secara IV dan untuk mendapatkan efek yang lama diberikan secara IM. Penggunaan jangka panjang atau pada daerah kulit yang luas dapat menyebabkan efek sistemik, antara lain supresi korteks adrenal (Suherman, K.S., 2007) Efek Samping Efek samping dapat timbul karena penghentian pengobatan tiba-tiba atau pemberian terus-menerus terutama dengan dosis besar. Efek ini menyerupai gejala dari suatu gangguan yang disebabkan oleh produksi kortisol faal berlebihan, yakni sindroma Cushing. Gejala utama sindrom ini adalah retensi cairan di jaringanjaringan yang nenyebabkan naiknya berat badan dengan pesat, muka menjadi tembam dan bundar ( muka bulan ), adakalanya kaki-tangan gemuk (bagian atas). Selain itu terjadi penumpukan lemak di bahu dan tengkuk. Kulit menjadi tipis dan lebih mudah terluka (Tjay dan Rahardja, 2002).

21 2.2 Deksklorfeniramin maleat Sifa Fisikokimia Rumus Struktur : Cl H N N CH3 HO OH CH3 O O Nama Kimia : (+)-2-[p-Kloro- α-[2-(dimetilamino)etil]benzil] piridina maleat. Rumus Molekul : C 16 H 19 ClN 2.C 4 H 4 O 4 Berat Molekul : 390,87 Pemerian Kelarutan : Serbuk hablur, putih; tidak berbau. : Mudah larut dalam air; larut dalam etanol dan dalam kloroform; sukar larut dalam benzena dan dalam eter (Ditjen POM, 1995) Mekanisme Kerja Memblokir reseptor-h1 dengan menyaingi histamin pada reseptornya di otot licin dinding pembuluh dan dengan demikian menghindarkan timbulnya reaksi alergi. Khasiat lainnya menciutkan bronchi, saluran cerna, kandung kemih dan rahim (Tjay dan Rahardja, 2002) Farmakokinetik Setelah pemberian oral atau parenteral, AH1 diabsorpsi secara baik. Efeknya timbul menit setelah pemberian oral dan maksimal setelah 1-2 jam. Lama kerja AH1 setelah pemberian dosis tunggal kira-kira 4-6 jam. Kadar tertinggi

22 terdapat pada paru-paru sedangkan pada limpa, ginjal, otak, otot dan kulit kadarnya lebih rendah (Udin, S dan Hedi, R.D., 2007) Efek Samping Efek samping yang paling sering ialah sedasi, nafsu makan berkurang, mual, muntah, keluhan pada epigastrium, konstipasi atau diare. Efek samping yang berhubungan dengan efek sentral AH1 ialah vertigo, tinitus, lelah, penat, inkoordinasi, penglihatan kabur, diplopia, euforia, gelisah, insomia dan tremor (Udin, S dan Hedi, R.D., 2007). 2.3 Teori Kromatografi Kromatografi merupakan suatu cara pemisahan berdasarkan partisi cuplikan antara fase gerak dan fase diam. Fase gerak (mobile phase) dapat berupa gas atau cairan dan fase diam (stationery phase) dapat berupa cairan atau padatan. Kromatografi dapat juga didefinisikan sebagai suatu proses migrasi diferensial dimana komponen-komponen cuplikan ditahan secara selektif oleh fase diam (Sastrohamidjojo, 1985). Kromatografi pertama kali dikembangkan oleh seorang ahli botani Rusia Michael Tswett pada tahun 1903 untuk memisahkan pigmen berwarna dalam tanaman dengan cara perkolasi ekstrak petroleum eter dalam kolom gelas yang berisi kalsium karbonat (CaCO 3 ) (Johnson dan Stevenson, 1991). 2.4 Pembagian Kromatografi Kromatografi dapat dibedakan atas berbagai macam, tergantung pada pengelompokannya. Berdasarkan pada mekanisme pemisahannya, kromatografi dibedakan menjadi : (a) kromatografi adsorbsi; (b) kromatografi partisi; (c) kromatografi pasangan ion; (d) kromatografi penukar ion (e) kromatografi

23 eksklusi ukuran dan (f) kromatografi afinitas (Johnson dan Stevenson, 1991 dan Rohman, 2007). Berdasarkan pada alat yang digunakan, kromatografi dapat dibagi atas: (a) kromatografi kertas; (b) kromatografi lapis tipis, yang kedua sering disebut kromatografi planar; (c) kromatografi cair kinerja tinggi (KCKT) dan (d) kromatografi gas (KG) (Johnson dan Stevenson, 1991 dan Rohman, 2007). 2.5 Kromatografi Cair Kinerja Tinggi Kromatogarfi cair kinerja tinggi (KCKT) merupakan sistem pemisahan dengan kecepatan dan efisiensi yang tinggi karena didukung oleh kemajuan dalam teknologi kolom, sistem pompa tekanan tinggi, dan detektor yang sangat sensitif dan beragam sehingga mampu menganalisa berbagai cuplikan secara kualitatif maupun kuantitatif, baik dalam komponen tunggal maupun campuran (Ditjen POM,1995). Kromatografi Cair Kinerja Tinggi (KCKT) atau biasa juga disebut dengan HPLC (High Performance Liquid Chromatography) merupakan teknik pemisahan yang diterima secara luas untuk analisis dan pemurnian senyawa tertentu dalam suatu sampel pada sejumlah bidang antara lain ; farmasi, lingkungan dan industriindustri makanan. Kegunaan umum KCKT adalah untuk: pemisahan sejumlah senyawa organik, anorganik, maupun senyawa biologis, analisis ketidakmurnian (impurities) dan analisis senyawa-senyawa yang tidak mudah menguap (nonvolatil). KCKT paling sering digunakan untuk: untuk menetapkan kadar senyawasenyawa tertentu seperti asam-asam amino, asam-asam nukleat dan protein-

24 protein dalam cairan fisiologis, menentukan kadar senyawa-senyawa aktif obat dan lain - lain. Keterbatasan metode KCKT adalah untuk identifikasi senyawa, kecuali jika KCKT dihubungkan dengan spektrometer massa (MS). Keterbatasan lainnya adalah jika sampelnya sangat kompleks, maka resolusi yang baik sulit diperoleh (Munson, 1991 dan Rohman, 2007) Cara Kerja KCKT Kromatografi merupakan teknik yang mana solut atau zat-zat terlarut terpisah oleh perbedaan kecepatan elusi, dikarenakan solut-solut ini melewati suatu kolom kromatografi. Pemisahan solut-solut ini diatur oleh distribusi dalam fase gerak dan fase diam. Penggunaan kromatografi cair membutuhkan penggabungan secara tepat dari berbagai macam kondisi operasional seperti jenis kolom, fase gerak, panjang dan diameter kolom, kecepatan alir fase gerak, suhu kolom, dan ukuran sampel (Rohman, 2007) Jenis-jenis Kromatografi Menurut Johnson dan Stevenson (1991) dan Rohman (2007) jenis-jenis kromatografi yaitu: 1. Kromatografi Cair-Padat (LSC) Tehnik ini biasanya menggunakan fase diam silika gel atau alumina, meskipun demikian sekitar 90% kromatografi ini memakai silika gel sebagai fase diamnya. Fase geraknya berupa pelarut non polar yang ditambah dengan pelarut polar seperti air atau alkohol rantai pendek untuk meningkatkan kemampuan elusinya sehingga tidak timbul pengekoran puncak, seperti n-heksana ditambah

25 metanol. Jenis KCKT ini sesuai untuk pemisahan-pemisahan campuran isomer struktur dan untuk pemisahan solut dengan gugus fungsional yang berbeda. 2. Kromatografi Partisi (LLC) Kromatografi jenis ini disebut juga dengan kromatografi fase terikat. Kebanyakan fase diamnya adalah silika yang dimodifikasi secara kimiawi atau fase terikat. Sejauh ini yang digunakan untuk memodifikasi silika adalah hidrokarbon-hidrokarbon non polar seperti oktadesilsilana, oktilsilana, atau dengan fenil. Fase diam yang paling populer digunakan adalah oktadesilsilana (ODS atau C 18 ) dan kebanyakan pemisahannya adalah dengan fase terbalik. Sedangkan fase geraknya adalah campuran asetonitril atau metanol dengan air atau dengan larutan buffer. Kromatografi partisi (LLC), disebut fase normal bila fase diam lebih polar dari fase gerak dan fase terbalik bila fase gerak lebih polar dari fase diam. a. Kromatografi fase normal Kromatografi fase normal (fase diam lebih polar daripada fase gerak), kemampuan elusi meningkat dengan meningkatnya polaritas pelarut. Fase gerak ini biasanya tidak polar. Dietil eter, benzen, hidrokarbon lurus seperti pentana, heksana, heptana maupun iso-oktana sering digunakan. Halida alifatis seperti diklorometana, dikloroetana, butilklorida dan kloroform juga digunakan. Umumnya gas terlarut tidak menimbulkan masalah pada fase normal. (Munson, 1991 dan Rohman, 2007)

26 Fase diam yang digunakan dapat dilihat pada gambar dibawah ini: Gambar 1. Jenis-jenis fase diam untuk tipe kromatografi fase normal b. Kromatografi fase terbalik Kromatografi fase terbalik (fase diam kurang polar daripada fase gerak), kemampuan elusi menurun dengan meningkatnya polaritas pelarut. Kandungan utama fase gerak fase terbalik adalah air. Pelarut yang dapat campur dengan air seperti metanol, etanol, asetonitril, dioksan, tetrahidrofuran dan dimetilformamida ditambahkan untuk mengatur kepolaran fase gerak. Dapat ditambahkan pula asam, basa, dapar dan/atau surfaktan. Mutu air harus tinggi baik air destilasi maupun awamineral. Fase diam yang digunakan dapat dilihat pada gambar dibawah ini : Gambar 2. Jenis-jenis fase diam untuk tipe kromatografi fase terbalik 3. Kromatografi penukar ion Tehnik ini tergantung pada penukaran (adsorpsi) ion-ion diantara fase gerak dan tempat-tempat berion dari kemasan. Kebanyakan resin-resin berasal dari

27 polimer stiren divinilbenzen dimana gugus-gugus fungsinya telah ditambah. Resin-resin tipe asam sulfonat dan amin kuarterner merupakan jenis resin pilihan paling baik dan banyak digunakan. Keduanya, fase terikat dan resin telah digunakan. Tehnik ini dipakai secara luas dalam life sciences dan dikenal secara khas untuk pemisahan asam-asam amino. Tehnik ini dapat dipakai untuk keduanya, kation-kation dan anion-anion. 4. Kromatografi eksklusi (EC) Tehnik ini unik karena dalam pemisahan didasarkan pada ukuran molekul dari solut. Kemasan adalah suatu gel dengan suatu permukaan berlubang-lubang sangat kecil yang inert. Molekul-molekul kecil dapat masuk ke dalam jaringan dan ditahan dalam fase gerak yang menggenang. Molekul-molekul yang lebih besar tidak dapat masuk ke dalam jaringan dan lewat melalui kolom tanpa ditahan. 5. Kromatografi Pasangan Ion (IPC) Kromatografi ini merupakan bentuk khusus dari kromatografi cair-cair yang digunakan untuk pemisahan senyawa atau cuplikan yang mengandung komponen ion dan non ion, seperti garam ammonium kuarterner, sulfonat, asam amino dan aminofenol. Kromatografi pasangan ion dilakukan dengan sistem pelarut campuran air dengan metanol atau asetonitril dan kolom seperti oktadesilsilana yang terikat pada silika.

28 2.5.3 Komponen Kromatografi cair kinerja tinggi detektor Wadah solven pompa kolom injektor oven Gambar 3. Bagan alat KCKT data processor Wadah Fase gerak Wadah fase gerak terbuat dari bahan yang inert terhadap fase gerak. Bahan yang umum digunakan adalah gelas dan baja anti karat. Daya tampung tandon harus lebih besar dari 500 ml, yang dapat digunakan selama 4 jam untuk kecepatan alir yang umumnya 1-2 ml/menit Pompa Untuk menggerakkan fase gerak melalui kolom diperlukan pompa. Pompa harus mampu menghasilkan tekanan 6000 Psi pada kecepatan alir 0,1 10 ml/menit. Pompa ada 2 jenis yaitu pompa volume konstan dan pompa tekanan konstan. Pompa terbuat dari bahan yang inert terhadap semua pelarut. Bahan yang umum digunakan adalah gelas baja antikarat dan teflon. Aliran pelarut dari pompa harus tanpa denyut untuk menghindari hasil yang menyimpang pada detektor Injektor Cuplikan harus dimasukkan ke dalam pangkal kolom (kepala kolom), diusahakan agar sesedikit mungkin terjadi gangguan pada kemasan kolom. Ada tiga jenis dasar injektor, yaitu: a. Hentikan aliran/stop flow: Aliran dihentikan, injeksi dilakukan pada kinerja atmosfir, sistem tertutup, dan aliran dilanjutkan lagi. Tehnik ini

29 bisa digunakan karena difusi di dalam aliran kecil dan resolusi tidak dipengaruhi. b. Septum: Injektor-injektor langsung ke aliran fase gerak umumnya sama dengan yang digunakan pada kromatografi gas. Injektor ini dapat digunakan pada kinerja sampai atmosfir. Tetapi septum ini tidak tahan dengan semua pelarut-pelarut kromatografi cair. Disamping itu, partikel kecil dari septum yang terkoyak (akibat jarum injektor) dapat menyebabkan penyumbatan. c. Katup putaran (loop valve): ditunjukkan secara skematik dalam Gambar 6, tipe injektor ini umumnya digunakan untuk menginjeksi volume lebih besar dari pada 10 µl dan sekarang digunakan dengan cara automatis (dengan adaptor khusus, volume-volume lebih kecil dapat diinjeksikan secara manual). Pada posisi LOAD, sampel loop (cuplikan dalam putaran) diisi pada tekanan atmosfir. Bila katup difungsikan, maka cuplikan di dalam putaran akan bergerak ke dalam kolom. Gambar 4. Tipe injektor katup putaran Kolom Kolom adalah jantung kromatografi. Berhasil atau gagalnya suatu analisis tergantung pada pemilihan kolom dan kondisi percobaan yang sesuai. Kolom dapat dibagi menjadi dua kelompok:

30 Kolom analitik: diameter khas adalah 2-6 mm. Panjang kolom tergantung pada jenis kemasan. Untuk kemasan pelikular, panjang yang lumrah adalah cm. Untuk kemasan poros mikropartikilat, umumnya cm. Dewasa ini ada yang 5 cm Kolom preparatif: umumnya memiliki diameter 6 mm atau lebih besar dan panjang kolom cm. Kolom umumnya dibuat dari stainless steel dan biasanya dioperasikan pada temperatur kamar, tetapi bisa juga digunakan temperatur lebih tinggi, terutama untuk kromatografi penukar ion dan kromatografi eksklusi. Kemasan kolom tergantung pada mode kromatografi cair kinerja tinggi yang digunakan Detektor Suatu detektor dibutuhkan untuk mendeteksi adanya komponen cuplikan dalam aliran yang keluar dari kolom. Detektor-detektor yang baik memiliki sensitifitas yang tinggi, gangguan (noise) yang rendah, kisar respons linier yang luas, dan memberi tanggapan/respon untuk semua tipe senyawa. Detektor yang paling banyak digunakan dalam kromatografi cair modern kecepatan tinggi adalah detektor spektrofotometer uv 254 nm. Bermacam-macam detektor dengan variasi panjang gelombang uv-vis sekarang menjadi populer karena mereka dapat digunakan untuk mendeteksi senyawa-senyawa dalam rentang yang luas. Detektor indeks refraksi juga secara luas digunakan, terutama dalam kromatografi eksklusi, tetapi umumnya kurang sensitif dari pada detektor spektrofotometer uv.

31 Pengolahan Data Komponen yang terelusi mengalir ke detektor dan dicatat sebagai puncakpuncak yang secara keseluruhan disebut sebagai kromatogram. Rt Area W 1/2 H 1/2 H W Gambar 5. Kromatogram Guna kromatogram: 1. Kualitatif waktu retensi selalu konstan dalam setiap kondisi kromatografi yang sama. dapat digunakan untuk identifikasi. 2. Kuantitatif luas puncak proporsional dengan jumlah sampel yang diinjesikan dan dapat digunakan untuk menghitung konsentrasi. 3. Kromatogram dapat digunakan untuk mengevaluasi efisiensi pemisahan dan kinerja kolom Fase Gerak Fase gerak atau eluen biasanya terdiri atas campuran pelarut yang dapat bercampur yang secara keseluruhan berperan dalam daya elusi dan resolusi. Daya elusi dan resolusi ini ditentukan oleh polaritas keseluruhan pelarut, polaritas fase

32 diam, dan sifat komponen-komponen sampel (Johnson dan Stevenson, 1991; Munson, 1991 dan Rohman, 2007) Dalam kromatografi cair komposisi pelarut atau fase gerak adalah satu variabel yang mempengaruhi pemisahan. Terdapat keragaman yang luas dari solven yang digunakan dalam semua mode kromatografi cair kinerja tinggi, tetapi ada beberapa sifat-sifat yang diinginkan yang mana umumnya harus dipenuhi oleh semua solven. Fase gerak harus: 1. Murni; tidak ada pencemar/kontaminan 2. Tidak bereaksi dengan pengemas 3. Sesuai dengan detektor 4. Melarutkan cuplikan 5. Mempunyai viskositas rendah 6. Mudah rekoveri cuplikan, bila diinginkan 7. Tersedia diperdagangan dengan harga yang pantas Umumnya, pelarut-pelarut dibuang setelah digunakan karena prosedur pemurnian kembali membosankan dan mahal. Dari semua persyaratan di atas, 4 persyaratan pertama adalah yang paling penting. Gelembung udara (degassing) yang ada harus dihilangkan dari pelarut, karena udara yang terlarut keluar melewati detektor dapat menghasilkan banyak noise sehingga data tidak dapat digunakan (Putra, 2007) Analisa Kualitatif dan Kuantitatif Analisis Kualitatif Ada 3 pendekatan untuk analisa kualitatif yakni:

33 1. Perbandingan antara retensi solut yang tidak diketahui dengan data retensi baku yang sesuai (senyawa yang diketahui) pada kondisi yang sama. Untuk kromatografi yang menggunakan kolom (seperti KCKT dan KG), waktu retensi (t R ) atau volume retensi (V R ) senyawa baku dan senyawa yang tidak diketahui dibandingkan dengan cara kromatografi secara berurutan dalam kondisi alat yang stabil dengan perbedaan waktu pengoperasian antar keduanya sekecil mungkin. 2. Dengan cara spiking. Untuk kromatografi yang melibatkan kolom, spiking dilakukan dengan menambah sampel yang mengandung senyawa tertentu yang akan diselidiki dengan senyawa baku pada kondisi kromatografi yang sama. Hal ini dilakukan dengan cara: pertama, dilakukan proses kromatografi sampel yang tidak di spiking. Kedua, sampel yang telah di-spiking dengan senyawa baku dilakukan proses kromatografi. Jika pada puncak tertentu yang diduga mengandung senyawa yang diselidiki terjadi peningkatan tinggi puncak/luas puncak setelah di-spiking dibandingkan dengan tinggi puncak/luas puncak yang tidak dilakukan spiking maka dapat diidentifikasi bahwa sampel mengandung senyawa yang kita selidiki. 3. Menggabungkan alat kromatografi dengan spektrometer massa. Pada pemisahan dengan menggunakan kolom kromatografi, cara ini akan memberikan informasi data spektra massa solut dengan waktu retensi tertentu. Spektra solut yang tidak diketahui dapat dibandingkan dengan spektra yang ada di data base komputer yang diinterpretasi sendiri. Cara ini dapat dilakukan untuk solut yang belum ada baku murninya.

34 Analisis Kuantitatif Untuk menjamin kondisi yang digunakan dalam analisis kuantitatif stabil dan reprodusibel, baik pada penyiapan sampel atau proses kromatografi dapat digunakan metode baku eksternal dan metode baku internal, berikut beberapa syarat yang harus dipenuhi dalam analisis kuantitatif: Analit (solut) harus telah diketahui dan terpisah sempurna dari kompomenkomponen lain dalam kromatogram Baku dengan kemurnian yang tinggi dan telah diketahui harus tersedia Prosedur kalibrasi yang sudah diketahui harus digunakan. Untuk kromatografi yang melibatkan kolom, kuantifikasi dapat dilakukan dengan: luas puncak atau tinggi puncak. Tinggi puncak atau luas puncak berbanding langsung dengan banyaknya solut yang dikromatografi, jika dilakukan pada kisaran detektor yang linier. 1. Metode tinggi puncak Metode yang paling sederhana untuk pengukuran kuantitatif adalah dengan tinggi puncak. Tinggi puncak diukur sebagai jarak dari garis dasar ke puncak maksimum seperti puncak 1, 2, dan 3 pada gambar 6. Penyimpangan garis dasar diimbangi dengan interpolasi garis dasar antara awal dan akhir puncak. Gambar 6. Pengukuran tinggi puncak Metode tinggi puncak hanya digunakan jika perubahan tinggi puncak linier dengan konsentrasi analit. Kesalahan akan terjadi jika metode ini digunakan pada

35 puncak yang mengalami penyimpangan (asimetris) atau jika kolom mengalami kelebihan muatan. 2. Metode luas puncak Prosedur penentuan luas puncak serupa dengan tinggi puncak. Suatu teknik untuk mengukur luas puncak adalah dengan mengukur luas puncak sebagai hasil kali tinggi puncak dan lebar pada setengah tinggi (W 1/2 ). Tehnik ini hanya dapat digunakan untuk kromatografi yang simetris atau yang mempunyai bentuk serupa. Saat ini integrator elektronik telah banyak digunakan untuk mengukur luas puncak pada kromatografi cair kinerja tinggi dan pada kromatografi gas. Integrator digital mengukur luas puncak dan mengubahnya dalam bentuk angka (Johnson Stevenson, 1991 dan Rohman, 2007). Baik tinggi puncak maupun luasnya dapat dihubungkan dengan konsentrasi. Tinggi puncak mudah diukur, akan tetapi sangat dipengaruhi perubahan waktu retensi yang disebabkan oleh variasi suhu dan komposisi pelarut. Oleh karena itu, luas puncak dianggap merupakan parameter yang lebih akurat untuk pengukuran kuantitatif (Ditjen POM, 1995). 2.6 Validasi Metode Analisis Validasi adalah suatu tindakan penilaian terhadap parameter tertentu pada prosedur penetapan yang dipakai untuk membuktikan bahwa parameter tersebut memenuhi persyaratan untuk penggunaannya (WHO, 1992). Validasi dilakukan untuk menjamin bahwa metode analisis yang dilakukan akurat, spesifik, reprodusibel dan tahan pada kisaran analit yang akan dianalisis (Rohman, 2007).

36 2.6.1 Kecermatan/Ketepatan (accuracy) Kecermatan merupakan ukuran yang menunjukkan derajat kedekatan hasil analisis dengan kadar analit sebenarnya. Kecermatan dapat ditentukan dengan dua cara yaitu metode simulasi (spiked-placebo recovery) dan metode penambahan baku (standard addition method). Dalam metode simulasi, sejumlah analit bahan murni pembanding kimia ditambahkan ke dalam campuran bahan pembawa sediaan farmasi (plasebo) lalu campuran tersebut dianalisis dan hasilnya dibandingkan dengan kadar analit yang ditambahkan. Metode adisi dapat dilakukan dengan menambahkan sejumlah analit dengan konsentrasi tertentu pada sampel yang diperiksa lalu dianalisis lagi dengan metode tersebut. Kecermatan dinyatakan sebagai persen perolehan kembali (recovery) analit yang ditambahkan (WHO, 1992). % Perolehan kembali = A - B konsentrasi analit yang ditambahkan x 100% Keterangan : A = konsentrasi sampel yang diperoleh setelah penambahan analit ` B = konsentrasi sampel sebelum penambahan analit Keseksamaan/Ketelitian (precision) Ketelitian diukur sebagai simpangan baku atau simpangan baku relatif (koefisien variasi). Ketelitian dapat dinyatakan sebagai keterulangan (repeatability) atau ketertiruan (reproducibility). Keterulangan adalah ketelitian metode jika dilakukan berulang kali oleh analis yang sama pada kondisi sama dan dalam interval yang pendek. Ketertiruan adalah ketelitian metode jika dikerjakan pada kondisi yang berbeda (WHO, 1992).

37 2.6.3 Batas Deteksi Batas deteksi adalah jumlah terkecil analit dalam sampel yang dapat dideteksi yang masih memberikan respon signifikan dibandingkan dengan blangko (WHO, 1992). Batas deteksi dapat dihitung dengan rumus sebagai berikut: 3SB Batas Deteksi = Slope Batas Kuantitasi Batas kuantitasi adalah jumlah terkecil analit dalam sampel yang masih dapat diukur dalam kondisi percobaan yang sama dan masih memenuhi kriteria cermat dan seksama (WHO, 1992). 10SB Batas Kuantitasi = Slope

38 BAB III METODOLOGI PENELITIAN 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian dilakukan di laboratorium Analisa Fisikokimia Fakultas Farmasi Universitas Sumatera Utara pada bulan Februari 2009 sampai Mei Alat-alat Alat-alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah satu unit alat KCKT (Shimadzu) yang terdiri dari vacuum degasser (DGU-20As), pompa (LC-20AD), UV/Vis detektor (SPD-20A), kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), penyuntik mikroliter (100 μl), dan wadah fase gerak. Membrane filters PTFE 0,5 μm dan 0,2 μm, Cellulose nitrat membrane filters 0,45μm dan 0,2 μm, spektrofotometer ultraviolet (Shimadzu mini 1240), ultrasonic cleaner (Branson 1510), neraca analitis (Ohaus) dan alat-alat gelas lainnya. 3.3 Bahan-bahan Bahan-bahan yang digunakan jika tidak dinyatakan lain adalah kualitas p.a produksi E.Merck yaitu asetonitril, metanol, aquabidestilata (PT. Ikapharmindo Putramas), Deksametason BPFI (PPOM Medan), Deksklorfeniramin maleat BPFI (PPOM Jakarta), tablet Bufacaryl (PT.Bufa Aneka), tablet Pritacort (PT.Molex Ayus), tablet Proxona (PT.Harsen), tablet Mexon (PT.Sampharindo). 3.4 Pengambilan Sampel Pengambilan sampel dilakukan secara purposif yaitu tanpa membandingkan satu tempat dengan tempat yang lain karena tempat pengambilan sampel dianggap homogen. Dari hasil sampling tersebut maka diperoleh tablet Bufacaryl (PT.Bufa Aneka), tablet Pritacort (PT.Molex Ayus), tablet Proxona

39 (PT.Harsen), tablet Mexon (PT.Sampharindo) yang merupakan sampel yang digunakan dalam penelitian ini, yang mengandung masing-masing deksametason 0,5 mg dan deksklorfeniramin maleat 2 mg. 3.5 Prosedur Penelitian Pembuatan Fase Gerak Fase gerak terdiri dari asetonitril dan air (1:2) dibuat dengan sistem elusi gradien. Sebelum digunakan asetonitril dan air disaring masing-masing melalui membrane filters PTFE 0,45 μm dan cellulose nitrate membrane filters 0,45 μm, lalu diawaudarakan selama lebih kurang 15 menit Pembuatan Larutan Induk Baku BPFI Ditimbang seksama sejumlah 10,0 mg deksametason BPFI dan deksklorfeniramin maleat BPFI, masing-masing dimasukkan ke dalam labu tentukur 50 ml, dilarutkan dan diencerkan dengan campuran metanol-air (1:1) hingga garis tanda sehingga diperoleh larutan dengan konsentrasi 200 mcg/ml, disaring, filtratnya digunakan sebagai larutan induk Penentuan Panjang Gelombang Absorpsi Maksimum Secara Spektrofotometri UV Penentuan Panjang Gelombang Absorpsi Maksimum Deksametason BPFI Dari larutan induk baku deksametason BPFI dipipet sebanyak 1,5 ml, dimasukkan ke dalam labu tentukur 25 ml, dicukupkan dengan campuran metanol-air (1:1) sampai garis tanda. Dikocok sampai homogen sehingga diperoleh larutan dengan konsentrasi 12 mcg/ml. Diukur dengan spektrofotometer

40 UV-Vis, kemudian dibuat kurva serapannya pada panjang gelombang nm. (Gambar 1 pada halaman 11) Penentuan Panjang Gelombang Absorpsi Maksimum Deksklorfeniramin maleat BPFI Dari larutan induk baku deksklorfeniramin maleat BPFI dipipet sebanyak 2 ml, dimasukkan ke dalam labu tentukur 25 ml, dicukupkan dengan campuran metanol-air (1:1) sampai garis tanda. Dikocok sampai homogen sehingga diperoleh larutan dengan konsentrasi 16 mcg/ml. Diukur dengan spektrofotometer UV-Vis, kemudian dibuat kurva serapannya pada panjang gelombang nm. (Gambar 2 pada halaman 12) Penentuan Panjang Gelombang Analisis Secara Spektrofotometri UV Panjang gelombang analisis ditentukan dengan cara membuat spektrum serapan masing-masing dari deksametason dan deksklorfeniramin maleat dalam pelarut campuran metanol-air (1:1) pada kerangka yang sama dan dipilih panjang gelombang yang sesuai, yaitu yang memberikan serapan yang optimum untuk deksametason dan deksklorfeniramin maleat. (Gambar 3 pada halaman 12) Penyiapan Alat KCKT Kolom yang digunakan Shimpack VP-ODS (4.6 mm x 25 cm), detektor UV-Vis pada panjang gelombang analisis yang diperoleh. Pompa yang digunakan mode aliran tetap dengan sistem elusi gradien, sensitivitas 1,000 AUFS. Setelah alat KCKT dihidupkan, maka pompa dijalankan dan fase gerak dibiarkan mengalir selama 30 menit sampai diperoleh garis alas yang datar yang menandakan sistem tersebut telah stabil.

41 3.5.6 Identifikasi Deksametason BPFI konsentrasi 60 mcg/ml, deksklorfeniramin maleat BPFI konsentrasi 60 mcg/ml dan deksametason dalam sediaan tablet dengan nama dagang dengan konsentrasi 50 mcg/ml masing-masing disuntikkan ke sistem KCKT dengan volume penyuntikan 20 µl pada kondisi KCKT yang sama. Puncak yang ditunjukkan diperhatikan dan dicatat waktu retensinya kemudian waktu retensi masing-masing tablet dibandingkan dengan waktu retensi deksametason BPFI dan deksklorfeniramin maleat BPFI. (Gambar 4-10 pada halaman 13-19) Penentuan Kuantitatif Penentuan Linieritas Kurva Kalibrasi Deksametason BPFI Ditimbang seksama sejumlah 25,0 mg deksametason BPFI dan dimasukkan ke dalam labu tentukur 50 ml, ditambah 20 ml campuran metanol-air (1:1), dikocok sampai larut, dan diencerkan dengan campuran metanol-air (1:1) hingga garis tanda sehingga diperoleh larutan dengan konsentrasi 500 mcg/ml. Dipipet larutan tersebut sebanyak 1,5; 2,0; 2,5; 3,0; dan 3,5 ml, masing-masing dimasukkan ke dalam labu tentukur 25 ml, diencerkan dengan campuran metanolair (1:1) hingga garis tanda sehingga diperoleh konsentrasi 30, 40, 50, 60 dan 70 mcg/ml, disaring dengan membrane filters PTFE 0,2 µm, kemudian filtratnya masing-masing diinjeksikan ke sistem KCKT dengan volume penyuntikan 20 µl, deteksi dilakukan pada panjang gelombang 254 nm. Selanjutnya dari luas area kromatogram yang diperoleh dibuat kurva kalibrasi lalu hitung persamaan regresi dan koefisien korelasinya. (Data dapat dilihat pada Lampiran 3 dan 4)

42 Penetapan Kadar Sampel Timbang dan serbukkan 20 tablet, kemudian timbang seksama sejumlah serbuk setara dengan lebih kurang 1,25 mg deksametason. Dimasukkan ke dalam labu tentukur 25 ml, ditambahkan 10 ml campuran metanol-air (1:1), dikocok sampai larut, lalu ditambahkan campuran metanol-air (1:1) sampai garis tanda dan sonikasi selama 15 menit, disaring dengan membrane filters PTFE 0,2µm. Kemudian filtratnya diinjeksikan sebanyak 20 µl ke sistem KCKT dan deteksi dilakukan pada panjang gelombang 254 nm, kemudian dihitung kadarnya. (Data dapat dilihat pada Lampiran 11-18) Penentuan Uji Akurasi dengan Parameter % Recovery Menggunakan Metode Standar Adisi (Spiked Sample) Uji akurasi dengan parameter % recovery dilakukan secara spiked sample dengan membuat 3 konsentrasi analit dengan rentang spesifik 80, 100 dan 120%, masing-masing dengan 3 replikasi. Dan setiap rentang spesifik mengandung 70% analit dan 30% baku pembanding, kemudian dianalisa dengan perlakuan yang sama seperti pada penetapan kadar sampel. Persen recovery dapat dihitung dengan rumus sebagai berikut : % Recovery = A - B konsentrasi analit yang ditambahkan x 100% Keterangan : A = konsentrasi sampel yang diperoleh setelah penambahan analit ` B = konsentrasi sampel sebelum penambahan analit Data dapat dilihat pada Lampiran 5.

43 Penentuan Uji Presisi Uji presisi (keseksamaan) ditentukan dengan parameter RSD (Relatif Standar Deviasi) dengan rumus : SD RSD = x 100% X Keterangan : RSD SD X = Relatif Standar Deviasi = Standar Deviasi = kadar rata-rata deksametason dalam sampel (WHO, 1992; Indrayanto dan Yuwono, 2003) Penentuan Batas Deteksi dan Batas Kuantitasi Batas deteksi (LOD) dan batas kuantitasi (LOQ) masing-masing dapat dihitung dengan rumus sebagai berikut : 3xSB LOD = slope 10xSB LOQ = slope Keterangan : SB = Simpangan baku Analisa data secara statistik Untuk menghitung Standar Deviasi (SD) digunakan rumus : SD = n ( x x) 1 2 Keterangan : SD = Standar deviasi x = kadar sampel x = kadar rata-rata sampel n = jumlah perlakuan.

44 Kadar dapat dihitung dengan persamaan regresi dan untuk menentukan data dapat diterima atau ditolak digunakan rumus : t hitung = X X SD / n Data diterima jika t hitung < t tabel. Untuk menghitung kadar sebenarnya dengan α = 0,01; dk = n-1, digunakan rumus: μ = X ± t ( 1 1/ 2α ). dk X SD n

45 BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN Pada penelitian ini sampel yang ditentukan merupakan sediaan tablet yang mengandung campuran deksametason 0,5 mg dan deksklorfeniramin maleat 2 mg. Tetapi yang ditentukan kadarnya hanya deksametason dengan metode KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm) dengan fase gerak campuran asetonitril dan air. Untuk memperoleh pengukuran yang optimum, maka kedua komponen ini yaitu deksametason dan deksklorfeniramin maleat dideteksi pada panjang gelombang yang memberikan serapan yang optimum bagi masing-masing komponen. Untuk mendapatkan hal tersebut perlu dilakukan penentuan panjang gelombang masing-masing dari deksametason dan deksklorfeniramin maleat dalam pelarut campuran metanol air (1:1). Dari hasil pengukuran panjang gelombang maksimum deksametason BPFI dan deksklorfeniramin maleat BPFI diperoleh serapan maksimum untuk deksametason pada panjang gelombang 241 nm dan untuk deksklorfeniramin maleat pada panjang gelombang 261 nm, seperti terlihat pada gambar 1 dan 2. Gambar 1. Kurva serapan deksametason BPFI dengan konsentrasi 12 mcg/ml dalam pelarut campuran metanol air (1:1) secara spektrofotometri ultraviolet.

46 Gambar 2. Kurva serapan deksklorfeniramin maleat BPFI dengan konsentrasi 16 mcg/ml dalam pelarut campuran metanol air (1:1) secara spektrofoto metri ultraviolet. Setelah dilakukan pengukuran masing-masing komponen, kemudian larutan kedua komponen ini diukur bersamaan dengan cara overlay dan diperoleh panjang gelombang yang memberikan serapan yang optimum bagi kedua komponen tersebut yaitu pada panjang gelombang 254 nm, seperti yang ditunjukkan pada gambar 3 di bawah ini. Gambar 3. Kurva serapan deksametason BPFI (12 mcg/ml) dan deksklorfenira minamaleat BPFI (16 mcg/ml) dalam pelarut campuran metanol air (1:1) secara spektrofotometri ultraviolet. Dari hasil orientasi pada penentuan kondisi kromatografi yang terbaik untuk deksametason dan deksklorfeniramin maleat diperoleh komposisi fase gerak asetonitril air 1:2, laju alir 2,5 ml/menit dan tekanan 175 kgf/cm 2.

47 Mekanisme pemisahan deksametason dan deksklorfeniramin maleat dengan menggunakan kromatografi fase balik karena kedua komponen ini berbeda dalam sifat kepolarannya, dimana deksklorfeniramin maleat lebih polar dari pada deksametason sehingga deksklorfeniramin maleat akan terelusi lebih dahulu dibandingkan deksametason. Hasil identifikasi deksametason BPFI diperoleh kromatogram dengan waktu retensi pada menit ke-6 dan untuk deksklorfeniramin maleat BPFI diperoleh 2 kromatogram dengan waktu retensi pada menit ke-1,3 dan pada menit ke-1,7. Hasil pengujian untuk sampel diperoleh waktu retensi yang hampir sama dengan deksametason BPFI dan deksklorfeniramin maleat BPFI. Hal ini berarti bahwa sampel yang digunakan dalam penelitian ini mengandung deksametason dan deksklorfeniramin maleat. Kromatogram penentuan waktu retensi dapat dilihat pada gambar 4, 5, 6, 7, 8 dan 9. Gambar 4. Kromatogram deksametason BPFI dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mmx 25,0 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm.

48 Gambar 5. Kromatogram deksklorfeniramin maleat BPFI dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mmx 25,0 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm. Gambar 6. Kromatogram tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mmx 25,0 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm.

49 Gambar 7. Kromatogram tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25,0 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm. Gambar 8. Kromatogram tablet Proxona (PT. Harsen) dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25,0 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm.

50 Gambar 9. Kromatogram tablet Mexon (PT. Sampharindo) dengan konsentrasi 50 mcg/ml secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25,0 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm. Dari empat sampel yang diuji ditemukan adanya dua sampel yaitu sampel tablet Proxona (PT. Harsen) dan tablet Mexon (PT. Sampharindo) yang memiliki 3 kromatogram, dimana 2 kromatogram dengan waktu retensi yang sama dengan waktu retensi deksametason BPFI dan deksklorfeniramin maleat BPFI dan 1 kromatogram dengan waktu retensi yang berbeda. Ini kemungkinan sampel tablet Proxona (PT. Harsen) dan tablet Mexon (PT. Sampharindo) mengandung bahan selain deksametason dan deksklorfeniramin maleat. Penentuan linieritas kurva kalibrasi deksametason BPFI ditentukan berdasarkan luas area pada rentang konsentrasi 30 sampai 70 mcg/ml, diperoleh hubungan yang linier dengan koefisien korelasi, r = 0,9990 dan persamaan regresi Y = 19050,88X 23890,8. Nilai koefisien korelasi yang diperoleh ini dapat

51 diterima karena lebih besar dari 0,995 (BPOM, 2003). Hasil penentuan kalibrasi dapat dilihat pada gambar 10. Gambar 10. Kurva kalibrasi deksametason BPFI secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25,0 cm) dengan fase gerak asetonitril air (1:2) dan laju alir 2,5 ml/menit, volume penyuntikan 20 µl dan deteksi pada panjang gelombang 254 nm. Hasil pengolahan data dari sediaan tablet deksametason yang ada di perdagangan dapat dilihat pada tabel 1 dibawah ini.

52 Tabel 1. Hasil pengolahan data dari sediaan tablet deksametason No Sampel Perlakuan Luas Area Kadar (%) Tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) Tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) Tablet Proxona (PT. Harsen) Tablet Mexon (PT. Sampharindo) , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , , ,64 Berdasarkan data pada tabel di atas yang diolah menggunakan perhitungan statistik diperoleh kadar deksametason dalam sediaan tablet dengan nama dagang seperti pada tabel 2 di bawah ini.

53 Tabel 2. Hasil penetapan kadar deksametason dalam sediaan tablet dengan nama dagang No Nama sediaan Kadar Deksametason 1 Tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) 96,12% ± 3,44 2 Tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) 95,87% ± 2,26 3 Tablet Proxona (PT. Harsen) 104,75% ± 3,77 4 Tablet Mexon (PT. Sampharindo) 103,74% ± 2,20 Sediaan tablet deksametason dengan nama dagang yang ditentukan kadarnya berdasarkan luas area keseluruhannya memenuhi persyaratan yang ditetapkan Farmakope Indonesia edisi IV (1995) yaitu mengandung deksametason tidak kurang dari 90,0% dan tidak lebih dari 110,0% dari jumlah yang tertera pada etiket. Pada penelitian ini dilakukan uji validasi metode dengan metode standar adisi (spiked sample) terhadap sampel tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) yang meliputi uji akurasi dengan parameter % recovery dan uji presisi dengan parameter RSD (Relative Standard Deviasi), LOD (Limite of Detection) dan LOQ (Limite of Quantitation) (WHO, 1992; Indrayanto dan Yuwono, 2003). Uji akurasi dengan parameter % recovery dilakukan dengan membuat 3 konsentrasi analit dengan rentang spesifik 80, 100, 120%, masing-masing dengan 3 replikasi dan setiap rentang spesifik mengandung 70% analit dan 30% baku pembanding.

54 Data hasil pengujian % recovery deksametason dengan metode adisi (spiked sample) dapat dilihat pada tabel 3. Tabel 3. Hasil pengujian % recovery deksametason dengan metode adisi (spiked sample) Rentang Spesifik Recovery Luas Area (%) (%) , , , , , , , , ,86 Kadar rata-rata (%) = 92,96 Standard Deviasi (SD) = 2,17 Relative Standard deviasi (%) = 2,36 Dari tabel di atas diperoleh hasil pengujian akurasi dengan kadar rata-rata % recovery 92,96%. Persen recovery ini dapat diterima karena memenuhi syarat akurasi, bahwa rentang rata-rata hasil % recovery ialah %. Maka dapat disimpulkan bahwa metode ini mempunyai akurasi yang baik (Epshteiin, N.A., 2004). Hasil uji presisi dengan parameter Relative Standard Deviasi (RSD) diperoleh 2,36%, nilai RSD yang diizinkan adalah <5%, maka dapat disimpulkan bahwa metode analisis mempunyai presisi yang baik (Vanderwielen, J.A. and Edward, H.A., 1982). Batas deteksi dan batas kuantitasi yang diperoleh dari penelitian ini berturut-turut adalah 2,35 mcg/ml dan 7,85 mcg/ml.

55 Dari hasil pengujian akurasi dan presisi yang diperoleh ini dapat disimpulkan bahwa metode analisis dengan metode Kromatografi Cair Kinerja Tinggi memenuhi persyaratan validasi metode sehingga dapat digunakan untuk penetapan kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat.

56 BAB V KESIMPULAN DAN SARAN 5.1 Kesimpulan Hasil uji validasi metode KCKT pada penetapan kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat memberikan hasil akurasi dan presisi yang baik. Dengan demikian metode ini dapat digunakan untuk penetapan kadar deksametason dalam tablet campuran dengan deksklorfeniramin maleat. Semua sediaan tablet yang dianalisis memenuhi persyaratan kadar yang tercantum dalam Farmakope Indonesia edisi IV, yaitu mengandung deksametason tidak kurang dari 90% dan tidak lebih dari 110% dari jumlah yang tertera pada etiket. 5.2 Saran Disarankan agar dilakukan penelitian lebih lanjut terhadap penetapan kadar deksametason dan deksklorfeniramin maleat dalam tablet campuran deksametason dan deksklorfeniramin maleat atau dalam bentuk sediaan lain yang beredar dipasaran secara KCKT.

57 DAFTAR PUSTAKA Anonim. (2008). Dextamine-dexamethasone-dexchlorpheniramine-maleat. Tanggal akses 26 Desember Badan Pengawas Obat dan Makanan. (2003). Cara Pembuatan Obat yang Baik. Badan Pengawas Obat dan Makanan. Bandung. Hal De Lux Putra, E. (2007). Dasar-dasar Kromatografi Cair Kinerja Tinggi. Fakultas Farmasi USU-Medan. Hal Ditjen POM. (1998). Laporan Penelitian dan Pengambangan Metode Analisis. Jakarta. Departemen Kesehatan RI. Hal. 28. Ditjen POM. (1995). Farmakope Indonesia. Edisi Keempat. Jakarta. Departemen Kesehatan RI. Hal , 293. Epshteiin, N.A. (2004). Validation of HPLC Thchniques for Pharmaceutical Analysis. Pharmaceutical chemistry Journal. Vol. 38 (4). Gritter, R.J, Bobbit, J.M, dan Schwarting, A.E. (1985). Introduction of Chromatography. Penerjemah: K. Padmawinata. Pengantar Kromatografi. Edisi III. Bandung: Penerbit ITB. Hal Indrayanto, G., dan Yuwono, M. (2003). In: Cazes, J. Ed. Encyclopedia of Chromatograpy (Marcel Dekker). Supplement. Johnson, E.L., and Stevenson, R. (1991). Basic Liquid Chromatography. Penerjemah Kosasih Padmawinata. Dasar Kromatografi Cair. Penerbit ITB Bandung. Hal Moffat, A.C., dkk. (2004). Clarke s Analysis of Drugs and Poisons. Third Edition. Volume 1. London: The Pharmaceutical Press. Hal Munson, J. W. (1991). Pharmaceutical Analysis Modern Methods. Part B. Penterjemah Harjana. Analisis Farmasi Metode Modern. Parwa B., Airlangga University Press Surabaya. Hal Rohman, A. (2007). Kimia Farmasi Analisis. Penerbit Pustaka Pelajar. Hal , Sastrohamidjojo, H. (1985). Kromatografi. Edisi pertama. Cetakan pertama. Yogyakarta. Penerbit Liberty. Hal. 46. Snyder, L. R., and Kirkland, J.J. (1979). Introduction to Modern Liquid Chromatography. 2 nd edition, By Jhon Wiley and Son. London. Page. 554

58 Sudjana, (1992). Metoda Statistika. Edisi kelima. Penerbit Tarsito Bandung. Hal Suherman, K.S. (2007). Adrenokortikotropin, Adrenokortikosteroid, Analog- Sintetik dan antagonisnya. Dalam Farmakologi dan Terapi. Edisi kelima. Bagian Farmakologi FKUI. Jakarta. Penerbit Universitas Indonesia Press. Hal Tjay, T.H., dan Rahardja, K. (2002). Obat-Obat Penting. Edisi V. Cetakan ke-2. PT. Gramedia. Jakarta. Hal : 685,770. Udin, S dan Hedi, R.D. (2007). histamine dan Antialergi. Dalam Farmakologi dan Terapi. Edisi kelima. Bagian Farmakologi FKUI. Jakarta. Penerbit Universitas Indonesia Press. Hal USP Pharmacopeia, (2007). The National Formulary. 30 th Edition. The United States Pharmacopeial Convention. Hal , Vanderwielen, A.J., dan Edward, A.H. (1982). Guidelines for Assay Validation. Pharmaceutical Technology. Hal WHO. (1992). Validation of Analytical Procedures Used in the Examination of Pharmaceutical Materials. WHO Technical Report Series. No Hal. 117.

59 Lampiran 1. Gambar alat KCKT dan syringe 100 µl Alat KCKT syringe 100 µl

60 Lampiran 2. Gambar alat ultrasonic cleaner dan penyaring Alat Ultrasonic Cleaner Penyaring

61 Lampiran 3. Kromatogram larutan Deksametason BPFI pada pembuatan kurva kalibrasi a = konsentrasi 30 mcg/ml b = konsentrasi 40 mcg/ml

62 Lampiran 3. (lanjutan) c = konsentrasi 50 mcg/ml d = konsentrasi 60 mcg/ml

63 Lampiran 3. (lanjutan) e = konsentrasi 70 mcg/ml a, b, c, d dan e merupakan kromatogram larutan baku pembanding Deksametason pada pembuatan kurva kalibrasi secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (25,0 cm x 4.6 mm), fase gerak campuran asetonitril dan air (1:2), volume penyuntikan 20 µl, laju aliran 2,5 ml/menit pada panjang gelombang 254 nm.

64 Lampiran 4. Perhitungan persamaan regresi dari kurva kalibrasi Deksametason BPFIyang diperoleh secara KCKT pada panjang gelombang 254 nm. Tabel 4. Data hasil penyuntikan larutan Deksametason BPFI berdasarkan luas area No. Konsentrasi (mcg/ml) Luas Area Konsentrasi (X) Vs Luas Area (Y) untuk Deksametason Konsentrasi Luas Area No. (mcg/ml) XY X 2 Y 2 X Y E E E E E E+11 Rata E+11 Y = ax + b ( XY ) ( X )( Y ) a = 2 2 ( X ) ( X ) / n = / n ( ) - (250) ( )/5 (13500) - (250)2/5 = = 1000 =19050,88

65 b = Y a X = (928653,2) (19050,88) (50) = , = ,8 Sehingga diperoleh persamaan regresi Y = 19050,88 X 23890,8 Untuk mencari hubungan kadar (X) dengan luas area (Y) digunakan pengujian koefesien korelasi (r). r = n( XY ) ( X )( Y ) [ n( X ) ( X ) ][ n( Y ) ( Y ) ] = 5( ) ( 250)( ) 2 2 [ 5( 13500) ( 250) ][ 5( 46,756E + 11) ( ) ] = [ ( ) ( 62500) ][ ( 2,3378 E + 13) ( 2,1559 E + 13) ] = = = ( 5000)( 1,819E + 12) ,095E ,42 = 0,9990

66 Lampiran 5. Perhitungan Metode Standar Adisi Berat rata-rata 1 tablet Bufacaryl yang mengandung 0,5 mg deksametason dan 2 mg deksklorfeniraminmaleat = 102,525 mg. Rentang spesifik : 80 %, 100 %, 120 % dan setiap rentang mengandung 70 % analit dan 30 % baku pembanding. Rentang 80% : 80 Deksametason = x 0,5 mg = 0,4 mg 100 Analit 70% : 70 = x 0,4 mg = 0,28 mg 100 Serbuk sampel yang ditimbang : = 0,28 x 102,525 mg = 57,4140 mg 0,5 Dari serbuk di atas ditimbang setara 1,25 mg = 1,25 x 57,4140 mg = 256,3125 mg 0,28 Baku Pembanding 30 % : 30 = x 0,4 mg = 0,12 mg 100 Rentang 100% : 100 Deksametason = x 0,5 mg = 0,5 mg 100 Analit 70% : 70 = x 0,5 mg = 0,35 mg 100

67 Lampiran 5. (lanjutan) Serbuk sampel yang ditimbang : = 0,35 x 102,525 mg = 71,7675 mg 0,5 Dari serbuk di atas ditimbang setara 1,25 mg = 1,25 x 71,7675 mg = 256,3125 mg 0,35 Baku Pembanding 30 % : 30 = x 0,5 mg = 0,15 mg 100 Rentang 120% : 120 Deksametason = x 0,5 mg = 0,6 mg 100 Analit 70% : 70 = x 0,6 mg = 0,42 mg 100 Serbuk sampel yang ditimbang : = 0,42 x 102,525 mg = 86,1210 mg 0,5 Dari serbuk di atas ditimbang setara 1,25 mg = 1,25 x 86,1210 mg = 256,3125 mg 0,42 Baku Pembanding 30 % : 30 = x 0,6 mg = 0,18 mg 100

68 Lampiran 6. Kromatogram Hasil Recovery dari sampel tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) a b

69 Lampiran 6. (lanjutan) c a, b, dan c merupakan kromatogram hasil recovery pada rentang spesifik 80% dari larutan sampel tablet Pritacort (PT. Molex Ayus), yang dianalisa secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), fase gerak campuran asetonitril dan air (1:2), volume penyuntikan 20 μl, laju aliran (flow rate) 2,5 ml/menit pada λ 254 nm.

70 Lampiran 6. (lanjutan) d e

71 Lampiran 6. (lanjutan) f d, e, dan f merupakan kromatogram hasil recovery pada rentang spesifik 100% dari larutan sampel tablet Pritacort (PT. Molex Ayus), yang dianalisa secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), fase gerak campuran asetonitril dan air (1:2), volume penyuntikan 20 μl, laju aliran (flow rate) 2,5 ml/menit pada λ 254 nm.

72 Lampiran 6. (lanjutan) g h

73 Lampiran 6. (lanjutan) i g, h, dan i merupakan kromatogram hasil recovery pada rentang spesifik 120% dari larutan sampel tablet Pritacort (PT. Molex Ayus), yang dianalisa secara KCKT menggunakan kolom Shimpack VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), fase gerak campuran asetonitril dan air (1:2), volume penyuntikan 20 μl, laju aliran (flow rate) 2,5 ml/menit pada λ 254 nm.

74 Lampiran 7. Data Hasil % Recovery Deksametason pada tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) dengan Metode Standar Adisi No Rentang Spesifik (%) Luas Area Konsentrasi (mcg/ml) Analit yang ditambahkan (mcg/ml) Recovery (%) ,48 4,8 82, ,94 4,8 92, ,07 4,8 95, , , , , , , ,19 7,2 92, ,35 7,2 108, ,98 7,2 89,86 Kadar Rata Rata = 92,96 Standar Deviasi = 2,17 Relative Standard Deviasi = 2,36

75 Lampiran 8. Contoh Perhitungan % Recovery dengan Metode Penambahan Baku (Standard Addition Method) % Recovery = A - B Analit yang ditambahkan x 100% Keterangan : A = konsentrasi sampel setelah penambahan analit B = konsentrasi sampel sebelum penambahan analit % Recovery = 53,07 48,51 x 100% 4,8 = 95%

76 Lampiran 9. Analisa data statistik % Recovery pada tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) dengan Metode Standar Adisi No % Recovery (X) (X- X ) (X- X ) ,71-10,25 105, ,29-0,67 0, ,00 2,04 4, ,33-8,63 74, ,83-3,13 9, ,00 8,04 64, ,78-0,18 0, ,89 15,93 253, ,86-3,10 9,6100 X= 836,69 X X = 521,9957 X = 92,96 ( ) 2 SD = ( X X ) n 1 2 = 521, = 8,0777 Pada interval kepercayaan 99% dengan nilai α = 0,01, dk = 5 diperoleh nilai t tabel = 3,355. Data diterima jika t hitung t tabel. t hitung = X X SD / n t hitung data 1 = -3,8067 t hitung data 2 = -0,2488 t hitung data 3 = 0,7576 t hitung data 4 = -3,2050 t hitung data 5 = -1,1624 t hitung data 6 = 2,9859 t hitung data 7 = t hitung data 8 = 5,9162 t hitung data 9 = -1,1513 t hitung data ke-1 dan ke-8 > t tabel, maka data ditolak.

77 Lampiran 9. (lanjutan) Untuk itu dihitung kembali dengan cara yang sama tanpa mengikutsertakan data ke-1dan ke-8 No % Recovery (X) (X- X ) (X- X ) ,29 0,13 0, ,00 2,84 8, ,33-7,83 61, ,83-2,33 5, ,00 8,84 78, ,78 0,62 0, ,86-2,30 5,2900 X= 645,09 X X = 158,6403 X =92,16 ( ) 2 SD = ( X X ) n 1 2 = 158, = 5,1419 Pada interval kepercayaan 99% dengan nilai α = 0,01, dk = 5 diperoleh nilai t tabel = 3,707. Data diterima jika t hitung t tabel. t hitung = X X SD / n t hitung data 1 = 0,0668 t hitung data 2 = 1,4612 t hitung data 3 = -4,0288 t hitung data 4 = -1,1988 t hitung data 5 = 4,5484 t hitung data 6 = 0,3190 t hitung data 7 = -1,1834 t hitung data ke-3 dan ke-5 > t tabel, maka data ditolak.

78 Lampiran 9. (lanjutan) Untuk itu dihitung kembali dengan cara yang sama tanpa mengikutsertakan data ke-3 dan ke-5 No % Recovery (X) (X- X ) (X- X ) ,29 0,0338 0, ,00 3,0480 9, ,83-2,1220 4, ,78 0,8280 0, ,86-2,0920 4,3765 X= 459,76 X X = 18,9694 X =91,952 ( ) 2 SD = ( X X ) n 1 2 = 18, = 2,1777 Pada interval kepercayaan 99% dengan nilai α = 0,01, dk = 5 diperoleh nilai t tabel = 4,60. Data diterima jika t hitung t tabel. t hitung = X X SD / n t hitung data 1 = 0,3470 t hitung data 2 = 3,1296 t hitung data 3 = -2,1788 t hitung data 4 = 0,8501 t hitung data 5 = 2,1480 t hitung data ke-1 sampai data ke-5 < t tabel, maka semua data diterima. SD 2,1777 RSD = x 100% = x 100% = 2,3683 % X 91, 952

79 Lampiran 10. Perhitungan Batas Deteksi (LOD) dan Batas Kuantitasi (LOQ) Persamaan Regresi : Y = ax + b Y = 19050,88X 23890,8 No Konsentrasi X Luas Area Y Yi Y - Yi (Y Yi) ,6-2513, , , , , , , , , ,8 8672, ,84 n = 5 ( Y Yi) 2 = ,40 Simpangan Baku (SB) = ( y yi) n 2 2 = , = 14951,45507 Batas Deteksi (LOD) = Batas Kuantitasi (LOQ) = 3SB Slope , ,88 = 2,35 mcg/ml 10SB = Slope = , ,88 = 7,85 mcg/ml

80 Lampiran 11. Kromatogram dari larutan tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) a b

81 Lampiran 11. (lanjutan) c d

82 Lampiran 11. (lanjutan) e f a, b, c, d, e dan f merupakan kromatogram penyuntikan 6 kali dari larutan tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) pada konsentrasi 50 mcg/ml, yang dianalisa secara KCKT menggunakan kolom VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), fase gerak campuran asetonitril dan air (1:2), volume penyuntikan 20 μl, laju aliran (flow rate) 2,5 ml/menit pada λ 254 nm.

83 Lampiran 12. Analisa data statistik untuk mencari kadar sebenarnya dari penyuntikan larutan tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) KADAR(%) AREA NO (X- X ) (X- X ) 2 X Y 1 92, ,44 11, , ,22 1, , ,03 0, , ,78 0, , ,61 2, , ,30 5,2947 X= 576,73 ( X X ) 2 = 21,8183 X = 96,12 SD = ( X X ) n 1 2 = 21, = 2,0889 Pada interval kepercayaan 99% dengan nilai α = 0,01, dk = 5 diperoleh nilai t tabel = 4,0321. Data diterima jika t hitung t tabel. t hitung = X X SD / n t hitung data 1 = -4,0331 t hitung data 2 = -1,4301 t hitung data 3 = -0,0365 t hitung data 4 = 0,9095 t hitung data 5 = 1,8921 t hitung data 6 = 2,6982 (semua data diterima) Kadar Deksametason (μ) = X ± (t α/2, dk x SD / n ) = 96,12 ± (4,0321x 0,8528) = 96,12 ± 3,44

84 Lampiran 13. Kromatogram dari larutan tablet Pritacort (PT.Molex Ayus) a b

85 Lampiran 13. (lanjutan) c d

86 Lampiran 13. (lanjutan) e f a, b, c, d, e dan f merupakan kromatogram penyuntikan 6 kali dari larutan tablet Pritacort (PT.Molex Ayus) pada konsentrasi 50 mcg/ml, yang dianalisa secara KCKT menggunakan kolom VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), fase gerak campuran asetonitril dan air (1:2), volume penyuntikan 20 μl, laju aliran (flow rate) 2,5 ml/menit pada λ 254 nm.

87 Lampiran 14. Analisa data statistik untuk mencari kadar sebenarnya dari penyuntikan larutan tablet Pritacort (PT.Molex Ayus) KADAR(%) AREA NO (X- X ) (X- X ) 2 X Y 1 94, ,65 2, , ,08 1, , ,45 0, , ,01 0, , ,20 1, , ,97 3,8613 X= 575,21 ( X X ) 2 = 9,3942 X = 95,87 SD = ( X X ) n 1 2 = 9, = 1,3707 Pada interval kepercayaan 99% dengan nilai α = 0,01, dk = 5 diperoleh nilai t tabel = 4,0321. Data diterima jika t hitung t tabel. t hitung = X X SD / n t hitung data 1 = -2,9446 t hitung data 2 = -1,9312 t hitung data 3 = 0,7978 t hitung data 4 = 0,0098 t hitung data 5 = 2,1523 t hitung data 6 = 3,5115 (semua data diterima) Kadar Deksametason (μ) = X ± (t α/2, dk x SD / n ) = 95,87 ± (4,0321x 0,5596) = 95,87 ± 2,26

88 Lampiran 15. Kromatogram dari larutan tablet Proxona (PT.Harsen) a b

89 Lampiran 15. (lanjutan) c d

90 Lampiran 15. (lanjutan) e f a, b, c, d, e dan f merupakan kromatogram penyuntikan 6 kali dari larutan tablet Proxona (PT.Harsen) pada konsentrasi 50 mcg/ml, yang dianalisa secara KCKT menggunakan kolom VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), fase gerak campuran asetonitril dan air (1:2), volume penyuntikan 20 μl, laju aliran (flow rate) 2,5 ml/menit pada λ 254 nm.

91 Lampiran 16. Analisa data statistik untuk mencari kadar sebenarnya dari penyuntikan larutan tablet Proxona (PT. Harsen) KADAR(%) AREA NO (X- X ) (X- X ) 2 X Y 1 102, ,51 6, , ,01 4, , ,63 2, , ,47 2, , ,06 4, , ,62 6,8583 X = 628,51 ( X X ) 2 = 26,2291 X = 104,75 SD = ( X X ) n 1 2 = 26, = 2,2904 Pada interval kepercayaan 99% dengan nilai α = 0,01, dk = 5 diperoleh nilai t tabel = 4,0321. Data diterima jika t hitung t tabel. t hitung = X X SD / n t hitung data 1 = -2,6799 t hitung data 2 = -2,1459 t hitung data 3 = -1,7475 t hitung data 4 = 1,5704 t hitung data 5 = 2,2021 t hitung data 6 = 2,8008 (semua data diterima) Kadar Deksametason (μ) = X ± (t α/2, dk x SD / n ) = 104,75 ± (4,0321x 0,9350) = 104,75 ± 3,77

92 Lampiran 17. Kromatogram dari larutan tablet Mexon (PT.Sampharindo) a b

93 Lampiran 17. (lanjutan) c d

94 Lampiran 17. (lanjutan) e f a, b, c, d, e dan f merupakan kromatogram penyuntikan 6 kali dari larutan tablet Mexon (PT.Sampharindo) pada konsentrasi 50 mcg/ml, yang dianalisa secara KCKT menggunakan kolom VP-ODS (4,6 mm x 25 cm), fase gerak campuran asetonitril dan air (1:2), volume penyuntikan 20 μl, laju aliran (flow rate) 2,5 ml/menit pada λ 254 nm.

95 Lampiran 18. Analisa data statistik untuk mencari kadar sebenarnya dari penyuntikan larutan tablet Mexon (PT. Sampharindo) KADAR(%) AREA NO (X- X ) (X- X ) 2 X Y 1 102, ,65 2, , ,09 1, , ,47 0, , ,25 0, , ,05 1, , ,91 3,6370 X= 622,41 ( X X ) 2 = 8,9508 X =103,74 SD = ( X X ) n 1 2 = 8, = 1,3380 Pada interval kepercayaan 99% dengan nilai α = 0,01, dk = 5 diperoleh nilai t tabel = 4,0321. Data diterima jika t hitung t tabel. t hitung = X X SD / n t hitung data 1 = 3,0273 t hitung data 2 = 1,9902 t hitung data 3 = 0,8667 t hitung data 4 = 0,4647 t hitung data 5 = 1,9281 t hitung data 6 = 3,4914 (semua data diterima) Kadar Deksametason (μ) = X ± (t α/2, dk x SD / n ) = 103,74 ± (4,0321x 0,5462) = 103,74± 2,20

96 Lampiran 19. Perhitungan Penimbangan sampel Berat 20 tablet Kandungan deksametason di etiket Labu ukur = 3,3146 g = 0,5 mg = 25 ml Dibuat larutan uji dengan konsentrasi deksametason 50 mcg/ml. Ditimbang serbuk setara dengan deksametason 1,25 mg. Berat penimbangan sampel = 1,25mg 20x0,5mg x 3,3146 g = 0,4143 g Sampel yang sudah ditimbang (0,4143 g) dimasukkan ke dalam labu tentukur 25 ml dilarutkan ke dalam pelarut sampai garis tanda Kadar larutan uji = 1,25 25ml x 1000 mcg = 50 mcg/ml

97 Lampiran 20. Hasil Analisa Kadar Deksametason dalam Sampel 1. Hasil Analisa Kadar Deksametason dalam tablet Bufacaryl (PT. Bufa Aneka) Berat Berat Konsentrasi Konsentrasi Kadar Penimbangan Setara Luas Area Teoritis Perolehan (%) (gram) (mg) (mcg/ml) (mcg/ml) 0,4142 1, , , ,68 0,4140 1, , , ,90 0,4143 1, , ,625 96,09 0,4144 1, , ,045 96,90 0,4145 1, , ,481 97,74 0,4146 1, , ,841 98,42 Rata-rata konsentrasi perolehan = 48,64 2. Hasil Analisa Kadar Deksametason dalam tablet Pritacort (PT. Molex Ayus) Berat Berat Konsentrasi Konsentrasi Kadar Penimbangan Setara Luas Area Teoritis Perolehan (%) (gram) (mg) (mcg/ml) (mcg/ml) 0,2560 1, , , ,22 0,2561 1, , , ,79 0,2562 1, , , ,42 0,2563 1, , , ,87 0,2565 1, , , ,07 0,2566 1, , , ,83 Rata-rata konsentrasi perolehan = 48,51

98 Lampiran 20. (lanjutan) 3. Hasil Analisa Kadar Deksametason dalam tablet Proxona (PT. Harsen) Berat Berat Konsentrasi Konsentrasi Kadar Penimbangan Setara Luas Area Teoritis Perolehan (%) (gram) (mg) (mcg/ml) (mcg/ml) 0,3824 1, , , ,25 0,3825 1, , , ,75 0,3826 1, , , ,12 0,3828 1, , , ,22 0,3830 1, , , ,81 0,3830 1, , , ,37 Rata-rata konsentrasi perolehan = 53,03 4. Hasil Analisa Kadar Deksametason dalam tablet Mexon (PT. Sampharindo) Berat Berat Konsentrasi Konsentrasi Kadar Penimbangan Setara Luas Area Teoritis Perolehan (%) (gram) (mg) (mcg/ml) (mcg/ml) 0,4631 1, , , ,08 0,4632 1, , , ,65 0,4633 1, , , ,26 0,4633 1, , , ,99 0,4634 1, , , ,79 0,4635 1, , , ,64 Rata-rata konsentrasi perolehan = 104,99

99 Lampiran 21. Contoh perhitungan untuk mencari kadar Deksametason Perhitungan kadar sampel Y = 19050,88 X 23890,80 Luas puncak = X = , ,88 X = 49,841 Kadar = 49,841 50,032 x 98,80 % = 98,42 %

100 Lampiran 22. Daftar spesifikasi sampel 1. Bufacaryl No. Batch : 7N46 Produsen : PT. Bufa Aneka No. Pendaftaran : DKL A1 Tgl. Kadaluwarsa : Pritacort No. Batch : NG010 Produsen : PT. Molex Ayus No. Pendaftaran : DKL A1 Tgl. Kadaluwarsa : Proxona No. Batch : Produsen : PT. Harsen No. Pendaftaran : DKL A1 Tgl. Kadaluwarsa : Mexon No. Batch : GG1161 Produsen : PT. Sampharindo No. Pendaftaran : DKL A1 Tgl. Kadaluwarsa :

101 Lampiran 23. Sertifikat pengujian Deksametason BPFI